细胞电镜样品制备

透射电镜细胞样品制备技术和观察方法

(一)原理

透射电子显微镜(transmission electron microscope,TEM)是利用阴极发射的电子，通过阳极中央的微孔形成的电子束穿透样品获得样品的电子信号，经物镜、中间镜和投影镜等多级电子放大至数百至数千万倍，最后成像在荧光屏上便可即时观察，或是投射到照相底片感光片上作为永久记录。由于标本必须置于高真空中进行电镜观察，所以电镜观察的生物标本必须特殊制备，不能含水，离体的生物标本要迅速加以固定，以防产生结构改变。另外，电子的穿透力很弱，这就需要把样品制成50nm～100nm厚的超薄切片(一个细胞切成100～200片)。为了使柔软的生物组织能够制成这样薄的切片，并使切片耐受高真空和电子轰击，所以在切片前要进行包埋。超薄切片技术是透射电镜观察成功的关键。

超薄切片制作样品过程大体分为取材、固定、漂洗、脱水、渗透包埋与聚合、切片、染色等。细胞超薄切片技术中如何把细胞完整无损地从培养瓶皿壁上包埋下来是最大的难题。新的定型产品无菌聚苯乙烯塑料薄膜的使用解决了这个难题，把薄膜放在培养瓶皿中，让细胞直接长在塑料薄膜上，不仅细胞生长效果好，而且可与细胞一起包埋切片，省去了许多麻烦。

(二)超

样品制备（溶胶-凝胶法）

一：实验目的

1. 了解溶胶-凝胶法制备样品的基本原理以及影响胶体形成的几种基本因素。

2. 通过实验可以系统、规范、和熟练地掌握化学实验的基本操作和基本实验技能。

3. 结合所学的物理和化学方面的知识，设计样品的相关物理与化学表征过程，了解 相关的样品表征技术和样品数据分析。

4. 了解相关化学实验废弃物的处理相关知识，提高学生的环保意识。 二：溶胶-凝胶过程的基本原理

1846年法国化学家J.J.Ebelmen用SiCl4与乙醇混合后，发现在湿空气中发生水解并形成了凝胶。20世纪30年代W.Geffcken证实用金属醇盐的水解和凝胶化可以制备氧化物薄膜。1971年德国H.Dislich报道了通过金属醇盐水解制备了SiO2-B2O-Al2O3-Na2O-K2O多组分玻璃。1975年B.E.Yoldas和M.Yamane制得整块陶瓷材料及多孔透明氧化铝薄膜。80年代以来，在玻璃、氧化物涂层、功能陶瓷粉料以及传统方法难以制得的复合氧化物材料得到成功应用。

溶胶-凝胶过程是一种胶体化学方法，是用含高化学活性组分的化合物作为前驱体（金属醇盐或金属无机盐）溶于有机溶剂或者去离子水中，在液相下将这些原料均匀混合，在控温搅拌的条件下并进行水解

样品制备（溶胶-凝胶法）

一：实验目的

1. 了解溶胶-凝胶法制备样品的基本原理以及影响胶体形成的几种基本因素。

2. 通过实验可以系统、规范、和熟练地掌握化学实验的基本操作和基本实验技能。

3. 结合所学的物理和化学方面的知识，设计样品的相关物理与化学表征过程，了解 相关的样品表征技术和样品数据分析。

4. 了解相关化学实验废弃物的处理相关知识，提高学生的环保意识。 二：溶胶-凝胶过程的基本原理

1846年法国化学家J.J.Ebelmen用SiCl4与乙醇混合后，发现在湿空气中发生水解并形成了凝胶。20世纪30年代W.Geffcken证实用金属醇盐的水解和凝胶化可以制备氧化物薄膜。1971年德国H.Dislich报道了通过金属醇盐水解制备了SiO2-B2O-Al2O3-Na2O-K2O多组分玻璃。1975年B.E.Yoldas和M.Yamane制得整块陶瓷材料及多孔透明氧化铝薄膜。80年代以来，在玻璃、氧化物涂层、功能陶瓷粉料以及传统方法难以制得的复合氧化物材料得到成功应用。

溶胶-凝胶过程是一种胶体化学方法，是用含高化学活性组分的化合物作为前驱体（金属醇盐或金属无机盐）溶于有机溶剂或者去离子水中，在液相下将这些原料均匀混合，在控温搅拌的条件下并进行水解

作业指导书

土壤样品制备作业指导书

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序号 修改的章、节、条号 修订内容 修改人 审核人 批准人 批准日期

1 目的

采用最经济有效的方法，将样品粉碎、缩分，制成具有代表性的分析试样； 制备的均匀并达到规定要求粒度的试样，保证整体原始样品的物质组分及其含量不变和便于前处理。

根据不同监测目的、不同项目和不同测试要求，采取不同的制样方法，确保试样制备的质量。 2 适用范围

适用于实验室土壤样品风干样品及新鲜样品的制备管理过程。 3 样品的制备

3.1新鲜样品的制备

某些土壤成分如挥发性和半挥发性有机污染物、氰化物、挥发酚、铵态氮、硝态氮、低价铁、酸碱度和速效养分等在风干过程中会发生显著变化，需用新鲜样品（原土）分析。为了能真实反映土壤在自然状态下的某些理化性状，新鲜样品再采集要及时送回实验室进行分析，分析前只需用玻璃或瓷炎钵棒将样品迅速弄碎混匀或多点取样称量，对含水较高的泥状土样可迅速搅匀后称样。称样时应注意不得将土壤以外的侵入体和新生体称取。新鲜样品若不能及时测定，必

第三部分 ICP-AES中样品的分解、制备

1. 前言

自上世纪60年代以来，由于ICP光源的无可比拟的优点，ICP-AES在地质、冶金、环境、医学、药品、生物、海洋、化工新型材料、核工业、农业、食品、水质等各领域及学科方面得到了广泛的应用，因而样品的种类十分庞杂繁多，但不管样品的种类何其繁多，其物理状态总是固体、液体、气体三种。

2. 将样品引入ICP光源的方法

1）液体样品引入ICP光源

A) 将液体雾化成气溶胶状态引入ICP光源，常用的有气动雾化和超声波雾化。

B) 将液体以电热蒸发或直接插入技术来引入ICP光源。 2）固体样品引入ICP光源 A) 电弧式火花融蚀，用放电方式将固体样品的表面产生气溶胶引入ICP光源中。

B) 将固体样品用电热蒸发技术（ETV）引入ICP光源。

C) 激光融蚀，用激光的能量产生的微粒（气溶胶、溅射微粒、蒸气羽等）引入ICP光源。

D) 将固体样品直接插入ICP光源。

E) 其他将粉末固体样品引入ICP光源的方法，如低带法，泥浆法等。 3）气体样品引入ICP光源

A) 气态样品直接引入ICP光源。 B) 氢化物发生法。 C) GC—ICP联用。

3．样品引入ICP光源的通则

虽然针对不同状态的样品有众多不同的将的方法。很多方法针对

第一节 概述

由于电子束的穿透能力比较低（散射能力强），因此用于TEM分析的样品厚度要非常薄，根据样品的原子序数大小不同，一般在5～500nm之间。要制备这样薄的样品必须通过一些特殊的方法。

第二节 复型技术

衬度：眼睛能观察到的或者其它媒介能记录到的光强度或感光度的差异； ? 质厚衬度就是样品中不同部位由于原子序数不同或者密度不同、样品厚度不同，入射电子被散射后能通过物镜光阑参与成像的电子数量不同，从而在图像上体现出的强度的差别。

?

2.1 影响质厚衬度的因素：

与原子序数的关系：物质的原子序数越大，散射电子的能力越强，在明场像（物镜光阑只允许散射角小的电子通过）中参与成像的电子越少，图像上相应位置越暗。

? 与试样厚度的关系：设试样上相邻两点的物质种类和结构完全相同，只是电子穿越的厚度不同，则在明场像中，暗的部位对应的试样厚，亮的部位对应的试样薄。

? 与物质密度的关系：试样中不同的物质或者不同的聚集状态，其密度一般不同，也可形成图像的反差，但这种反差一般比较弱。

?

2.2 复型技术

复型就是表面形貌的复制（其原理与侦破案件时用的石膏复制罪犯鞋底花纹相似）。通过复型制备出来的样品是真实样品表面形貌组织结构细节的薄

一、选择题。（每题4分，共16分）

1. 测试项目需要新鲜土壤样品时，采集后用可密封的聚乙烯或玻璃瓶容器盛装，并且保存。（）

A.室温避光

B.在20℃以下

C.在4℃以下

2. 土壤误差可分为采样误差（SE）、制样误差（PE）和分析误差（AE）三类，通常情况下。 ( )

A.SE＞PE＜AE

B. SE＜PE＞AE

C. SE＞PE＞AE

D.以上都不是

3. 分析土壤中挥发性和半挥发性有机污染物时，采集的样品应储存在，且样品要样品瓶。( )

A.透明玻璃瓶，装满

B.棕色玻璃瓶，不装满

C. 透明玻璃瓶，不装满

D. 棕色玻璃瓶，装满

4. 土壤样品可采用样品烘干机烘干，温度控制在( )

A.35℃±5℃

B. 30℃±5℃

C. 35℃±2℃

D. 25℃±5℃

二、判断题。（每题3分，共24分）

1. 土壤样品风干室应具备如下条件：朝南（以方便阳光直射土壤样品），通风良好，整洁，无尘，无易挥发性化学物质。( )

2. 土壤样品的风干操作为：在风干室将土样放置于风干盘中，摊成2~cm的薄层，适时地压碎、反动，检出碎石、砂砾和植物残体。（）

3．采集土壤样品的质量一般不少于500g。（）

4．土壤样品加工过程中，不用挑除草

T细胞活化和CTL制备

T细胞淋巴瘤WHO 分类 前体T细胞淋巴瘤(Precursor T-cell neoplasm)前体T淋巴母细胞淋巴瘤/白血病

成熟(外周)T细胞淋巴瘤

白血病/播散型(Predominantly Leukemic/Disseminated)

结内型( Predominantly Nodal)结外型(Predominantly Extranodal)

Rudiger T, et al. Ann Oncol. 2002;13:140-149.

白血病/播散型T细胞淋巴瘤T细胞前淋巴细胞白血病T-cell prolymphocytic leukemia

T细胞粒淋巴细胞白血病T-cell granular lymphocytic leukemia

NK细胞白血病NK-cell leukemia

成人T细胞淋巴瘤/白血病(HTLV1+)Adult T-cell lymphoma/leukemia (ATL)

结内型T细胞淋巴瘤 血管免疫母T细胞淋巴瘤Angioimmunoblastic T-cell lymphoma (AITL)

外周T细胞淋巴瘤,非特异性Peripheral T-cell lymphoma, unspe

T细胞活化和CTL制备

T细胞淋巴瘤WHO 分类 前体T细胞淋巴瘤(Precursor T-cell neoplasm)前体T淋巴母细胞淋巴瘤/白血病

成熟(外周)T细胞淋巴瘤

白血病/播散型(Predominantly Leukemic/Disseminated)

结内型( Predominantly Nodal)结外型(Predominantly Extranodal)

Rudiger T, et al. Ann Oncol. 2002;13:140-149.

白血病/播散型T细胞淋巴瘤T细胞前淋巴细胞白血病T-cell prolymphocytic leukemia

T细胞粒淋巴细胞白血病T-cell granular lymphocytic leukemia

NK细胞白血病NK-cell leukemia

成人T细胞淋巴瘤/白血病(HTLV1+)Adult T-cell lymphoma/leukemia (ATL)

结内型T细胞淋巴瘤 血管免疫母T细胞淋巴瘤Angioimmunoblastic T-cell lymphoma (AITL)

外周T细胞淋巴瘤,非特异性Peripheral T-cell lymphoma, unspe

一、电转化感受态细胞的制备

1.用枪头挑取单克隆菌落，投入盛有10ml LB液体培养基的50ml离心管中。（同时做培养基和枪头的空白对照）

2.37℃，220rpm，培养14-16个小时。

3.第二天，以1：100的比例将这10ml菌液倒入1000ml LB液体培养基中，37度，220rpm，振摇2-3小时，每半小时测一次OD，当OD值达到0.3-0.4时，停止培养。 4.将菌液在冰上预冷30分钟，随后将菌液分装到500ml 预冷的离心杯中，4℃，2500rpm离心10分钟。

5.弃上清，离心杯中加入少量ddH2O，使沉淀悬浮后，再将水注满离心杯，4℃，4000rpm离心10分钟。

6.弃上清，加少量灭菌水，重悬菌体，再将水注满离心杯，4000rpm，4℃，离心10min。 7.弃上清，往离心杯中加入少量10%甘油(灭菌，预冷)，重悬菌体，再加满10%甘油, 4℃, 4000rpm, 离心10min。

8.弃上清，每个离心杯中加入5ml10%的甘油，使沉淀悬浮后，将菌液以300ul/管分装于1.5ml的离心管中，-80 ℃冰箱中保存。同时取100 μl感受态加0.01ng puc18直接电穿孔转化，检测转化效率。

9. 次日观察转化子生长情况