wb实验总结

蛋白提取（所有操作在冰上进行）

1.裂解

1)配裂解液：PMSF=100：1，（裂解液和PMSF在-20℃保存，提

前一天4℃解冻）

取2ml裂解液，加20μl PMSF混匀

2)称取30mg组织，切碎放入标记好的AP管中，加入600μl上

述1中液体（加入液体与组织比例为20：1），冰上静置10min 2.匀浆

先用超纯水润洗一下匀浆机的钢头，（同时进行几组匀浆时，组间也要润洗钢头）

在匀浆机（在生化室）上每次匀浆10s，两次（间隔5s），冰上静置30min

3.离心（在基础4楼416室）

1)自带1ml枪以及蓝枪头和黄枪头，三个1.5的离心管（①，②

两个标记，③加少量超纯水，③号是为了离心平衡，对称放置）

2)将离心机预冷至4℃为止，以1200×10r/min离心15min

3)用移液枪将上层清液取出放入①②号管中

4.变性（上样缓冲液：样品=4：1）

将样品转移至2~3个0.5mlAP管中

加上样缓冲液，100℃变性10min

仪器屏幕：

5.保存

变性结束后，打开AP管盖放一下气，然后4℃保存，点样是取出即可用

WB实验步骤

1.清洗玻璃板：清洗玻璃板后风干，将玻璃板对齐后放入夹中卡紧，

操作时要使两玻璃对齐，以免漏胶。

2.配制分离胶

1)准备：1ml枪（蓝色枪头），200μl

蛋白提取（所有操作在冰上进行）

1.裂解

1)配裂解液：PMSF=100：1，（裂解液和PMSF在-20℃保存，提

前一天4℃解冻）

取2ml裂解液，加20μl PMSF混匀

2)称取30mg组织，切碎放入标记好的AP管中，加入600μl上

述1中液体（加入液体与组织比例为20：1），冰上静置10min 2.匀浆

先用超纯水润洗一下匀浆机的钢头，（同时进行几组匀浆时，组间也要润洗钢头）

在匀浆机（在生化室）上每次匀浆10s，两次（间隔5s），冰上静置30min

3.离心（在基础4楼416室）

1)自带1ml枪以及蓝枪头和黄枪头，三个1.5的离心管（①，②

两个标记，③加少量超纯水，③号是为了离心平衡，对称放置）

2)将离心机预冷至4℃为止，以1200×10r/min离心15min

3)用移液枪将上层清液取出放入①②号管中

4.变性（上样缓冲液：样品=4：1）

将样品转移至2~3个0.5mlAP管中

加上样缓冲液，100℃变性10min

仪器屏幕：

5.保存

变性结束后，打开AP管盖放一下气，然后4℃保存，点样是取出即可用

WB实验步骤

1.清洗玻璃板：清洗玻璃板后风干，将玻璃板对齐后放入夹中卡紧，

操作时要使两玻璃对齐，以免漏胶。

2.配制分离胶

1)准备：1ml枪（蓝色枪头），200μl

蛋白提取（所有操作在冰上进行）

1. 裂解

1) 配裂解液：PMSF=100：1，（裂解液和PMSF在-20℃保存，提前一天4℃解冻）

取2ml裂解液，加20μl PMSF混匀

2) 称取30mg组织，切碎放入标记好的AP管中，加入600μl上述1中液体（加入液

体与组织比例为20：1），冰上静置10min

2. 匀浆

先用超纯水润洗一下匀浆机的钢头，（同时进行几组匀浆时，组间也要润洗钢头） 在匀浆机（在生化室）上每次匀浆10s，两次（间隔5s），冰上静置30min 3. 离心（在基础4楼416室）

1) 自带1ml枪以及蓝枪头和黄枪头，三个1.5的离心管（①，②两个标记，③加少量

超纯水，③号是为了离心平衡，对称放置）

2) 将离心机预冷至4℃为止，以1200×10r/min离心15min 3) 用移液枪将上层清液取出放入①②号管中 4. 变性（上样缓冲液：样品=4：1）

将样品转移至2~3个0.5mlAP管中 加上样缓冲液，100℃变性10min 仪器屏幕：

5. 保存

变性结束后，打开AP管盖放一下气，然后4℃保存，点样是取出即可用

S5 S5 100．0 00：10 00：10 温度（℃） 时间（时：分钟） WB实验步骤

WB 实验步骤

1. 蛋白提取，吸出培养基，用适量DPBS清洗，吸出DPBS，尽量吸干净，加入适量细胞裂解液，冰上裂解15-30min

2. 用细胞刮刀刮取皿或瓶底部的细胞，收集至1.5ml的离心管中，12000rpm离心，4度，15-30min将上清转移到新的离心管中 3. 检测蛋白浓度，定量（20-40ug），用水和蛋白上样缓冲液配成30ul以内的体积，100度变性10min，冷却后离心，上样

4. 将胶装在电泳槽内，加入1x电泳缓冲液到指定刻度，拔出梳子用注射器清洗胶孔，上样 5. 60V电压压缩蛋白至同一位置（分离胶与浓缩胶交界处），130V分离蛋白。配置转膜缓冲液，并将膜浸泡其中，4度预冷

6. 待蓝色的缓冲液条带到达距离胶底面0.5cm处即可开始转膜，按照从负极到正极海绵，滤纸，胶，膜，滤纸，海绵的顺序组装，避免产生气泡，对应正负极放入转膜槽

7. 低温转膜90min，丽春红染色，初步判定WB效果，并在对应位置将目的条带剪下来 8. 用5%的脱脂牛奶封闭，室温1小时以上，用特定的一抗4度过夜 9. 清洗一抗，用适量的TBST，室温3次，每次10min

10. 加入对应的二抗，室温孵育1小时以上，并清洗3次，同9 11. 按1:1的

SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳和Western印迹技术

SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳技术首先在1967年由Shapiro等建立，主要用于测定蛋白质亚基分子量。Western 印迹是在SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳基础上，将电泳分离的蛋白组分从凝胶转移至一种固相支持物上，应用抗体可与附着于固相支持物上的靶蛋白发生特异性反应的特点，针对特定蛋白进行鉴别和定量。 原理

1． SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳

SDS是一种阴离子去污剂，作为变性剂和助溶剂，它能断裂分子内和分子间的氢键，使分子去折叠，破坏蛋白质分子的二级和三级结构。强还原剂，例如巯基乙醇和二硫苏糖醇则能使半胱氨酸残基之间的二硫键断裂。在样品和凝胶中加入SDS和还原剂后，蛋白质分子被解聚，使其氨基酸侧链与SDS充分结合形成带负电荷的蛋白质-SDS胶束，所带的负电荷大大超过了蛋白质分子原有的电荷量，这就消除了不同分子之间原有的电荷差异。在水溶液中蛋白质-SDS胶束的长度与亚基分子量的大小成正比。因此这种胶束在SDS聚丙烯酰胺凝胶系统中的电泳迁移率不再受蛋白质原有电荷的影响，而主要取决于蛋白质或亚基分子量的大小。当蛋白质的分子量在15KD～200KD之间时，电泳迁移率与分子量的对数呈线性关系。由此可见，SDS聚丙烯

实验基本步骤

提取细胞蛋白

↓ BCA定量

↓

制备蛋白胶（SDS-PAGE胶）

↓

蛋白样品变性

↓ 电泳 ↓ 转膜 ↓ 封闭 ↓ 一抗 ↓ TBST洗涤

↓ 二抗 ↓ TBST洗涤

↓ 显影 ↓ 结果分析

试剂配制

1.PBS磷酸盐缓冲溶液1L

磷酸二氢钾 0.24g 磷酸氢二钠 1.44g 氯化钠 8g 氯化钾 0.2g

加入500ml纯水，调PH=7.2 定容至1L,高压蒸汽灭菌

2.PBST（PBS+0.05%吐温-20）

500mlPBS+0.25ml吐温-20

3.电转液500ml

Tris 1.5g 甘氨酸 7.2g 400ml水溶解

加入100ml甲醇，置于4℃冰箱预冷

4.电泳液（1X）

10x稀释，50ml10x电泳液+450ml纯水

5.TBS

6.TBST（TBS+0.05%吐温-20）

50mlTBS+450ml纯水+0.25ml吐温-20

7.封闭液

TBST1X+5%奶粉

40ml封闭液=40mlTBST+2g奶粉，40℃预热

WB实验

一、蛋白样品制备

准备:一管细胞，PBS（4℃预冷），PMSF（100mM），移液枪（

实验基本步骤

提取细胞蛋白

↓ BCA定量

↓

制备蛋白胶（SDS-PAGE胶）

↓

蛋白样品变性

↓ 电泳 ↓ 转膜 ↓ 封闭 ↓ 一抗 ↓ TBST洗涤

↓ 二抗 ↓ TBST洗涤

↓ 显影 ↓ 结果分析

试剂配制

1.PBS磷酸盐缓冲溶液1L

磷酸二氢钾 0.24g 磷酸氢二钠 1.44g 氯化钠 8g 氯化钾 0.2g

加入500ml纯水，调PH=7.2 定容至1L,高压蒸汽灭菌

2.PBST（PBS+0.05%吐温-20）

500mlPBS+0.25ml吐温-20

3.电转液500ml

Tris 1.5g 甘氨酸 7.2g 400ml水溶解

加入100ml甲醇，置于4℃冰箱预冷

4.电泳液（1X）

10x稀释，50ml10x电泳液+450ml纯水

5.TBS

6.TBST（TBS+0.05%吐温-20）

50mlTBS+450ml纯水+0.25ml吐温-20

7.封闭液

TBST1X+5%奶粉

40ml封闭液=40mlTBST+2g奶粉，40℃预热

WB实验

一、蛋白样品制备

准备:一管细胞，PBS（4℃预冷），PMSF（100mM），移液枪（

实验基本步骤

提取细胞蛋白

↓ BCA定量

↓

制备蛋白胶（SDS-PAGE胶）

↓

蛋白样品变性

↓ 电泳 ↓ 转膜 ↓ 封闭 ↓ 一抗 ↓ TBST洗涤

↓ 二抗 ↓ TBST洗涤

↓ 显影 ↓ 结果分析

试剂配制

1.PBS磷酸盐缓冲溶液1L

磷酸二氢钾 0.24g 磷酸氢二钠 1.44g 氯化钠 8g 氯化钾 0.2g

加入500ml纯水，调PH=7.2 定容至1L,高压蒸汽灭菌

2.PBST（PBS+0.05%吐温-20）

500mlPBS+0.25ml吐温-20

3.电转液500ml

Tris 1.5g 甘氨酸 7.2g 400ml水溶解

加入100ml甲醇，置于4℃冰箱预冷

4.电泳液（1X）

10x稀释，50ml10x电泳液+450ml纯水

5.TBS

6.TBST（TBS+0.05%吐温-20）

50mlTBS+450ml纯水+0.25ml吐温-20

7.封闭液

TBST1X+5%奶粉

40ml封闭液=40mlTBST+2g奶粉，40℃预热

WB实验

一、蛋白样品制备

准备:一管细胞，PBS（4℃预冷），PMSF（100mM），移液枪（

实验基本步骤

提取细胞蛋白

↓ BCA定量

↓

制备蛋白胶（SDS-PAGE胶）

↓

蛋白样品变性

↓ 电泳 ↓ 转膜 ↓ 封闭 ↓ 一抗 ↓ TBST洗涤

↓ 二抗 ↓ TBST洗涤

↓ 显影 ↓ 结果分析

试剂配制

1.PBS磷酸盐缓冲溶液1L

磷酸二氢钾 0.24g 磷酸氢二钠 1.44g 氯化钠 8g 氯化钾 0.2g

加入500ml纯水，调PH=7.2 定容至1L,高压蒸汽灭菌

2.PBST（PBS+0.05%吐温-20）

500mlPBS+0.25ml吐温-20

3.电转液500ml

Tris 1.5g 甘氨酸 7.2g 400ml水溶解

加入100ml甲醇，置于4℃冰箱预冷

4.电泳液（1X）

10x稀释，50ml10x电泳液+450ml纯水

5.TBS

6.TBST（TBS+0.05%吐温-20）

50mlTBS+450ml纯水+0.25ml吐温-20

7.封闭液

TBST1X+5%奶粉

40ml封闭液=40mlTBST+2g奶粉，40℃预热

WB实验

一、蛋白样品制备

准备:一管细胞，PBS（4℃预冷），PMSF（100mM），移液枪（

WB实验步骤

1. 组织样品制备

⑴匀浆对于心肝脾肾等组织可每50~100mg加1ml裂解液，肺100~200mg加1ml裂解液。可手动或电动匀浆。注意尽量保持低温，快速匀浆。

⑵裂解后，将裂解液移1.5ml 离心管中，（若有组织残渣可继续冰上振荡30min）；然后4℃、12000rpm离心20min，取上清分装于0.5ml 离心管中并置于-20 ℃保存（-80℃长期保存）。12000g离心，4℃，2min。

⑶取少量上清进行定量。

⑷将所有蛋白样品调至等浓度，充分混合沉淀加loading buffer后直接上样最好，剩余溶液（溶于1×loading buffer）可以低温储存，-70℃一个月，-20℃一周，4℃ 1~2天，每次上样前98℃，3min。 2. 蛋白定量

2.2.1制作标准曲线

（1）从－20℃取出浓度为1μg/μl的BSA（牛血清白蛋白，蛋白标准品），室温融化后，备用，使各个孔的终体积为20ul。 BSA浓度（μg/μl） 0 BSA(μl) PBS(μl) BSA含量(μg) 0 20 0 0.025 1 19 0.5 0.050 2 18 1 0.100 4 16 2 0.200 8 12 4 0.300 12 8 6 0