第4讲典型环境污染物的表观遗传效应学

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典型环境污染物的表观遗传效应

浙江大学 金永堂

随着人类社会城镇化和工业化程度的逐步提高,人类环境污染及其健康效应日益引起人们关注。大气、水体、土壤及食物等污染严重威胁着人类健康,导致免疫、神经、呼吸等多个系统的疾病危险性增加,尤其与心脑血管疾病、糖尿病及癌症等复杂疾病的发生密切相关。人们不仅从分子生物学和遗传学的角度研究了环境污染引发疾病的机制,而且近十年来环境因素导致的表观遗传变化,已经成为环境污染与疾病关联研究的重要生物标记。

一、表观遗传及主要机制

表观遗传学研究不发生DNA序列变化的状况下基因表达发生遗传改变的一门新兴学科。表观遗传的主要机制包括DNA甲基化、组蛋白修饰、遗传印记丢失和非编码RNA。在环境因素影响下,表观遗传能够改变基因组功能。表观遗传变化的重要特征是既可在亲子细胞间遗传(有丝分裂遗传)、也可在代间遗传(减数分裂遗传)。表观遗传可以解释具有相同DNA的细胞或有机体可能具有显著不同的表型。环境暴露可能改变表观遗传调节的水平和范围。另外,基因表达的表观遗传调节与许多疾病的病因机制有关,特别是恶性肿瘤。故DNA的表观遗传修饰可为早期癌症检测、预测和治疗提供新的生物标记。而且,表观遗传变化的可逆性也为制订疾病有效的防治策略和用药方案提供了可能性。

在环境表观遗传学研究领域,DNA甲基化及组蛋白修饰已经成为基因表达调控机制的研究热点。DNA甲基化指DNA序列中甲基团共价结合或脱离胞嘧啶核苷酸的过程。甲基化过程受到家族特异酶即DNA甲基化转移酶(DNMTs)的控制。对于脊椎动物而言,甲基团仅结合在鸟嘌呤前的胞嘧啶上(即CpG双核苷酸上)。基因组中富含CpG序列的部位被称为CpG岛。实际上,CpG岛存在于基因组半数基因的启动子部位。就染色质修饰而言,染色质由组蛋白和DNA组成。组蛋白是染色质的蛋白组分,其上缠绕着DNA。组蛋白八聚体(组蛋白与DNA的复合体即核小体)上有许多伸出来尾巴。影响组蛋白尾巴的翻译后修饰有几种类型,包括甲基化、乙酰化、磷酸化和泛素化。这些修饰影响DNA和组蛋白间的交互作用,导致基因转录、DNA修复、DNA复制甚至染色体结构发生变化。DNA甲基化与组蛋白修饰间也可能发生联合作用。

相当长的一段时间内,人们都认为蛋白质是由细胞核内DNA序列编码的。虽然,从本质上讲,生物体内的每个体细胞包含着相同的未经加工过的遗传信息,但是,时间或环境的影响改变了单个细胞或组织的功能,同时伴随或者不伴随辅助因子及其他修饰的作用。现在清楚的是,哺乳动物基因组不仅包含DNA的基本序列信息,同时也受表观遗传学机制控制。

表观遗传学机制主要包括组蛋白尾部翻译后修饰以及DNA的化学修饰。因为不同的修饰会对染色质结构产生有利或有害的影响,因此,细胞染色质结构是可以反映许多不同信号通路的净效应,而这些信号通路是由不同刺激激发的。下面详细介绍具体的表观遗传修饰,如:DNA甲基化﹑组蛋白修饰和非编码RNA。表观遗传变化的分子机制见图。

(一)DNA甲基化

CpG岛DNA甲基化是研究最多的表观遗传学修饰。胞嘧啶第5位碳原子位置共价添加一个甲基基团有可能扰乱转录因子的结合,以及通过影响DNA大沟来阻挠基因表达有关的机制。因此,DNA甲基化可能抑制转录因子与它控制的同源反应元件的相互作用,或者促进甲基结合蛋白与随后的空间阻滞因素结合,这些都有可能反过来抑制DNA与转录因子的相互作用。这些相互作用,连同其他招募到胞嘧啶甲基化区域的蛋白质复合体,使得DNA甲基化通常与有着相对复杂基因组的生物体中的转录沉默有关。如前所述,启动子高甲基化与转录沉默有关几乎是一个教条;但是,最近的研究表明,调节蛋白复合物,最终调节基因表达,而与DNA甲基化无关。

图 表观遗传变化的分子机制: (a)表观遗传沉默之前的DNA,组蛋白复合体(H)被乙酰化(连接其上的小球),其上伸出的CpG岛未被甲基化;(b)赖氨酸特异脱甲基酶1(LSD1)和异染色质蛋白质1(HP1)结合到组蛋白复合体上;(c)LSD1和HP1募集DNA甲基化酶(DNMT3a/DNMT3b)且CpG岛被甲基化,减少转录因子的结合和基因表达;(d)甲基化CpG岛组合蛋白(MBP)结合到甲基化的CpG岛上并募集组蛋白去乙酰化酶(HDAC);(e)乙酰化组氨酸浓缩导致DNA因表观遗传变化而失活。

事实上,哺乳动物中基因组CpG岛一般不具有代表性而且是非随机发生的。与非甲基化胞嘧啶相比,甲基化的胞嘧啶自发脱氨基形成胸腺嘧啶的频率更大。因为胸腺嘧啶是DNA中碱基自发形成的,修复胸腺嘧啶对细胞而言是一个两难的境地,如果不解决将导致自发性C:G→T:A型突变。增加脱氨率和有问题的修复方案这两方面原因相结合,使得哺乳动物的基因组偏向逐步废弃一些CpG二核苷酸。想必那些剩下的CpG二核苷酸已被生物选择及传递重要的生物学意义。照此说来,CpG序列与印迹基因﹑转座子及基因转录起始位点有关。

如前所述,基因组DNA甲基化模式的建立发生在生物体发长过程中,是动态的但是也是严格监管的过程。事实上,DNA甲基化对正常生长而言是至关重要的,也是分化的细胞存活所必需的。此外,人们还提出,特定启动子或整个基因组的甲基化状态是甲基化和去甲基化反应之间的平衡,也是环境和生理信号之间的平衡。受精卵是这种动态平衡的一个突出例子。在受精卵中,母亲和父亲的原核融合前,若用5 -甲基胞嘧啶免疫组化的方法来测量,两种基因组DNA甲基化水平大致相当。在受孕后的头几个小时,父系基因组正积极地去甲基化,在前几个有丝分裂中也保持着去甲基化状态,而在接下来的分裂中母系基因组却被动地去甲基化。植入后,融合核中的胞嘧啶核苷酸以细胞及组织特异性的方式重新甲基化,该过程由从头甲基化酶催化,有学者提出,该过程的改变可导致成年才发病的疾病以及老化过程。

一些化学性﹑营养性或者生物性诱导效应已被证明可以影响DNA甲基化。例如,己烯雌酚(DES)影响特定基因(c-fos蛋白和乳铁蛋白)甲基化模式,这可以导致新生期处理后的小鼠基因异常表达,增加其子宫癌的发病率。有趣的是,这些效应也可以遗传。此外,对于降压药肼屈嗪和抗心律失常药物普鲁卡因,人们对其靶器官和机制也有了较好的了解,体外实验随即发现,这两种药可以阻止T细胞DNA甲基化。我们将在下面详细介绍关于黄色条纹刺豚鼠模型和大鼠中烯菌酮的跨代效应研究的例子。

(二)组蛋白修饰

如前所述,组蛋白的N-端是翻译后共价修饰的位点。核心组蛋白的乙酰化和甲基化40年前被首次描述,当时这种现象被认为与基因表达及染色质重塑的有利或有害的改变有关。在单个组蛋白内已对位于特定氨基酸修饰的定位进行了广泛的研究,研究还包括其他修饰的表征,其中有组蛋白磷酸化,泛素化,SUMO化,ADP-核糖基化,生物素及脯氨酸异构化。据推测,其他形式的修饰也可能存在,而且这些修饰的组合也能影响基因表达与染色质重塑。组蛋白特定的赖氨酸残基乙酰化一直以来被认为与基因表达增加有关。组蛋白乙酰转移酶(HAT)介导的组蛋白乙酰化,可导致染色质开放,RNA聚合酶及转录因子的聚集。这个过程可由组蛋白尾部去乙酰化而逆转,该过程由组蛋白去乙酰化酶(HDACs)介导,从而

导致基因沉默。

这些修饰能影响染色质结构,进而影响基因表达,是通过顺效应的方式。顺效应定义为组蛋白尾巴物理性质的修饰可以改变核小体结构或与染色体的相互作用。例如,静电荷或尾部结构的改变可以影响DNA和组蛋白之间的关联。染色质改变的典型例子是组蛋白乙酰化,已作为这样一种机制,消除带正电,因组蛋白尾巴导致与带负电DNA的松散联系。这种宽松的构象允许特定的转录因子与同源反应元件的相互作用。人们认为,大块加合物,如:泛素和ADP-核糖,以大致相同的方式,当附着在组蛋白尾巴时,能显著抑制核小体复合物的压实。

此外,组蛋白修饰,也能够以反效应的方式改变染色质构象,这可以改变其他蛋白质与DNA修饰酶的相互作用。具体来说,识别一个特定的共价标记可能会促进蛋白复合物的聚集,这可能最终会改变染色质构象。bromodomains,一个保守的具有110个氨基酸的区域,代表着一系列与染色质相互作用的蛋白质,专门识别乙酰化的组蛋白以及促进其与染色质重塑复合物结合。甲基化的组蛋白赖氨酸残基可以被染色体域的DNA结合蛋白识别,可永久保持区域的组蛋白甲基化。在任何情况下,一个最初的表观遗传修饰是很重要的,可以导致染色质构象的区域改变以及随之而来的基因表达的改变。

组蛋白的具体修饰及机制的讨论,包括它们的识别以及表征,已超过了这篇综述的范围。然而,理解组合性的﹑协调的调控机制,可能会提供更多的表观遗传调控的生物学的理解。大量的研究已经表明,已经研究的这些组蛋白尾部的修饰是一个动态过程,通过一系列酶促反应来添加以及移除。目前,“组蛋白编码假说”已被提议作为一种手段来表征基因组区域的功能,作为组蛋白状态的结果。虽然在某些情况下,这种方法能准确预测基因和组蛋白的状态,但是没有一种代码是可以跨门类通用的。事实上,表观基因组动态性本质可能会由于过于复杂而简化成少数起作用的“规律”。进一步的工作将需要更好地界定表观基因组中的模式和类似之处,并与生物功能等同起来。

外源性药物已被证明能影响组蛋白修饰酶。事实上,一个重要的新兴主题可能是环境物质或者是药品,可以改变表观遗传修饰,但以前不知道它们能影响基因表达。例如,丙戊酸是一种抗癫痫处方药物,被认为是γ-氨基丁酸(GABA)受体激动剂,最近被证明能够影响表观基因组,它可以直接导致染色质构象的改变。此外,丙戊酸被重新分类,作为一种抗癌药物并进入临床试验,由于它有组蛋白去乙酰化酶(HDAC)抑制剂的活性,能够重新激活抑癌基因。未来的化学品的测试,可能会涉及在一系列药理和毒理实验中评估组蛋白修饰酶的活性。

(三)RNA干扰与microRNA

非编码RNA作为遗传调控机制的出现,大大改变了基因组中“垃圾”DNA的概念,它代表大于97%的总核DNA。事实上,这导致了一场辩论,针对目前的基因定义是否过时,以及补充的生物学的中心法则(DNA-RNA-蛋白)是否正确。如今,通过非编码RNA的行动,中心法则已被建议改写为DNA-非编码RNA,它能够影响染色质结构,反过来又可以影响基因的功能。RNA干扰(RNAi)的活性是一个过程,是宿主生物借以将双链RNA降解成小片段,导致转录后基因表达的沉默。另外,转录沉默的机制也被归结到RNA干扰,从而导致浓缩型染色质的形成。在几乎所有的有机体从酵母,四膜虫,植物,果蝇到哺乳动物,这些基因的调节作用已被记录在案。非编码RNA作为染色质模板是建立和维持特定的染色质状态的关键,也通过沉默侵入DNA的区域,如转座子和逆转录病毒,来维持基因组的完整性。此外,在染色体的着丝粒异染色质区域稳定的过程,在蛋白质复合体中也是依赖非编码RNA的。

总之,非编码RNA的进一步理解发现,它在细胞﹑遗传和染色体分离与稳定的表观遗传学调控中有着重要作用。但可以肯定的是,未来的研究将继续阐明非编码RNA的生物学作用,一些研究人员已经确定了它们在癌症﹑营养压力以及改变对药物反应中的作用。同样,microRNA可能会改变与外源性暴露有关的基因表达,抑或外源性暴露也可能会影响microRNA的表达,两者可能有助于个体对化学物或药物暴露个体差异的解释。显然,对非编码RNA的日益理解将有助于理解其对正常生物控制以及外源化学物暴露的影响。

二、典型环境污染物与表观遗传

环境中许多理化因素的表观遗传效应已经得到初步阐明,显示了表观遗传学机制在环境相关疾病发生过程中的重要作用。随着多个环境因素表观遗传效应研究的不断深入,环境相关疾病高危人群的确定、早期筛查与诊断、预防与治疗必将成为可能。

(一)有机污染物与表观遗传 1.多环芳烃的表观遗传效应

多环芳烃(PAHs)是一种常见的致癌物,吸烟、生活环境污染或食用污染食物的人群比普通人群接触更多的PAHs,癌症及其他疾病的发病率也相对升高。在实验研究或流行病学调查中,苯并[a]芘(B[a]P)常常作为PAH暴露的指示物,用来揭示PAH对人类健康的影响。Pavanello等以49名非吸烟的焦炉工人(暴露于高浓度的PAHs)为病例组,以43名非吸烟接待员为对照组进行病例对照研究发现,与对照组相比,病例组外周血全基因组高甲基化,p53、HIC1基因启动子低甲基化,提示这可能与PAHs暴露有关。进一步的动物实验发现,小鼠暴露于城市及工业污染源3周后,其精子细胞全基因组有高甲基化的现象,此外小鼠肺中的PAH-DNA加合物水平升高,证实了与小鼠PAHs暴露有关。将小鼠胚胎的成纤

维细胞长期慢性暴露于B[a]P后,检测发现其全基因组高甲基化,这与DNMT1的过度表达有关[4],支持Damiani等人的观点。

人支气管上皮细胞暴露于反式苯并[a]芘二醇环氧化物(anti-BPDE)后,miR-320和miR-494高效表达。进一步研究发现,在B[a]P处理后的小鼠支气管上皮细胞中,miR-320 和 miR-494的表达水平会影响细胞G1期分布。同时,miR-320 和 miR-494的抑制剂能完全阻止B[a]P诱导的细胞周期阻滞,因此miR-320 和 miR-494的表达增加可能是G1期调控异常的信号,但与B[a]P暴露有关的miRNAs功能有待进一步研究。

PAH暴露的早期生物学标志可以作为减少暴露及降低危害的指标。ACSL3 基因5′-CGI甲基化状态可能与PAH暴露引起的哮喘相关,可作为PAH暴露的候选生物标志物。由于PAH可经过胎盘影响后代的健康,因此也可预测有PAH暴露史的母亲所生后代患哮喘的风险。有研究发现,吸烟肺癌患者的PBLs中有p53低甲基化现象,并认为p53低甲基化有预测患肺癌风险的作用。Pavanello等人研究发现,暴露于高浓度B[a]P的职业环境中的健康个体也有p53低甲基化的现象,患肺癌的风险明显升高。目前,BaP暴露相关的DNA甲基化及组蛋白乙酰化的图谱已经出现,ChIP-on-chip技术将有助于描述外界环境的变化如何影响细胞和生物体的表观遗传调控以及细胞对暴露的反应,人群及体外研究将有助于筛选PAHs暴露有关疾病的生物标志并揭示其致病机制。

2.苯的表观遗传效应

苯是一种普遍存在的有机污染物,在交通污染和烟草中大量存在,已有确切证据表明苯暴露会导致人类白血病的发生,此外骨髓增生异常综合征(MDS)和急性髓系白血病(AML)与苯的暴露密切相关,且患AML风险性与苯暴露的水平呈现出相关性。但苯的致病机制尚未完全清楚,可是,表观遗传学变化有助于解释其致病机制。

Bollati等对暴露于低浓度苯的加油站服务员和交通警员的研究发现,其外周血全基因组甲基化水平降低﹑p15基因高甲基化及MAGE-1基因低甲基化。这是首次报道低剂量苯暴露与DNA甲基化存在关系,且在健康的研究对象中发现了肿瘤细胞异常的表观遗传学改变,但该研究并不能排除其他交通污染物暴露对DNA甲基化的影响。最近一项以6个暴露于苯的工人(2男4女)为病例组,4个未有苯暴露的工人(2男2女)为对照组的病例对照研究表明,外周血DNA中800多个基因DNA甲基化图谱中,检测发现很多CpG位点的甲基化改变,如:RUNX3基因(骨髓增生性疾病与其表达的改变相关)甲基化水平降低,MSH3(维持基因组稳定性的关键基因之一)甲基化水平升高。研究还发现苯暴露对基因甲基化的影响似乎有性别差异。进一步的体外试验发现,苯的活性代谢产物对苯二酚(HQ)能引起人类淋巴母细胞株TK6细胞全基因组低甲基化,IL12基因高甲基化﹑ RUNX1T1及

MAGEA1基因低甲基化,这些支持了前人的研究结果。此外,苯暴露还与miR-154, miR-487a,miR-493-3p,miR-668表达下降有关。

(二)金属及其化合物与表观遗传

金属在生活中和工业上都有广泛应用,是人类活动中不可或缺的物质,然而金属污染同样令人关注。与有机污染物不同,金属污染物不能被生物体降解并可蓄积达到对人体有害的水平,对机体产生细胞毒性和遗传毒性效应,甚至诱导癌症发生。一直以来科学家认为金属致癌性与遗传机制密切相关,但近年的研究表明表观遗改变也是其致病致癌的重要机制。 1.镍的表观遗传效应

镍是环境中和工业上具有严重危害的金属污染物,长期接触会产生遗传毒性效应和表观遗传损伤。镍的广泛应用是长期接触的基础,生活中使用的硬币、电池及佩戴的首饰均含有大量镍,职业性电镀工人和焊接工人也会长期接触到镍,因此镍的危害不容忽视。 镍与DNA甲基化:在中国仓鼠G12细胞中采用转基因大肠杆菌gpt活性基因做模型,发现在接触镍化合物后,DNA甲基化改变可引起其表达失活;虽然镍诱发DNA高度甲基化的机制还不确定,但一种可能的模式—镍取代镁,增加染色质浓缩,引发从头合成DNA甲基化。 在体内试验中,把硫化镍同时注射入野生型C57BL/6小鼠和肿瘤抑制基因p53杂交小鼠中,所有小鼠体内都产生恶性组织细胞瘤,且所有肿瘤细胞内均发生p16启动子高度甲基化。在体内和体外试验中,脆性组氨酸三联体基因(FHIT)是另一种接触过镍后会沉默的肿瘤抑制基因。在癌症和癌前病变中,常可以见到FHIT表达减少或缺失,且FHIT蛋白短缺与其mRNA转录的缺失是一致的。

广州化学致癌研究所在研究结晶型NiS恶性转化及成瘤16HBE细胞中hMSH2基因启动子甲基化状态及其mRNA表达水平时,发现hMSH2基因的启动子区CpG岛存在高度甲基化,且伴有mRNA表达水平下降。这可能是由于镍引起了有害的基因外修饰,即镍结合异染色质内的DNA磷酸主链中的氧原子,诱发了局部DNA甲基化,并且向外扩散到邻近的常染色质区,从而使异染色质附近的肿瘤抑制基因出现沉默。由此可见,镍的致癌作用可能不是由于镍所引发的基因突变,而是因为镍使重要的癌相关基因高度甲基化造成的。这些研究表明,表观遗传改变是镍致癌作用的主要机制。

镍与组蛋白乙酰化:Costa等人的实验表明镍离子可以抑制组蛋白H4乙酰化,增加H3K4二、三甲基化和H3K9一、二甲基化,同时他们还研究了镍暴露浓度、暴露时间与甲基化的关系。

镍离子可以降低酵母和哺乳动物细胞组蛋白H4乙酰化水平。将A549细胞暴露于Ni3S2溶液2d后,提取出组蛋白,利用SDS-PAGE、Western Blot和抗体特异性方法检测组蛋白乙

酰化水平,结果显示组蛋白乙酰化程度降低[24]。在复杂的细胞过程中,组蛋白乙酰化状态起着重要的调控作用,如组蛋白去乙酰化升高会导致染色体结构改变、转录抑制和基因沉默等,这些与癌症的发生有关。

在研究镍与组蛋白H3K4的实验中,同样以A549为实验细胞系,分成对照组与高、低剂量暴露组并培养24h。经统计分析P<0.05,即暴露组与对照组对组蛋白的影响有明显差异,镍离子会使组蛋白甲基化明显增加。检测发现,镍离子可以增加H3K4二、三甲基化,而对一甲基化几乎无影响。在镍影响H3K9的实验中,将A549细胞暴露在NiCl2 溶液中24h后,用Western blot、Chip 技术分析,结果表明:镍离子会增加H3K9一、二甲基化。

2.砷的表观遗传效应

砷是一类对人体有害、具有致癌性的类金属,长期接触砷会对人体产生不利影响[22]。接触砷会诱发恶性肿瘤、胃肠道毒性反应、糖尿病、心血管疾病甚至死亡,砷不仅可以导致这些宏观病变,还可以引起染色体结构变化、基因表达异常等微观改变。砷的表观遗传效应主要在影响DNA甲基化与组蛋白乙酰化两方面最为突出。

砷与DNA甲基化:在砷暴露的癌症患者中,能明显观察到全基因组甲基化减少或一些特异性基因启动子甲基化增加。在燃煤污染型砷中毒患者中,病例组患者MGMT基因启动子甲基化率明显高于对照组,且随病情的加重而逐渐增高;同时癌变组MGMT基因启动子甲基化率显著高于非癌变组和对照组;但MGMT基因启动子甲基化增加,mRNA转录水平却会降低;以上结果提示MGMT基因启动子高度甲基化是砷中毒发生、发展乃至诱导肿瘤发生的一个早期事件。

接触砷的人群与对照组相比较,p53基因启动子区有明显的DNA高甲基化,且存在着剂量-反应关系。相对于不接触砷的皮肤癌患者,接触砷的患者p53基因存在着高甲基化,但其甲基化率却不明显。暴露于高浓度砷的患者中可以发现明显的p16基因启动子高甲基化。与镍不同的是,中国仓鼠G12细胞暴露于砷不会引起甲基化和转基因大肠杆菌gpt活性基因失活,这说明砷和镍两种致癌金属是通过不同途径发挥作用的。

砷与组蛋白乙酰化:Hock研究团队在研究无机砷对组蛋白修饰影响的实验中发现,无机砷显著增加HepG2细胞组蛋白H3乙酰化,而对其甲基化没有作用,但砷可以导致A549细胞中组蛋白甲基化改变。

砷影响组蛋白H3K4的试验中,将A549细胞暴露在砷中24h后,利用抗体特异性检测H3K4的一二三甲基化状况,结果为H3K4二、三甲基化增加,一甲基化降低。同时发现暴露于5μM砷的二三甲基化增加程度比1μM的低,由此推断砷的剂量反应关系是非线性的。 组蛋白H3K9可以发生三种甲基化修饰。将A549细胞暴露在砷中24h,随后将组蛋白提

取出来用Western Blot 分析H3K9的甲基化情况。结果为:一、二、三甲基化均增加,免疫荧光染色图也得到同样的结果。砷也能导致正常人支气管上皮细胞(BEAS—2B细胞)的H3K9二甲基化增加,可见这种现象不只出现在一个细胞系中[33]。

H3K27的三甲基化是基因沉默的一个重要标志。以往的研究表明,沉默启动子的H3K27甲基化水平比活化启动子中高,而三甲基化增高预示着基因沉默将会发生。A549细胞暴露在高浓度和低浓度砷中24h后,提取出细胞中的组蛋白用Western Blot 方法分析,结果表明H3K27的甲基化水平均下降。

(三)放射性物质与表观遗传

人类不断暴露在自然界低水平离子辐射中,保护系统则是通过辐射应力激发适应-反应基因的表观遗传重组发挥作用。接触放射性物质后,肺腺癌及其他一些疾病的危险性会增加。肺癌的发病可能是因为肿瘤抑制基因启动子高度甲基化引起了基因失活。氡是最常见的放射性物质,职业性接触氡的工人吸入高浓度的

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Rn会增加肺癌发生的危险度。Palmisano等在

肺腺癌患者的痰细胞中,检测到p16和MGMT高度甲基化,提示p16和MGMT有可能成为氡诱发肺癌的早期分子标记物。在国内某铀矿职业氡暴露人群的痰中检测发现,随着氡子体暴露剂量的增加,p16和MGMT两个基因的甲基化率也呈逐渐上升的趋势,这与Palmisano等的报道结果基本一致。Prueitt等推测,部分吸烟诱导的肺癌是由于患者所吸入香烟中放射性同位素的辐射作用所致。而接触辐射的工人肺癌发生率与p16的失活呈正相关,这暗示香烟中的放射性核素可能与其他化合物反应,从而引发肺癌。以上研究表明,辐射和吸烟都会引起p16失活,而p16失活在癌症发生过程中起着主要作用;香烟中的放射性物质在一定程度上增加了肺癌的危险性,但是相对于化学致癌物等的作用,电离辐射的影响程度还不能确定。

(四)电离辐射与表观遗传

电离辐射是无处不在的,是疾病检测和辅助诊断的重要技术手段,虽然电离辐射对人类有重要的作用但其危害性也值得重视,因此了解电离辐射的损伤机制迫切重要。Mothersill, Bonner 和Kovalchuk实验室已用细胞培养、三维人体组织和动物模型证实了表观遗传学改变在电离辐射效应中的重要作用。Thompson,Scott等人认为实验设计偏倚可掩盖低水平的电离辐射暴露对癌症的抑制现象,并发现患肺癌的风险降低与低剂量α-辐射暴露有关。进而有研究认为,人类持续暴露于自然的低水平电离辐射,可以形成了一套自我保护的适应辐射的机制。可能低水平辐射激活反应基因,高水平的辐射激活沉默反应基因,使得低剂量辐射有关反应机制在表观遗传调控方面(DNA甲基化,组蛋白修饰,miRNAs)上有了新的认识,未来或许可将低水平电离辐射用于癌症的预防。

(五)其 他

石棉与DNA甲基化:石棉是职业环境中常见的且具有致癌性的物质,其诱导肺癌的发生已经得到确切的证实。肺癌发生的危险性主要取决于石棉的纤维类型和含量。肺癌中很多肿瘤抑制基因的改变都与吸烟相关,但是关于其与石棉相关性的研究却很少。p16/CDKN2A 是一个重要的肿瘤抑制基因,其发生改变的形式主要是5’-CpG岛高度甲基化,而很少发生点突变。p16/CDKN2A甲基化和石棉暴露之间存在着联系,Andujar等研究了接触石棉的肺癌患者中p16/CDKN2A基因的改变情况,其中,石棉暴露资料的详细估测是根据职业问卷调查和肺组织石棉体检测得到的;研究结果还证实了吸烟对p16/CDKN2A基因改变有影响,即吸烟较多的肺癌患者(每年≥40包)的p16/CDKN2A 启动子高度甲基化率明显高于吸烟较少的肺癌患者(每年吸烟<40包的患者);在校正年龄和吸烟状态后,石棉暴露患者中p16/CDKN2A高甲基化率是24.2%。

参考文献:

[1] LEWTAS J. Air pollution combustion emissions, characterization of causative agents and mechanisms associated with cancer, reproductive, and cardiovascular effects[ J ].Mutat Res,2007,636(1-3):95–133.

[2]PAVANELLO S,BOLLATI V,PESATORI A C, et al. Global and gene-speci?c promoter methylation changes are related to anti-B[a]PDE-DNA adduct levels and in?uence micronuclei levels in polycyclic aromatic hydrocarbon-exposed individuals[ J ]. Int J Cancer, 2009,125(7): 1692–1697.

[3]YAUK C, POLYZOS A, ROWAN-CARROLL A, et al. Germ-line mutations, DNA damage, and global hypermethylation in mice exposed to particulate air pollution in an urban/industrial location[ J ]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2008, 105(2):605–610.

[4]YAUK C L, POLYZOS A, ROWAN-CARROLL A, et al. Tandem repeat mutation, global DNA methylation, and regulation of DNA methyltransferases in cultured mouse embryonic ?broblast cells chronically exposed to chemicals with different modes of action[ J ]. Environ Mol Mutagen ,2008,49(1):26–35.

[5] SHEN Y L, JIANG Y G, GREENLEE A R, et al. MicroRNA expression pro?les and miR-10a target in anti-benzo[a]pyrene-7,8-diol-9,10-epoxide-transformed human 16HBE cells[ J ]. Biomed Environ Sci, 2009,22(1), 14–21.

[6] DUAN H, JIANG Y, ZHANG H, et al. MiR-320 and miR-494 affect cell cycles of primary murine bronchial epithelial cells exposed to benzo[a]pyrene[ J ].Toxicol In Vitro,2010,24(3):928–935. [7] PERERA F, TANG W Y, HERBSTMAN J, et al. Relation of DNA Methylation of 5′-CpG Island of ACSL3 to Transplacental Exposure to Airborne Polycyclic Aromatic Hydrocarbons and Childhood Asthma[ J ].PLoS ONE, 2009,4(2):e4488.

[8] WOODSON K, MASON J, CHOI S W, et al.Hypomethylation of p53 in peripheral blood DNA is associated with the development of lung cancer. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev , 2001,10(1):69–74.

[9] SADIKOVIC B, RODENHISER D I. Benzopyrene exposure disrupts DNA methylation and growth dynamics in breast cancer cells[J].Toxicol Appl Pharmacol,2006,216(3):458–468.

[10] SADIKOVIC B, HAINES T R, BUTCHER D T, Chemically induced DNA hypomethylation in breast carcinoma cells detected by the amplification of intermethylated sites[ J ].Breast Cancer Res,2004, 6(4):R329–R337.

[11] SADIKOVIC B, ANDREWS J, CARTER D, et al. Genome-wide H3K9 histone acetylation profiles are altered in benzopyrene-treated MCF7 breast cancer cells[ J ].J Biol Chem,2008,283(7):4051–4060.

[12] Proceedings of the International Symposium on Recent Advances in Benzene Toxicity, Munich, Germany, 9–12 October 2004[ J ]. Chem Biol Interact ,2005,153–154.

[13] BOLLATI V, BACCARELLI A, HOU L, et al. Changes in DNA methylation patterns in subjects exposed to low-dose benzene[ J ]. Cancer Res,2007,67(3):876–880.

[14] JI Z, ZHANG L, PENG V, et al.A comparison of the cytogenetic alterations and global DNA hypomethylation induced by the benzene metabolite, hydroquinone, with those induced by melphalan and etoposide[ J ].Leukemia,2010, 24(5), 986–991.

[15] ZHANG L, MCHALE C M, ROTHMAN N, et al.Systems biology of human benzene exposure[ J ].Chemico Biol Interact,2010, 184(1-2):86–93.

[16]Beyersmann D, Hartwig A.Carcinogenic metal compounds: recent insight into molecular and cellular mechanisms[J].Arch Toxicol. 2008 ,82(8):493-512.

[17] Bigorgne E, Cossu-Leguille C, Bonnard M,et al. Genotoxic effects of nickel, trivalent and hexavalent chromium on the Eisenia fetida earthworm[J].Chemosphere. 2010 ,80(9):1109-1112. [18]Arita A, Costa M. Epigenetics in met al carcinogenesis: nickel, arsenic, chromium and cadmium[J].Met allomics, 2009, 1(3): 222-228.

[19]Govindarajan B,Klafter R,Miller MS,et al. Reactive oxygen-induced carcinogenesis causes hypermethylation of p16(Ink4a) and activation of MAP kinase[J]. Mol Med,2002,8(1):1-8. [20]Kowara R,Salnikow K,Diwan BA,et al. Reduced Fhit protein expression in nickel transformed mouse cells and in nickel-induced murine sarcomas[J]. Mol Cell Biochem,2004,255(1-2):195-202. [21]陈家堑,纪卫东,吴中亮.化学致癌的表遗传机制[J].毒理学杂志,2005,19(A03):176-177. [22]Ji W,Yang L,Yu L,et al. Epigenetic silencing of O6-methylguanine DNA methyltransferase gene in NiS-transformed cells[J]. Carcinogenesis,2008,29(6):1267-1275.

[23] Chen H, Ke Q, Kluz T,et al. Nickel Ions Increase Histone H3 Lysine 9 Dimethylation and Induce Transgene Silencing[J].Mol Cell Biol. 2006 ,26(10):3728-3737.

[24] Broday L, Peng W, Kuo MH,,et al. Nickel Compounds Are Novel Inhibitors of Histone H4 Acetylation[J].Cancer Res . 2000, 60(2):238.

[25]Wu R, Wang S, Zhou N,et al.A proton-shuttle reaction mechanism for histone deacetylase 8 and the catalytic role of met al ions[J].J Am Chem Soc. 2010,132(27):9471-9479.

[26] Zhou X, Li Q, Arita A, et al. Effects of nickel, chromate, and arsenite on histone 3 lysine methylation[J].Toxicol Appl Pharmacol. 2009 ,236(1):78-84.

[27]Stevens JJ, Graham B, Walker AM, et al. The Effects of Arsenic Trioxide on DNA Synthesis and Genotoxicity in Human Colon Cancer Cells[J].Int J Environ Res Public Health. 2010,7(5):2018-2032. [28]Baylin SB,Herman JG. DNA hypermethylation in tumorigenesis:epigenetics joins genetics[J]. Trends Genet,2000,16(4):168-174.

[29]张爱华,陈强,李健,等.燃煤污染型砷中毒患者MGMT基因启动子甲基化及MGMT mRNA的表达[J].环境与职业医学,2008,25(5):425-428.

[30]Chanda S,Dasgupta UB,GuhaMazumder D,et al. DNA hypermethylation of promoter of gene p53 and p16 in arsenic-exposed people with and without malignancy[J]. Toxicol Sci,2006,89(2):

431-437.

[31]Salnikow K,Zhitkovich A. Genetic and epigenetic mechanisms in metal carcinogenesis and cocarcinogenesis:nickel,arsenic,and chromium[J]. Chem Res Toxicol,2008,21(1):28-44. [32] Ramirez T, Brocher J, Stopper H,et al. Sodium arsenite modulates histone acetylation, histone deacetylase

activity

and

HMGN

protein

dynamics

in

human

cells[J].Chromosoma.

2008 ,117(2):147-157.

[33]Zhou T, Sun H,Ellen T,et al. Arsenite alters global histone H3 methylation[J].

Carcinogenesis. 2008,29(9):1831–1836.

[34] Barski A,Cuddapah S,Cui K,et al. High-Resolution Profiling of Histone Methylations in the Human Genome[J].Cell.2007, 129(4): 823-837.

[35]Scott BR, Belinsky SA, Leng S,et al.Radiation-Stimulated Epigenetic Reprogramming of Adaptive-Response Genes in the Lung: An Evolutionary Gift for Mounting Adaptive Protection Against Lung Cancer[J].Dose Response,2009,7(2):104–131.

[36]El-Gamal A,Hosny G. Assessment of lung cancer risk due to exposure to radon from coastal sediments[J]. East Mediterr Health J,2008,14(6):1257-1269.

[37] 苏世标,杨鲁静,张卫,等.某铀矿工人痰细胞中p16和MGMT基因的甲基化状态[J].中华劳动卫生职业病杂志,2006,24(2):92-95.

[38]Prueitt RL,Goodman JE,Valberg PA. Radionuclides in cigarettes may lead to carcinogenesis via p16(INK4a) inactivation[J]. J Environ Radioact,2009,100(2):157-161.

[39] SEDELNIKOVA O A, NAKAMURA A, KOVALCHUK O, et al. DNA Double-Strand breaks form in bystander cells after microbeam irradiation of three-dimensional human tissue models[ J ]. Cancer Res,2007, 67(9):4295-302.

[40] KAUP S, GRANDJEAN V, MUKHERJEE R, et al. Radiation-induced genomic instability is associated with DNA methylation changes in cultured human keratinocytes[ J ].Mutat Res, 2006, 597(1-2):87-97.

[41] KOTURBASH I, RUGO R E, HENDRICKS C A, et al. Irradiation induces DNA damage and modulates epigenetic effectors in distant bystander tissue in vivo[ J ]. Oncogene,2006, 25(31):4267-75.

[42] KOTURBASH I, LOREE J, KUTANZI K, et al. In vivo bystander effect: cranial X-irradiation leads to elevated DNA damage and altered cellular proliferation and apoptosis in shielded spleen. International Journal of Radiation[ J ].Int J Radiat Oncol Biol Phys,2008, 70(2):554-562. [43] THOMPSON R E, NELSON D F, POPKIN J H, et al. Case-control study of lung cancer risk from residential radon exposure in Worchester County, Massachusetts[J]. Health Phys,2008 ,94(3):228-41.

[44] SCOTT B R.Low-dose-radiation-stimulated natural chemical and biological protection against lung cancer[ J ].Dose Response,2008 , 6(3):299-318.

[45] SCOTT B R, SANDERS C L, MITCHEL R E J , et al. CT scans may reduce rather than increase the risk of cancer[ J ].J Am Physicians and Surg ,2008 ,13(1):8-11

[46] SCOTT B R, BELINSKY S A, LENG S G, et al. Radiation-Stimulated Epigenetic Reprogramming of Adaptive-Response Genes in the Lung: An Evolutionary Gift for Mounting Adaptive Protection Against Lung Cancer[ J ].Dose Response,2009,7(2):104-131.

[47] MA S, LIU X, JIAO B, et al. Low-dose radiation-induced responses: focusing on epigenetic regulation[ J ].Int J Radiat Biol, 2010,86(7):517-528.

[48]Moiseeva EP,Manson MM. Dietary chemopreventive phytochemicals:too little or too much[J].

Cancer Prev Res,2009,2(7):611-616.

[49] Klimczak A,Malinowska K,Kubiak K. Tumour illnesses and nutrition[J]. Pol Merkur Lekarski,2009,27(159):242-244.

[50] Satia JA,Littman A,Slatore CG,et al. Long-term use of beta-carotene,retinol,lycopene,and lutein supplements and lung cancer risk: results from the VITamins and Lifestyle (VITAL) study[J]. Am J Epidemiol,2009,169(7):815-828.

[51]Stidley CA,Picchi MA,Leng S,et al. Multi-vitamins,folate,and green vegetables protect against gene promoter methylation in the aerodigestive tract of smokers[J]. Cancer Res,2010,70(2):568-574.

[52]Vaissiere T,Hung RJ,Zaridze D,et al. Quantitative analysis of DNA methylation profiles in lung cancer identifies aberrant DNA methylation of specific genes and its association with gender and cancer risk factors[J]. Cancer Res,2009,69(1):243-252.

[53] Vanselow J, Yang W, Herrmann J, Zerbe1 H, Schuberth HJ, Petzl W, Tomek W, Seyfert HM. DNA-remethylation around a STAT5-binding enhancer in the aS1-casein promoter is associated with abrupt shutdown of aS1-casein synthesis during acute mastitis[J]. J Mol Endocrinol, 2006,37(3): 463–477.

[54] Tycko B. Epigenetic gene silencing in cancer[J]. J Clin Invest,2000, 105 (4): 40l–407. [55] Lo PK, Sukumar S. Epigenomics and breast cancer[J].Pharmacogenomics, 2008, 9(12): 1879–1902.

[56]Black Y D,Maclaren F k Naydenov A、‘et a1.A1tered attention and prefrontal cortex gene expression in rats after binge-like exposure to cocaine during adolescence[J].Journal of Neuroscience,2006,26(38):9656~9665

[57]Tsankova N,Renthal W,Kumar A, et a1.Epigenetic regulation in psychiatric disorders[J].Nature Neuroscience,2007.8(5):355~367

[58]Carbone M,Kratzke RA,Testa JR. The pathogenesis of mesothelioma[J]. Semin Oncol,2002,29(1):2-17.

[59]Han W,Wang T,Reilly AA,et al. Gene promoter methylation assayed in exhaled breath,with differences in smokers and lung cancer patients [J]. Respir Res,2009,10:86.

[60]Liu Y,Gao W,Siegfried JM,et al. Promoter methylation of RASSF1A and DAPK and mutations of K-ras,p53,and EGFR in lung tumors from smokers and never-smokers[J]. BMC Cancer,2007,7:74.

[61]Andujar P,Wang J,Descatha A,et al. p16(INK4A) inactivation mechanisms in non-small-cell lung cancer patients occupationally exposed to asbestos[J]. Lung Cancer,2010,67(1):23-30. [62] Hou L, Zhang X, Wang D, Baccarelli A. Environmental chemical exposures and human epigenetics. Int J Epidemiol. 2011 Dec 13. [Epub ahead of print]

[63] LeBaron MJ, Rasoulpour RJ, Klapacz J, Ellis-Hutchings RG, Hollnagel HM, Gollapudi BB. Epigenetics and chemical safety assessment.Mutat Res. 2010 Oct;705(2):83-95.

本文来源:https://www.bwwdw.com/article/r34p.html

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