转运体临床前研究评价指导标准以及实验方案

更新时间:2024-01-17 17:56:01 阅读量: 教育文库 文档下载

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转运体临床前研究评价的一些实验方案

FDA推荐主要研究的七个转运体及其底物、抑制剂 转运体 P-gp/MDR1 BCRP/MXR 推荐特异底物 地高辛、洛派丁胺、小檗碱、伊立替康、阿霉素、长春碱、紫杉醇、非索非那定 推荐特异抑制剂 环孢霉素、奎尼丁、Tariquidar、维拉帕米 米托蒽醌、氨甲蝶呤、拓扑替康、伊马替尼、伊立替康、雌(甾)酮、17β-雌二他汀类、硫酸结合物、卟啉类化合物 醇、fumitremorgin C Bromosulphophthalein、oestrone-3-sulphate、沙奎那韦、利托那韦、洛oestradiol-17β-glucuronide、他汀类、瑞格列奈、缬匹那韦、利福平、环孢霉沙坦、奥美沙坦、葡萄糖醛酸胆红素、胆红素、胆汁酸 素 Bromosulphophthalein、缩胆囊素8、他汀类、地高辛、利福平、环孢霉素、利托非索非那定、替米沙坦糖苷、替米沙坦、缬沙坦、奥美那韦、洛匹那韦 沙坦、oestradiol-17β-glucuronide、胆汁酸 对氨基马尿酸盐、阿德福韦、西多福韦、齐多夫定、拉米夫定、扎西他宾、阿昔洛韦、替诺福韦、环丙沙星、甲氨蝶呤 Oestrone-3-sulphate、非甾体抗炎药、头孢克洛、头孢唑肟、利尿磺胺、布美他尼 OATP1B1 OATP1B3 OAT1 丙磺舒、新生霉素 OAT3 丙磺舒、新生霉素 OCT2 N-Methylpyridinium、四乙铵、二甲双胍、心得乐、普西咪替丁、吡西卡尼、西鲁卡因胺、雷尼替丁、金刚烷胺、阿米洛利、奥沙利铂、替利嗪、睾酮、奎尼丁 varenicline

七个转运体主要分布组织/细胞

*底色为黄色的表示潜在临床可用。

转运体 P-gp/MDR1 BCRP/MXR OATP1B1 OATP1B3 OAT1 OAT3 OCT2

主要分步组织及细胞 小肠上皮细胞、肾近曲小管、肝细胞(胆小管面)、脑内皮细胞 小肠上皮细胞、肝细胞(胆小管面)、肾近曲小管、脑内皮细胞、胎盘、干细胞、乳腺 肝细胞(窦状隙面) 肝细胞(窦状隙面) 肾近曲小管、胎盘 肾近曲小管、脉络丛、血脑屏障 肾近曲小管、神经元 外排转运体(P-gp、BCRP)

1.作用底物鉴定

FDA总体要求: 所有药物都需要进行鉴定是否为P-gp、BCRP的底物 流程如下:

注:1. P-gp 底物鉴定决策树对BCRP近似适用。

2. 除了传统双向转运评价方法外,表达P-gp/BCRP的外翻囊泡,固体支持物上的细胞单层(转染P-gp/BCRP、使用阳性对照),也可以运用到底物鉴定实验中。

2.抑制作用鉴定

FDA总体要求: 所有药物都需要进行鉴定是否对P-gp、BCRP有抑制作用。

注:1、P-gp 抑制剂鉴定决策树对BCRP近似适用。

2、除了传统双向转运评价方法外,表达P-gp/BCRP的外翻囊泡,固体支持物上的细胞单层(转染P-gp/BCRP、使用阳性对照),也可以运用到抑制剂鉴定实验中。

[I1]为临床最大给药剂量下所达到的最大稳态血浓;[I2]为临床最大口服给药剂量下将胃肠道容积视为250ml时药物在胃肠道的最大浓度。

实验方案:

1. Caco-2细胞:

准备工作:Caco2细胞培养传代,选择对数生长状态细胞种板,培养21天,测细胞电阻以及做单层细胞模型验证实验(甘露醇以及地高辛) 双向转运实验:

用hanks平衡盐溶液(HBSS)将培养好的细胞洗涤2~3次。最后一次洗涤后测定跨上皮电阻值以监控细胞质量。然后在细胞层的基底面一侧( basolateral side, BL)换上HBSS, 在绒毛面一侧(apical side, AP)换上含有待测药物的HBSS, 以及相反操作, 在37℃恒温摇床中释药, 模拟体内吸收情况, 间隔一定时间取样。计算 表观渗透系数(Papp)计算公式为:

其中为渗透速率,Co为供药室中被测药物的初始浓度,A为细胞单层的表面积 计算Pb->a/Pa->b比值。 2. 囊膜转运:(ABC转运体囊泡是从杆状病毒感染的昆虫细胞表达获得)

流程:

首先进行NME抑制性试验,得到NME的IC50值。(需要先考察需要特异底物浓度、

转运实验时间) 可能产品说明书中能够提供案例说明上述考察项 然后进行NME底物确证实验(选用IC50值上下的两个浓度进行实验)

NME抑制性试验过程:

底物+AMP 阳参+底物+ATP 底物+ATP+不同浓度考察药物(0μM及后续升高浓度) n=2 反应体系:可能产品说明书中能够提供。

后处理方法:加入0.2ml的冰冷缓冲液终止反应,转运液迅速抑制96孔滤板,通过F级玻璃纤维滤膜(0.7μm孔径)进行快速真空抽滤,滤膜冲洗后,加入0.2ml洗脱液,真空抽滤收集滤液。

评价方法:将药物浓度为0时的底物转运率记为100%,计算体系中加入不同浓度药物时的相对转运率,IC50值为相对转运率为50%时的体系药物浓度。

NME底物确证实验(n=2) 阳参+ ATP ATP+考察药物(IC50附近选择两个浓度) 不同时间点终止反应 AMP+考察药物(IC50附近选择两个浓度) n=2 反应体系和后处理方法同上 评价方法:计算各时间点、各浓度主动转运进入膜囊(ATP)和非特异性吸附(AMP)的药量之比。若比值随药物浓度增加、随时间增加而增加,则说明为底物。

3. 细胞转染:(见最后)

附:ATPase实验ATP酶分析能够提供关于一个分子和转运体亲和力的信息,但是无法提供

转运速率。(初步判断是否为底物) 实验方案: 阴性 AMP 阳性对照 不同 ATP+不同浓度药物(n=2) + 药 ATP +特异底物 时间 点(5, 15,30, 45,60 min)

反应体系:可能产品说明书中有推荐。

后处理方法:10%SDS终止反应。加入200μl显色剂(35mM钼酸铵+15μM乙酸锌:10%坏血酸),37℃孵育20min并测定750nm紫外吸收。若随药物浓度、随时间增加Pi生成量明显增加,判断药物为转运体底物。

溶质载体转运体:

底物鉴定实验:

由于各转运体分布差异,在药物清除中的作用不同。需要首先进行在体实验,了解药物的主要清除途径。

实验概述:将同批次大鼠随机分为四组。

组一 静脉给药,收集各时间点血浆,并算得总清除率。 组二 静脉给药,收集各时间段尿液,算得肾清除率。

组三 制作胆管插管模型,静脉给药,收集各时间段胆汁,算得肝清除率。 组四 静脉给菊粉,收集各个时间段尿液,算得肾小球率过滤。 将所得结果进行比较。

1.鉴定是否为OAT1/3、OCT2底物

2.鉴定是否为OATP1B1、OATP1B3底物

需要做的实验:(见最后)

抑制作用鉴定实验:

1. OCT、OAT抑制剂鉴定

2. OATP抑制剂鉴定

细胞转染实验: 选用HEK293T细胞 实验基本流程:

设计目的基因PCR所需引物? 细菌中所含目的基因的质粒DNA的抽提?PCR ? PCR产物回收? 酶切,构建重组质粒? 制备感受态细胞? 转化? 获取质粒DNA并进行阳性克隆PCR筛选

HEK293T细胞复苏、传代? 转染? 检测蛋白表达情况

测定方法学考察

考察药物对HEK293T细胞毒性

细胞转运实验:

(需要先考查时间、浓度、pH对细胞摄取药物影响的情况)

抑制细胞转运实验

本文来源:https://www.bwwdw.com/article/qdvo.html

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