针刺对实验性肺水肿家兔呼吸状态的影响难点

针刺对实验性肺水肿家兔呼吸状态的影响

针刺对实验性肺水肿家兔呼吸 状态的影响

针灸推拿学科 基础医学院

王培育 杜彩霞

针刺对实验性肺水肿家兔呼吸状态的影响

实验目的

了解肺水肿动物模型制备方法 观察针刺对肺水肿家兔呼吸功能的影响

针刺对实验性肺水肿家兔呼吸状态的影响

实验对象

家 兔

针刺对实验性肺水肿家兔呼吸状态的影响

实验材料兔台、BL4210、手术器械1 兔台、BL4210、手术器械1套、气管套管 1、5m1注射器、20%氨基甲酸乙酯、毫针 5m1注射器 20%氨基甲酸乙酯、 注射器、 50%葡萄糖、生理盐水、缝线、棉球， 50%葡萄糖、生理盐水、缝线、棉球，纱布

针刺对实验性肺水肿家兔呼吸状态的影响

实验步骤 动物手术 连接记录呼吸波形 推注葡萄糖，记录波形 推注葡萄糖， 针刺膻中，记录呼吸波形 针刺膻中， 推注葡萄糖，针刺素髎，记录 推注葡萄糖，针刺素髎，

针刺对实验性肺水肿家兔呼吸状态的影响

动物手术 麻醉 仰卧固定 颈部备皮：下颌至胸骨上窝 颈部备皮：

针刺对实验性肺水肿家兔呼吸状态的影响

分组 1---4:实验组(针刺内关) ---4 实验组(针刺内关) 5---7:对照组(针刺非穴点) ---7 对照组(针刺非穴点

家兔实验性肺水肿

摘要：目的 （1）复制家兔实验性水肿（2）了解肺水肿表现及其发生机理。方法 家兔静脉大量滴注生理盐水并注射肾上腺素，从而制造肺水肿模型。治疗组用静脉注射山莨菪碱进行抢救，实验组不再注射任何液体。另设空白组作为对照。 结果 实验组家兔呼吸变为深快，气管内有粉红色泡沫液体流出，并用听诊器听诊肺部有湿性罗音出现。治疗组家兔因抢救无效死亡。空白组家兔无明显变化。 结论 静脉大量滴注生理盐水并注射肾上腺素可导致急性肺水肿。

关键词：肺水肿 生理盐水 肾上腺素 山莨菪碱 静脉注射



一、引言



 肺水肿是由于液体从毛细血管渗透至肺间质或肺泡所造成的。临床上常见的肺水肿是心源性肺水肿和肾性肺水肿。病理上可分间质性和肺泡性两类，可同时并存或以某一类为主。间质性肺水肿大都为慢性，肺泡性可为急性或慢性肺水肿。本实验主要是通过静脉大量滴注生理盐水并注射肾上腺素导致急性心源性肺泡性肺水肿。



二、实验材料与实验步骤



2.1 材料



实验对象：家兔3只，雌雄不限。



实验器材：婴儿称，天平，气管插管及呼吸描记装置，静脉导管及静脉输液装置，颈部小手术器械，听诊器，烧杯，纱布，线，滤纸，兔手术台 

实验药物：生理盐水，

实验目的：

学习哺乳类动物急性实验的常规操作（动物麻醉、手术前固定、手术器械的正确使用、血管与神经的分离、动脉插管、气管插管等技术），掌握动脉血压的直接测量法和呼吸运动的间接测量法。观察某些重要的神经、体液因素对动脉血压和呼吸的作用，以及两个系统功能间的相互影响。

实验原理：

正常情况下，机体的动脉血压保持相对恒定。这种恒定是通过神经体液调节实现的。神经调节主要是心血管反射，其中最重要的是颈动脉窦和主动脉弓压力感受性反射。体液调节最主要的是儿茶酚胺类激素（如肾上腺素和去甲肾上腺素）。同时，机体又是各个系统相互影响的整体，除心血管调节中，还可伴随着其他系统的改变，如呼吸系统、泌尿系统等。

实验动物：家兔

实验器材和药品：PowerLab 8S主机，呼吸换能器，血压换能器，生物电放大器，兔板，手术器械，注射器，手术照明灯，纱布，动脉夹，动脉插管，气管插管，刺激保护电极，1%戊巴比妥钠，生理盐水，1,250单位/ ml肝素，1:10,000去甲肾上腺素，3%乳酸等。

实验步骤： 1. 动物准备：

⑴．家兔捉持、称重和麻醉：家兔的捉持和称重方法参见P12“动物的捉持和称重”。以1%戊巴比妥钠溶液每公斤体重3 ml，从远离耳根部位的耳缘静脉中缓

家兔失血性休克及其实验性治疗

——《医学机能实验学》实验报告

作 者：Aspirin

实验日期：2013年12月18日 院 系：第一临床医学院

专 业：临床医学

实验报告——家兔失血性休克及其实验性治疗

【实验题目】

家兔失血性休克及其实验性治疗

【实验目的】

1. 复制失血性休克的动物模型

2. 观察失血性休克时和抢救过程中动物的功能代谢变化及微循环改变 3. 了解失血性休克的抢救治疗方案

【实验原理】

休克是多种原因引起的，包括大出血、创伤、中毒、烧伤、窒息、感染、过敏、心脏泵功能衰竭等，以机体微循环功能紊乱为主要特征，并可导致多器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。失血导致血容量减少，是休克常见的病因。休克的发生与否取决于失血量和失血速度，当血量锐减，如外伤引起的出血、消化性溃疡出血、食管曲张静脉破裂、妇产科疾病所引起的出血等，超过总血量的25%~30%，超出机体代偿的能力，即可引起心排血量和平均动脉压下降而发生休克。

根据失血性休克过程中微循环的改变，将休克分为三期：休克

家兔呼吸功能不全实验

一、实验目的

1．观察血液中化学因素（PCO2、PO2、H+）的改变对家兔呼吸运动（频率、节律、幅度）的影响，探讨其作用机制。

2.通过造成动物窒息、气胸和肺水肿，以复制通气功能障碍、气体弥散障碍及肺泡通气与血流比例失调所引起的Ⅰ型或Ⅱ型呼吸功能不全模型。 二、实验动物

家兔，体重2.00kg，性别：雄。 三、实验药品及器材

药品：20%乌拉坦，盐酸利多卡因（批号：1304125），125U/ml肝素溶液（批号：1212010），油酸。

器材：手术器械，注射器（1ml、5ml、10ml、20ml、50ml），动脉导管，压力换能器，Y型玻璃气管插管，HX200型呼吸流量换能器，RM6240多道生物信号采集处理系统，头皮针，动脉夹，兔手术台，听诊器，血气分析仪。 四、实验方法

1.麻醉：抓取成年家兔一只，称重（2.00kg），于耳缘静脉缓慢注入20%乌拉坦10ml（0.5ml/100g*2.00=10.00ml)，作全身麻醉。家兔未完全麻醉，后补注2ml乌拉坦，2min后家兔耳朵下垂，角膜反射明显消失，四肢瘫软，止血钳夹紧无疼痛反射,视为麻醉完全，推注3ml肝素抗凝。将家兔仰卧位固定在手术台上，用牙线将家兔牙齿固定在兔手术台

家兔呼吸功能不全实验

一、实验目的

1．观察血液中化学因素（PCO2、PO2、H+）的改变对家兔呼吸运动（频率、节律、幅度）的影响，探讨其作用机制。

2.通过造成动物窒息、气胸和肺水肿，以复制通气功能障碍、气体弥散障碍及肺泡通气与血流比例失调所引起的Ⅰ型或Ⅱ型呼吸功能不全模型。 二、实验动物

家兔，体重2.00kg，性别：雄。 三、实验药品及器材

药品：20%乌拉坦，盐酸利多卡因（批号：1304125），125U/ml肝素溶液（批号：1212010），油酸。

器材：手术器械，注射器（1ml、5ml、10ml、20ml、50ml），动脉导管，压力换能器，Y型玻璃气管插管，HX200型呼吸流量换能器，RM6240多道生物信号采集处理系统，头皮针，动脉夹，兔手术台，听诊器，血气分析仪。 四、实验方法

1.麻醉：抓取成年家兔一只，称重（2.00kg），于耳缘静脉缓慢注入20%乌拉坦10ml（0.5ml/100g*2.00=10.00ml)，作全身麻醉。家兔未完全麻醉，后补注2ml乌拉坦，2min后家兔耳朵下垂，角膜反射明显消失，四肢瘫软，止血钳夹紧无疼痛反射,视为麻醉完全，推注3ml肝素抗凝。将家兔仰卧位固定在手术台上，用牙线将家兔牙齿固定在兔手术台

实验 家兔呼吸运动的调节

【目的】

1、 观察血液中化学因素（PCO2、PO2、和〔H+〕）改变对家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的影响，初步探讨其作用部位，并分析机制。观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用，初步探讨其机制。

2、 掌握气管插管术和神经血管分离术。

【材料和方法】 1、材料

家兔；手术台，手术器械；20ml和1ml注射器，橡皮胶管；装有CO2的气袋；生理盐水，氨基甲酸乙酯，乳酸；呼吸换能器，微机生物信号采集处理器系统 2、方法

2.1 实验系统连接及参数设置 用胶管连接流量头与气管插管，流量头连接呼吸流量换能器。用胶管连接呼吸换能器测压口和气管插管，呼吸换能器输出线接微机生物信号处理系统。启动系统软件，在系统软件窗口设置仪器参数。 2.2手术准备

2.2.1麻醉固定 家兔称重后，按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。待兔麻醉后，将其仰卧，先后固定四肢及兔头。

2.2.2手术 剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6～7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管及与气管平行的左、右血管神经鞘，细心分离两侧鞘膜内迷走神经，在迷走神经下穿线备用。分离气管，

实验十一 家兔呼吸运动的调节

一、实验目的

1. 学习记录家兔呼吸运动的方法。 2. 观察多种因素对呼吸运动的影响。

二、实验原理

人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地、有节律地进行，是由于体内调节机制的存在。体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同部位的感受器、反射地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。

三、动物与器材

1.实验动物：家兔

2.实验器材：兔体手术台、 手术器械、 张力传感器、 PowerLab信号采集系统、Y型气管插管、 20ml与1ml注射器、 橡皮管(长1.5m,内径1cm)。 3.实验试剂：生理盐水、2%戊巴比妥钠、尼可刹米、1%乳酸。

四、实验方法与步骤

1.家兔麻醉

称重—麻醉（2%戊巴比妥钠，2ml/kg，耳缘静脉注射）—固定（仰卧位固定） 2.手术分离颈部气管和神经

颈部皮肤切口6-7cm——钝性分离颈部肌肉层——做“T”形切口插入气管插管——分离双侧迷走神经 3.分离剑突软骨

切开皮肤，分离表面组织使剑突软骨和骨柄暴露，金冠剪剪去一段剑突软骨的骨柄，使剑突软骨与胸骨完全分离，但保留下方的膈肌片。

4.打开Powerlab信息采集系统，用金属钩钩住游离的剑突软骨，连

实验5-2 家兔呼吸运动的影响因素观测

一、 目的要求

1. 学习记录家兔呼吸运动的方法。

2. 观察并分析肺牵张反射及其他因素对呼吸运动的影响。

二、基本原理

人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地、节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。正常节律性呼吸运动是在中枢神经系统参与下，通过多种传入冲动的作用，反射性调节呼吸的频率和深度来完成的。体内外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。

三、实验材料

家兔，家兔手术台，手术器械，带输液管的粗针头，张力传感器与滑轮或，压力传感器，生理信号采集系统，20ml注射器，橡皮管（长1.5m，内径1cm），纱布，3%乳酸溶液，50mg/ml尼可刹米注射液，生理盐水。

四、方法与步骤

依实验4-8的方法，将动物麻醉、固定，进行颈部气管及神经分离术，插入气管插管，分离出一侧颈总动脉和双侧迷走神经，穿线备用。

1. 剑突软骨手术。

2. 开启计算机采集系统。 3. 将系有长线的金属钩，钩住游离的剑突软骨中间部位，线的另一端通过万能滑轮系

于张力传感器的应变梁上，然后把张力传感器与采集系统第1通道连接。

4. 将粗针头上的输

家兔呼吸功能不全实验

一、实验目的

1．观察血液中化学因素（PCO2、PO2、H+）的改变对家兔呼吸运动（频率、节律、幅度）的影响，探讨其作用机制。

2.通过造成动物窒息、气胸和肺水肿，以复制通气功能障碍、气体弥散障碍及肺泡通气与血流比例失调所引起的Ⅰ型或Ⅱ型呼吸功能不全模型。 二、实验动物

家兔，体重2.00kg，性别：雄。 三、实验药品及器材

药品：20%乌拉坦，盐酸利多卡因（批号：1304125），125U/ml肝素溶液（批号：1212010），油酸。

器材：手术器械，注射器（1ml、5ml、10ml、20ml、50ml），动脉导管，压力换能器，Y型玻璃气管插管，HX200型呼吸流量换能器，RM6240多道生物信号采集处理系统，头皮针，动脉夹，兔手术台，听诊器，血气分析仪。 四、实验方法

1.麻醉：抓取成年家兔一只，称重（2.00kg），于耳缘静脉缓慢注入20%乌拉坦10ml（0.5ml/100g*2.00=10.00ml)，作全身麻醉。家兔未完全麻醉，后补注2ml乌拉坦，2min后家兔耳朵下垂，角膜反射明显消失，四肢瘫软，止血钳夹紧无疼痛反射,视为麻醉完全，推注3ml肝素抗凝。将家兔仰卧位固定在手术台上，用牙线将家兔牙齿固定在兔手术台