WB实验步骤详细总结
更新时间:2024-05-15 18:56:02 阅读量: 综合文库 文档下载
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蛋白提取(所有操作在冰上进行)
1. 裂解
1) 配裂解液:PMSF=100:1,(裂解液和PMSF在-20℃保存,提前一天4℃解冻)
取2ml裂解液,加20μl PMSF混匀
2) 称取30mg组织,切碎放入标记好的AP管中,加入600μl上述1中液体(加入液
体与组织比例为20:1),冰上静置10min
2. 匀浆
先用超纯水润洗一下匀浆机的钢头,(同时进行几组匀浆时,组间也要润洗钢头) 在匀浆机(在生化室)上每次匀浆10s,两次(间隔5s),冰上静置30min 3. 离心(在基础4楼416室)
1) 自带1ml枪以及蓝枪头和黄枪头,三个1.5的离心管(①,②两个标记,③加少量
超纯水,③号是为了离心平衡,对称放置)
2) 将离心机预冷至4℃为止,以1200×10r/min离心15min 3) 用移液枪将上层清液取出放入①②号管中 4. 变性(上样缓冲液:样品=4:1)
将样品转移至2~3个0.5mlAP管中 加上样缓冲液,100℃变性10min 仪器屏幕:
5. 保存
变性结束后,打开AP管盖放一下气,然后4℃保存,点样是取出即可用
S5 S5 100.0 00:10 00:10 温度(℃) 时间(时:分钟) WB实验步骤
1.
清洗玻璃板:清洗玻璃板后风干,将玻璃板对齐后放入夹中卡紧,操作时要使两玻璃对齐,以免漏胶。
2. 配制分离胶 1) 2)
准备:1ml枪(蓝色枪头),200μl枪(黄色枪头)10μl(白色枪头)
10%分离胶的配置:(用50ml烧杯。1.0mm板配1.5块胶,1.5mm板配2块板) 5.91ml 4.95ml 3.75ml 150μl 150μl 9μl 超纯水 丙烯酰胺(30%)避光保存极易失效 Ph8.8Tris?HCL 10%SDS AP(催化剂促凝作用) TEMED 混合摇匀(用移液枪抽吸混匀液体,不要将液体完全打出防止气泡) 3.
灌胶
沿玻璃板右上角缓慢匀速加入分离胶(用1ml移液枪,不要将移液管内液体完全打出防止气泡)保持液面平稳上升至上方绿色线为止
4.
水封
立即用1ml超纯水进行水封(利用重力把胶压平),如有气泡则用针头吸出防止影响电泳效果,等待20-30min
5.
浓缩胶的配制(5%)
4.13ml 1ml 750μl 60μl 60μl 6μl 超纯水 丙烯酰胺(30%)避光保存极易失效 Ph6.8 Tris?HCL 10%SDS AP(催化剂促凝作用) TEMED 搅拌混匀立即灌胶至溢出,插入梳子(10孔或15孔)凝胶30min或20min 6. 1)
电泳(电泳液最多使用两次)
安装电泳装置
低板对内,上方夹住,往两板中加入电泳液至黑线并观察是否漏液,缓慢拔掉梳子(注意两手平衡拔出防止拔歪)
2) 点样(不易时间过长,防止样品条带扩散) Mark 样品 4μl 8μl (Protern ladder)推荐9μ,实际4μ已经足够 7-10μl均可内参挑齐即可 组数少时尽量靠中间点样,边缘易跑歪 3)
连接电泳仪
电泳池与电泳盖连接:黑对黑,红对红电永池的两个电极插入电极盖孔内,打开开关恒压电泳 先调电压至70mV,跑约20min。(Mark跑开,分出彩带即可) 再调电压至120mV,跑约60min。(不能跑过下面的玻璃板)
注:Mark的条带从红色条带往下依次为:70→55→40→35→20,待测蛋白的分子量再哪一区域就在哪一段剪。用绿色的切板切割待测区域,边缘留点空余,以防止切到条带。放入装有转移液的皿中浸泡 7. 1)
转膜(转移液可用3-4次)
剪四层滤纸(大小与膜相,近可大不可小)浸入转移液皿中。然后再讲其剪成与胶一致大小(胶始终保持湿润) 2) 3)
剪PVDF膜(用上述滤纸,勿用手直接接触PVDF膜),然后用甲醇活化10s以上
“夹三明治”再大塑料盆中加入少量转移液,将夹板、海绵、滤纸、膜均放入浸泡,夹板黑板在下、两层滤纸→胶→膜→两层滤纸(胶的大分子量条带在上方,即在右上方) 4) 5)
安装转膜装置:黑板对黑板,电极黑对黑,红对红。加入转膜液至满(否则仪器无法启动) 打开开关,调节电流至100mA,转膜2h(恒流)盆中加满冰 转膜成功标志:胶上的条带均转移的膜上,胶呈无色 8.
封闭 1)
配制5%脱脂奶粉: 2.5g脱脂奶粉 50mlTBST 2)
小烧杯中混匀加入皿中 将膜取出放入上述加入了5%脱脂奶粉中的皿中常温慢摇60min(转移液回收其余清理掉,转移液可以重复利用2次)
9.
一抗 1)
用TBST配,每一格加5ml TBST,再分别加入抗体 抗体的量: 2l(Psmad2l)免抗 2l(Psmad2l)免抗 Jnk免抗 内参(小鼠抗GAPH)单抗,中杉金桥 2) 3) 10. 洗脱
用TBST在皿中洗脱,摇床10min每次,洗三次。 11. 二抗
1)
用3%的脱脂奶粉 1.5g的脱脂奶粉
50mlTBST 2)
每格吸入5ml 3%脱脂奶粉,抗体与奶粉比例均为1:5000,即加入1μl
注意:吸入微升时,一定要检查是否吸到液体,一抗用鼠抗则二抗用鼠抗,一抗用免抗二抗用免抗 3) 12. 洗脱
用TBST在皿中洗脱,摇床10min每次,洗三次。
膜分别加入小格,慢摇1-2h(常温)
小烧杯中混匀加入皿中 膜上用圆珠笔标记,分别放入小格中(正面朝上) 4℃冰箱中,慢摇过夜(正面朝上,摇床416室)
1:1000 1:500 1:1000 1:5000 5μl:5ml 10μl:5ml 5μl:5ml 1μl:5ml 58(分子量) 58 双带 36 13. 显影:
1) 2) 3) 4)
U盘
A液,B液(显影液。4℃保存)
所需物品 200μl枪+枪头(黄) 膜(置于皿中)
开机后自动预冷,温度降到1-20℃才可 显影液现配现用(A液:B液=1:1)
膜正面朝上放于暗箱,(即大分子量再左上角)用移液枪吧显影液均匀涂在膜上
先点击自动曝光,看下效果,显示不清晰再手动该曝光时间,内参一般显影15s(影像的条带粗细深浅一致则说明已调齐)内参好说明各步实验操作均无误,目的蛋白结果好坏就取决于抗体的专一性。
5) 每张图保存多张不同清晰度的以备用,拷贝至U盘
试剂配方:
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