机能学实验家兔呼吸运动的调节实验麻醉

实验 家兔呼吸运动的调节

【目的】

1、 观察血液中化学因素（PCO2、PO2、和〔H+〕）改变对家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的影响，初步探讨其作用部位，并分析机制。观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用，初步探讨其机制。

2、 掌握气管插管术和神经血管分离术。

【材料和方法】 1、材料

家兔；手术台，手术器械；20ml和1ml注射器，橡皮胶管；装有CO2的气袋；生理盐水，氨基甲酸乙酯，乳酸；呼吸换能器，微机生物信号采集处理器系统 2、方法

2.1 实验系统连接及参数设置 用胶管连接流量头与气管插管，流量头连接呼吸流量换能器。用胶管连接呼吸换能器测压口和气管插管，呼吸换能器输出线接微机生物信号处理系统。启动系统软件，在系统软件窗口设置仪器参数。 2.2手术准备

2.2.1麻醉固定 家兔称重后，按1g/kg体重剂量耳缘静脉注射200g/L氨基甲酸乙酯。待兔麻醉后，将其仰卧，先后固定四肢及兔头。

2.2.2手术 剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6～7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管及与气管平行的左、右血管神经鞘，细心分离两侧鞘膜内迷走神经，在迷走神经下穿线备用。分离气管，

家兔呼吸运动的调节

20122501002 生物科学二班 朱慧兴

1. 实验目的

1.1 学习家兔呼吸运动的测定方法；

1.2 观察并分析牵张反射以及影响呼吸运动的各种因素.

2. 实验原理

呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映.在不同生理状态下，呼吸运动所发生的适应性变化有赖于神经系统的反射性调节，其中较为重要的有呼吸中枢、肺牵张反射以及外周化学感受器的反射性调节.因此，体内外各种刺激，可以直接作用于中枢部位或外周的感受器反射性地影响呼吸运动.

3. 实验对象与实验材料

家兔 常规手术器械、手术刀、手术剪、镊子、眼科剪、金冠剪、玻璃分针、棉花、纱布、棉线、小弯钩、烧杯、污物缸、兔手术台、塑料绳、长塑料管（1.5m)、棉签、20ml注射器、5ml注射器、1ml注射器、照明灯、保护电极、滑轮、支架、PowerLab生理实验系统、气管插管、张力传器感、麻醉剂（2%戊巴比妥钠 2ml/Kg ）、生理盐水、50mg/ml尼可刹米注射液、其他溶液如1%乳酸溶液等.

4. 实验步骤

4.1 麻醉：2%戊巴比妥钠；2ml/kg体重；耳缘静脉注射. 4.2 固定（仰式）、剪毛、剪颈部皮肤4~5cm，钝性分离颈部肌肉等组织，剪颈部皮毛和胸部剑突位置皮毛.

实验十一 家兔呼吸运动的调节

一、实验目的

1. 学习记录家兔呼吸运动的方法。 2. 观察多种因素对呼吸运动的影响。

二、实验原理

人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地、有节律地进行，是由于体内调节机制的存在。体内、外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同部位的感受器、反射地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。

三、动物与器材

1.实验动物：家兔

2.实验器材：兔体手术台、 手术器械、 张力传感器、 PowerLab信号采集系统、Y型气管插管、 20ml与1ml注射器、 橡皮管(长1.5m,内径1cm)。 3.实验试剂：生理盐水、2%戊巴比妥钠、尼可刹米、1%乳酸。

四、实验方法与步骤

1.家兔麻醉

称重—麻醉（2%戊巴比妥钠，2ml/kg，耳缘静脉注射）—固定（仰卧位固定） 2.手术分离颈部气管和神经

颈部皮肤切口6-7cm——钝性分离颈部肌肉层——做“T”形切口插入气管插管——分离双侧迷走神经 3.分离剑突软骨

切开皮肤，分离表面组织使剑突软骨和骨柄暴露，金冠剪剪去一段剑突软骨的骨柄，使剑突软骨与胸骨完全分离，但保留下方的膈肌片。

4.打开Powerlab信息采集系统，用金属钩钩住游离的剑突软骨，连

家兔呼吸功能不全实验

一、实验目的

1．观察血液中化学因素（PCO2、PO2、H+）的改变对家兔呼吸运动（频率、节律、幅度）的影响，探讨其作用机制。

2.通过造成动物窒息、气胸和肺水肿，以复制通气功能障碍、气体弥散障碍及肺泡通气与血流比例失调所引起的Ⅰ型或Ⅱ型呼吸功能不全模型。 二、实验动物

家兔，体重2.00kg，性别：雄。 三、实验药品及器材

药品：20%乌拉坦，盐酸利多卡因（批号：1304125），125U/ml肝素溶液（批号：1212010），油酸。

器材：手术器械，注射器（1ml、5ml、10ml、20ml、50ml），动脉导管，压力换能器，Y型玻璃气管插管，HX200型呼吸流量换能器，RM6240多道生物信号采集处理系统，头皮针，动脉夹，兔手术台，听诊器，血气分析仪。 四、实验方法

1.麻醉：抓取成年家兔一只，称重（2.00kg），于耳缘静脉缓慢注入20%乌拉坦10ml（0.5ml/100g*2.00=10.00ml)，作全身麻醉。家兔未完全麻醉，后补注2ml乌拉坦，2min后家兔耳朵下垂，角膜反射明显消失，四肢瘫软，止血钳夹紧无疼痛反射,视为麻醉完全，推注3ml肝素抗凝。将家兔仰卧位固定在手术台上，用牙线将家兔牙齿固定在兔手术台

家兔呼吸功能不全实验

一、实验目的

1．观察血液中化学因素（PCO2、PO2、H+）的改变对家兔呼吸运动（频率、节律、幅度）的影响，探讨其作用机制。

2.通过造成动物窒息、气胸和肺水肿，以复制通气功能障碍、气体弥散障碍及肺泡通气与血流比例失调所引起的Ⅰ型或Ⅱ型呼吸功能不全模型。 二、实验动物

家兔，体重2.00kg，性别：雄。 三、实验药品及器材

药品：20%乌拉坦，盐酸利多卡因（批号：1304125），125U/ml肝素溶液（批号：1212010），油酸。

器材：手术器械，注射器（1ml、5ml、10ml、20ml、50ml），动脉导管，压力换能器，Y型玻璃气管插管，HX200型呼吸流量换能器，RM6240多道生物信号采集处理系统，头皮针，动脉夹，兔手术台，听诊器，血气分析仪。 四、实验方法

1.麻醉：抓取成年家兔一只，称重（2.00kg），于耳缘静脉缓慢注入20%乌拉坦10ml（0.5ml/100g*2.00=10.00ml)，作全身麻醉。家兔未完全麻醉，后补注2ml乌拉坦，2min后家兔耳朵下垂，角膜反射明显消失，四肢瘫软，止血钳夹紧无疼痛反射,视为麻醉完全，推注3ml肝素抗凝。将家兔仰卧位固定在手术台上，用牙线将家兔牙齿固定在兔手术台

家兔呼吸功能不全实验

一、实验目的

1．观察血液中化学因素（PCO2、PO2、H+）的改变对家兔呼吸运动（频率、节律、幅度）的影响，探讨其作用机制。

2.通过造成动物窒息、气胸和肺水肿，以复制通气功能障碍、气体弥散障碍及肺泡通气与血流比例失调所引起的Ⅰ型或Ⅱ型呼吸功能不全模型。 二、实验动物

家兔，体重2.00kg，性别：雄。 三、实验药品及器材

药品：20%乌拉坦，盐酸利多卡因（批号：1304125），125U/ml肝素溶液（批号：1212010），油酸。

器材：手术器械，注射器（1ml、5ml、10ml、20ml、50ml），动脉导管，压力换能器，Y型玻璃气管插管，HX200型呼吸流量换能器，RM6240多道生物信号采集处理系统，头皮针，动脉夹，兔手术台，听诊器，血气分析仪。 四、实验方法

1.麻醉：抓取成年家兔一只，称重（2.00kg），于耳缘静脉缓慢注入20%乌拉坦10ml（0.5ml/100g*2.00=10.00ml)，作全身麻醉。家兔未完全麻醉，后补注2ml乌拉坦，2min后家兔耳朵下垂，角膜反射明显消失，四肢瘫软，止血钳夹紧无疼痛反射,视为麻醉完全，推注3ml肝素抗凝。将家兔仰卧位固定在手术台上，用牙线将家兔牙齿固定在兔手术台

实验目的：

学习哺乳类动物急性实验的常规操作（动物麻醉、手术前固定、手术器械的正确使用、血管与神经的分离、动脉插管、气管插管等技术），掌握动脉血压的直接测量法和呼吸运动的间接测量法。观察某些重要的神经、体液因素对动脉血压和呼吸的作用，以及两个系统功能间的相互影响。

实验原理：

正常情况下，机体的动脉血压保持相对恒定。这种恒定是通过神经体液调节实现的。神经调节主要是心血管反射，其中最重要的是颈动脉窦和主动脉弓压力感受性反射。体液调节最主要的是儿茶酚胺类激素（如肾上腺素和去甲肾上腺素）。同时，机体又是各个系统相互影响的整体，除心血管调节中，还可伴随着其他系统的改变，如呼吸系统、泌尿系统等。

实验动物：家兔

实验器材和药品：PowerLab 8S主机，呼吸换能器，血压换能器，生物电放大器，兔板，手术器械，注射器，手术照明灯，纱布，动脉夹，动脉插管，气管插管，刺激保护电极，1%戊巴比妥钠，生理盐水，1,250单位/ ml肝素，1:10,000去甲肾上腺素，3%乳酸等。

实验步骤： 1. 动物准备：

⑴．家兔捉持、称重和麻醉：家兔的捉持和称重方法参见P12“动物的捉持和称重”。以1%戊巴比妥钠溶液每公斤体重3 ml，从远离耳根部位的耳缘静脉中缓

生理学-呼吸运动调节实验报告范文

实验且的：

学习呼吸运动的记录方法，观察缺氧、二氧化碳和血中酸性物质增多对呼吸运动的影响。

实验原理：

肺的通气是由呼吸肌的节律性收缩来完成的，而呼吸运动是由于呼吸中枢不断地发放节律性冲动所致。呼吸中枢的紧张性活动，随着机体代谢需要，受许多因素影响。

本实验是向家兔气管插管，使呼出气的一部分经换能器连于记录仪记录呼吸运动，切断迷走神经和施给各种因素，观察呼吸曲线的变化。

实验对象：兔

实验器材和药品：哺乳类动物手术器械一套、兔手术台、气管插管、5 ml 注射器一只、50 cm 长的橡皮管一条、球胆二只、机械—电换能器及生理记录仪、刺激器。20％氨基甲酸乙酯溶液、3％乳酸溶液、CO2 气体、钠石灰、生理盐水、纱布及线等。

实验步骤和观察项目

一、由兔耳缘静脉缓慢注入20％氨基甲酯乙酯（1g／kg），待动物麻醉后，仰卧固定于手术台上。沿颈部正中切开皮肤，分离气管并插入气管插管。分离出颈部两侧迷走神经，穿线备用。

二、记录呼吸运动插入的气管插管的主管接机械—电换

能器，输入到生理记录仪，侧管暴露于大气。通过改变侧管的口径，使主管的输入信号适宜。

三、观察项目

（一）正常呼吸曲线

（二）增加吸入气中的CO2浓度：将装有CO2的球胆通过一细

塑料或

实验5-2 家兔呼吸运动的影响因素观测

一、 目的要求

1. 学习记录家兔呼吸运动的方法。

2. 观察并分析肺牵张反射及其他因素对呼吸运动的影响。

二、基本原理

人体及高等动物的呼吸运动所以能持续地、节律性地进行，是由于体内调节机制的存在。正常节律性呼吸运动是在中枢神经系统参与下，通过多种传入冲动的作用，反射性调节呼吸的频率和深度来完成的。体内外的各种刺激，可以直接作用于中枢或不同的感受器，反射性地影响呼吸运动，以适应机体代谢的需要。肺的牵张反射参与呼吸节律的调节。

三、实验材料

家兔，家兔手术台，手术器械，带输液管的粗针头，张力传感器与滑轮或，压力传感器，生理信号采集系统，20ml注射器，橡皮管（长1.5m，内径1cm），纱布，3%乳酸溶液，50mg/ml尼可刹米注射液，生理盐水。

四、方法与步骤

依实验4-8的方法，将动物麻醉、固定，进行颈部气管及神经分离术，插入气管插管，分离出一侧颈总动脉和双侧迷走神经，穿线备用。

1. 剑突软骨手术。

2. 开启计算机采集系统。 3. 将系有长线的金属钩，钩住游离的剑突软骨中间部位，线的另一端通过万能滑轮系

于张力传感器的应变梁上，然后把张力传感器与采集系统第1通道连接。

4. 将粗针头上的输

呼吸运动调节

1. 学习目标

掌握内容 呼吸中枢的基本部位。呼吸运动的化学感受器性反射调节；动脉血、组

织液或脑脊液中CO2分压、O2分压和H+浓度变化对呼吸的调节作用、作用途径和意义；肺牵张反射的概念、过程和意义。

熟悉内容 延髓基本呼吸中枢和脑桥呼吸调整中枢的基本功能；CO2、H+、O2在呼

吸调节中的相互作用。

了解内容 呼吸节律的形成和高位中枢对呼吸运动的调节作用；呼吸肌本体感受性

反射；咳嗽反射、喷嚏反射。

一、选择题

（一）A型题 【A1型题】

1. 调节呼吸运动的基本中枢位于

A. 脊髓 B. 延髓 C. 脑桥 D. 小脑 E. 中脑 2. 脑桥呼吸调整中枢的主要功能是

A. 促使吸气转为呼气 B. 促使呼气转为吸气 C. 减慢呼吸频率 D. 使吸气时程延长 E. 使呼气时程延长

3. 下列关于肺牵张反射的叙述，错误的是

A. 感受器存在于支气管和细支气管的平滑肌层 B. 正常人平静呼吸时，对呼吸节律起重要调节作用 C. 传入途径是迷走神经