家兔肺水肿实验原理
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家兔实验性肺水肿参考
家兔实验性肺水肿
摘要:目的 (1)复制家兔实验性水肿(2)了解肺水肿表现及其发生机理。方法 家兔静脉大量滴注生理盐水并注射肾上腺素,从而制造肺水肿模型。治疗组用静脉注射山莨菪碱进行抢救,实验组不再注射任何液体。另设空白组作为对照。 结果 实验组家兔呼吸变为深快,气管内有粉红色泡沫液体流出,并用听诊器听诊肺部有湿性罗音出现。治疗组家兔因抢救无效死亡。空白组家兔无明显变化。 结论 静脉大量滴注生理盐水并注射肾上腺素可导致急性肺水肿。
关键词:肺水肿 生理盐水 肾上腺素 山莨菪碱 静脉注射
一、引言
肺水肿是由于液体从毛细血管渗透至肺间质或肺泡所造成的。临床上常见的肺水肿是心源性肺水肿和肾性肺水肿。病理上可分间质性和肺泡性两类,可同时并存或以某一类为主。间质性肺水肿大都为慢性,肺泡性可为急性或慢性肺水肿。本实验主要是通过静脉大量滴注生理盐水并注射肾上腺素导致急性心源性肺泡性肺水肿。
二、实验材料与实验步骤
2.1 材料
实验对象:家兔3只,雌雄不限。
实验器材:婴儿称,天平,气管插管及呼吸描记装置,静脉导管及静脉输液装置,颈部小手术器械,听诊器,烧杯,纱布,线,滤纸,兔手术台
实验药物:生理盐水,
针刺对实验性肺水肿家兔呼吸状态的影响
针刺对实验性肺水肿家兔呼吸状态的影响
针刺对实验性肺水肿家兔呼吸 状态的影响
针灸推拿学科 基础医学院
王培育 杜彩霞
针刺对实验性肺水肿家兔呼吸状态的影响
实验目的
了解肺水肿动物模型制备方法 观察针刺对肺水肿家兔呼吸功能的影响
针刺对实验性肺水肿家兔呼吸状态的影响
实验对象
家 兔
针刺对实验性肺水肿家兔呼吸状态的影响
实验材料兔台、BL4210、手术器械1 兔台、BL4210、手术器械1套、气管套管 1、5m1注射器、20%氨基甲酸乙酯、毫针 5m1注射器 20%氨基甲酸乙酯、 注射器、 50%葡萄糖、生理盐水、缝线、棉球, 50%葡萄糖、生理盐水、缝线、棉球,纱布
针刺对实验性肺水肿家兔呼吸状态的影响
实验步骤 动物手术 连接记录呼吸波形 推注葡萄糖,记录波形 推注葡萄糖, 针刺膻中,记录呼吸波形 针刺膻中, 推注葡萄糖,针刺素髎,记录 推注葡萄糖,针刺素髎,
针刺对实验性肺水肿家兔呼吸状态的影响
动物手术 麻醉 仰卧固定 颈部备皮:下颌至胸骨上窝 颈部备皮:
针刺对实验性肺水肿家兔呼吸状态的影响
分组 1---4:实验组(针刺内关) ---4 实验组(针刺内关) 5---7:对照组(针刺非穴点) ---7 对照组(针刺非穴点
家兔呼吸功能不全实验
家兔呼吸功能不全实验
一、实验目的
1.观察血液中化学因素(PCO2、PO2、H+)的改变对家兔呼吸运动(频率、节律、幅度)的影响,探讨其作用机制。
2.通过造成动物窒息、气胸和肺水肿,以复制通气功能障碍、气体弥散障碍及肺泡通气与血流比例失调所引起的Ⅰ型或Ⅱ型呼吸功能不全模型。 二、实验动物
家兔,体重2.00kg,性别:雄。 三、实验药品及器材
药品:20%乌拉坦,盐酸利多卡因(批号:1304125),125U/ml肝素溶液(批号:1212010),油酸。
器材:手术器械,注射器(1ml、5ml、10ml、20ml、50ml),动脉导管,压力换能器,Y型玻璃气管插管,HX200型呼吸流量换能器,RM6240多道生物信号采集处理系统,头皮针,动脉夹,兔手术台,听诊器,血气分析仪。 四、实验方法
1.麻醉:抓取成年家兔一只,称重(2.00kg),于耳缘静脉缓慢注入20%乌拉坦10ml(0.5ml/100g*2.00=10.00ml),作全身麻醉。家兔未完全麻醉,后补注2ml乌拉坦,2min后家兔耳朵下垂,角膜反射明显消失,四肢瘫软,止血钳夹紧无疼痛反射,视为麻醉完全,推注3ml肝素抗凝。将家兔仰卧位固定在手术台上,用牙线将家兔牙齿固定在兔手术台
家兔呼吸功能不全实验
家兔呼吸功能不全实验
一、实验目的
1.观察血液中化学因素(PCO2、PO2、H+)的改变对家兔呼吸运动(频率、节律、幅度)的影响,探讨其作用机制。
2.通过造成动物窒息、气胸和肺水肿,以复制通气功能障碍、气体弥散障碍及肺泡通气与血流比例失调所引起的Ⅰ型或Ⅱ型呼吸功能不全模型。 二、实验动物
家兔,体重2.00kg,性别:雄。 三、实验药品及器材
药品:20%乌拉坦,盐酸利多卡因(批号:1304125),125U/ml肝素溶液(批号:1212010),油酸。
器材:手术器械,注射器(1ml、5ml、10ml、20ml、50ml),动脉导管,压力换能器,Y型玻璃气管插管,HX200型呼吸流量换能器,RM6240多道生物信号采集处理系统,头皮针,动脉夹,兔手术台,听诊器,血气分析仪。 四、实验方法
1.麻醉:抓取成年家兔一只,称重(2.00kg),于耳缘静脉缓慢注入20%乌拉坦10ml(0.5ml/100g*2.00=10.00ml),作全身麻醉。家兔未完全麻醉,后补注2ml乌拉坦,2min后家兔耳朵下垂,角膜反射明显消失,四肢瘫软,止血钳夹紧无疼痛反射,视为麻醉完全,推注3ml肝素抗凝。将家兔仰卧位固定在手术台上,用牙线将家兔牙齿固定在兔手术台
家兔呼吸功能不全实验 - 图文
家兔呼吸功能不全实验
一、实验目的
1.观察血液中化学因素(PCO2、PO2、H+)的改变对家兔呼吸运动(频率、节律、幅度)的影响,探讨其作用机制。
2.通过造成动物窒息、气胸和肺水肿,以复制通气功能障碍、气体弥散障碍及肺泡通气与血流比例失调所引起的Ⅰ型或Ⅱ型呼吸功能不全模型。 二、实验动物
家兔,体重2.00kg,性别:雄。 三、实验药品及器材
药品:20%乌拉坦,盐酸利多卡因(批号:1304125),125U/ml肝素溶液(批号:1212010),油酸。
器材:手术器械,注射器(1ml、5ml、10ml、20ml、50ml),动脉导管,压力换能器,Y型玻璃气管插管,HX200型呼吸流量换能器,RM6240多道生物信号采集处理系统,头皮针,动脉夹,兔手术台,听诊器,血气分析仪。 四、实验方法
1.麻醉:抓取成年家兔一只,称重(2.00kg),于耳缘静脉缓慢注入20%乌拉坦10ml(0.5ml/100g*2.00=10.00ml),作全身麻醉。家兔未完全麻醉,后补注2ml乌拉坦,2min后家兔耳朵下垂,角膜反射明显消失,四肢瘫软,止血钳夹紧无疼痛反射,视为麻醉完全,推注3ml肝素抗凝。将家兔仰卧位固定在手术台上,用牙线将家兔牙齿固定在兔手术台
家兔尿生成的影响因素实验
家兔尿生成的影响因素实验
家兔尿生成的影响因素实验
1.实验目的
1.1学习用输尿管插管记录尿量的方法. 1.2观察几种因素对尿生成的影响.
2.实验原理
尿生成的过程包括:肾小球的滤过作用,肾小管与集合管的重吸收作用,肾小管与集合管的分泌作用.凡是影响这些过程的因素,都会因影响尿生成而引起尿量变化.
3.实验对象与实验材料
家兔常规手术器械、止血钳、剪毛剪、眼科剪、眼科镊、玻璃分针、棉花、滴管、纱布、棉线、温热生理盐水、烧杯、污物缸、兔手术台、塑料绳、棉签、动脉夹、注射器、照明灯、保护刺激电极、支架、PowerLab生理实验系统、生物电输入线、受滴器、输尿管插管、接尿器皿、麻醉剂(2%戊巴比妥钠2ml/Kg)、肝素溶液(200U/ml) 、20%葡萄糖溶液、10%Na2SO4溶液、肾上腺素(1:10000)、垂体后叶素(5U/ml)、20%甘露醇.
4.实验方法与步骤
4.1家兔称重,麻醉(耳缘静脉注射2%戊巴比妥钠2ml/Kg)、固定(仰式)、剪毛、剪颈部皮肤6~7cm,钝性分离颈部肌肉等组织.暴露气管、穿线、手术刀手术剪T形切口,事先准备好的棉签将气管中的血块弄出,插好气管插管并结扎.分离右侧迷走神经穿线备用. 4.2输尿
水肿鉴别
一、全身性水肿 (一)心源性水肿
指原发的疾病为心脏病,由于心脏功能障碍而引起的水肿。轻度的心源性水肿可以仅表现踝部有些水肿,重度的病例不仅两下肢有水肿,上肢、胸部、背部、面部均可发生,甚至出现胸腔、腹腔及心包腔积液。心脏病患者由于心功能障碍,多呈现端坐呼吸,被迫采取坐位或半坐位。因此心源性水肿多出现在两下肢的足部、踝部、骶骨部及阴囊等处,明显受体位的影响。
心源性水肿的诊断应具备以下的主要特点:①有心脏病的病史及症状表现。如表现有心悸、呼吸困难或气急、端坐呼吸、咳嗽、吐白色泡沫样痰等症状。②心脏病的体征。如心脏扩大,心脏器质性杂音、颈静脉扩张、肝淤血肿大。中心静脉压增高、血循环时间延长、肺底湿性啰音等。③水肿的表现。为全身性凹陷性水肿,两下肢最为明显,与体位有关。水肿的程度与心功能的发展和变化密切相关,心力衰竭好转水肿将明显减轻。 (二)肾源性水肿
由于肾脏疾病的不同,所引起的水肿表现及机制都有很大差异。
肾源性水肿初起时,低垂部位的水肿往往不如眼睑部或面部显著。病人常发现晨起时眼睑或面部浮肿、肿胀,后来才扩布至全身。与心源性水肿不同,它没有明显的血循环动力学障碍,无体循环静脉淤血,外周毛细血管内的流体静压无明显增
机能学实验家兔呼吸运动的调节
实验 家兔呼吸运动的调节
【目的】
1、 观察血液中化学因素(PCO2、PO2、和〔H+〕)改变对家兔呼吸运动(呼吸频率、节律、幅度)的影响,初步探讨其作用部位,并分析机制。观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用,初步探讨其机制。
2、 掌握气管插管术和神经血管分离术。
【材料和方法】 1、材料
家兔;手术台,手术器械;20ml和1ml注射器,橡皮胶管;装有CO2的气袋;生理盐水,氨基甲酸乙酯,乳酸;呼吸换能器,微机生物信号采集处理器系统 2、方法
2.1 实验系统连接及参数设置 用胶管连接流量头与气管插管,流量头连接呼吸流量换能器。用胶管连接呼吸换能器测压口和气管插管,呼吸换能器输出线接微机生物信号处理系统。启动系统软件,在系统软件窗口设置仪器参数。 2.2手术准备
2.2.1麻醉固定 家兔称重后,按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。待兔麻醉后,将其仰卧,先后固定四肢及兔头。
2.2.2手术 剪去颈前被毛,颈前正中切开皮肤6~7cm,直至下颌角上1.5cm,用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉,暴露气管及与气管平行的左、右血管神经鞘,细心分离两侧鞘膜内迷走神经,在迷走神经下穿线备用。分离气管,
家兔失血性休克实验报告
病理生理实验报告— —
家兔失血性休克
——2011302280083 潘晴
【实验目的】
1、了解失血性休克动物模型的复制方法并复制失血性休克的动物模型; 2、观察失血性休克时和抢救休克时动物的功能代谢变化及微循环改变; 3、了解失血性休克的治疗,探讨失血性休克的发病机理及救治措施。
【实验原理】
休克是多种原因引起的,以机体急性微循环障碍为主要特征,并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。失血导致血容量减少,是休克常见的病因。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度,当血量锐减(如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血)超过总血量的20%以上时,极易导致急性循环障碍,组织有效血液灌流量不足,即休克的发生。
根据休克过程中微循环的改变,将休克分为三期:休克早期(微循环缺血期或缺血性缺氧期);休克期(微循环淤血期或淤血性缺氧期);休克晚期(微循环衰竭期或DIC期)。但依失血程度及快慢的不同,各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。
对失血性休克的治疗,首先强调的是止血和补充血容量,以提高有效循环血量、心排血量,改善组织灌流;其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物,改善微循环状态。
【实验对象】
家兔
【实验
家兔失血性休克实验报告
实验报告
实验题目:家兔失血性休克模型的制作及治疗
实验目的:制作家兔失血性休克模型,观察家兔血压、心率、呼吸和微循环的变化,进一步理解休克发生的病理生理机制,并了解失血性休克的治疗措施
实验对象:家兔,体重1.92kg 实验器材与药品:
1、器材:兔用手术器械一套、兔手术台、静脉输液装置、动脉和静脉插管各一、三通管、注射器(20,5,1ml)、显微镜、手术线、纱布 2、药品:20%乌拉坦、1%肝素、去甲肾上腺素、生理盐水 实验步骤:
1、抓取家兔并称重,取20%乌拉坦9.6ml经耳缘静脉缓慢推注 2、待家兔四肢张力降低,无抵抗,角膜反射消失后,在兔手术台进行牢靠固定并备皮,备皮部位:颈部与腹部
3、做颈部正中切口5cm,分层剪开,分离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉,小心游离血管3-4cm,在血管的两端穿线备用 4、经耳缘静脉注入1%肝素2ml抗凝
5、颈外静脉插管:先夹闭近心端,再结扎远心端,用眼科剪向近心端作V形切口,向近心端插管3-4cm,NS维持,5-10滴/min 6、颈总动脉插管:先结扎远心端,再夹闭近心端,用眼科剪向近心端作V形切口,向近心端插管3-4cm
7、腹部正中切口6-8cm,拉出一段肠系膜(不取盲肠肠系膜),固定
于显微镜下