临床检验总结1 - 图文
更新时间:2023-10-19 14:01:01 阅读量: 综合文库 文档下载
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临床检验PPT总结内容
1,全血:
定义:由血细胞和血浆组成。在体外经抗凝剂抗凝而获得。
应用:主要用于临床血液学检查,如血常规和血细胞形态学检查。
2,血清:
定义:是血液离体自然凝固后所析出的液体部分。 应用:适用于多数临床生化检查和免疫学检查。
3,血浆;
定义:为全血除去血细胞的部分。在体外用抗凝剂抗凝经离心而获得。
应用:用于血浆生理性和病理性化学成份的测定,如临床生化检查,血栓与止血的检查。
4,血液标本的采集方法及应用范围:
血液标本的采集方法:1.毛细血管采血法/2.静脉采血法/3.动脉采血法 ①毛细血管采血法
所获得的血液标本:微动脉血、微静脉血和毛细血管血混合的末梢全血 准备器材:一次性采血针、微量吸管、消毒用品等。
选择部位:手指指端或耳垂;婴幼儿可选择足母趾或足跟。 操作步骤:①按摩采血部位;
②消毒采血部位皮肤;
③刺入皮肤,深度以2-3mm为宜; ④采集血液;
⑤用无菌干棉签压住采血部位止血。
应用:主要用于需要微量血液的检验项目,如血液一般检查及床旁检测的项目。 ②静脉采血法 普通静脉采血法 准备器材:试管、注射器、消毒用品等。 选择部位:一般选择肘正中静脉。 步骤:①消毒静脉穿刺区域;
②扎压脉带; ③静脉穿刺; ④松开压脉带;
⑤缓慢抽动注射器内芯至所需血量,迅速拔出针头,按压穿刺点数分钟; ⑥取下针头,将血液缓慢注入试管中。
注意:①根据检验项目、所需采血量,选择适宜的注射器和试管; ②严格执行无菌操作;严禁从输液、输血针头内抽取血标本
③采血时严禁将针栓往回推,以免注射器中的空气进入血循环而形成气栓; ④采血时不宜过度用力,以免血液产生泡沫而造成溶血。
真空静脉采血法 定义:又称负压采血法,具有计量准确、传送方便、封闭无尘、标识醒目、刻度清晰、容易保存、一次进针多管采血等优点,采血量由采血管内负压大小来控制。
准备器材:持针器、双向采血针、采血管 软接式双向采血针的采血操作: ①在穿刺点上端扎压脉带;
②拔出采血穿刺针的护套,静脉穿刺;
③血液被自动吸入采血管内,同时松开压脉带; ④如需多管采血,再刺入另一个真空采血管即可;
⑤采血完毕,用消毒干棉签按压穿刺点,拔出针头,继续按压穿刺点数分钟。 ③动脉采血法
准备器材:2ml或5ml注射器、1000U/ml无菌肝素生理盐水溶液、橡皮塞、消毒用品等。
选择动脉:多选用桡动脉(最方便)、股动脉、肱动脉。 采血步骤:以血气分析标本为例
①消毒穿刺点及其附近皮肤、检验人员的左手示指和中指; ②用左手示指和中指触摸动脉搏动最明显处,固定,穿刺; ③动脉血液自动注入针筒内;
④拔出针头,用消毒干棉签按压穿刺点止血10-15分钟;
⑤立即用软木塞或橡皮塞封闭针头,以隔绝空气,搓动注射器,使血液和肝素混匀,并立即送检。
3,采血管的种类及用途。
采血管帽颜色 红色(玻管) 红色(塑管) 金黄色 绿色 浅绿色 紫色 蓝色 黑色 灰色 添加剂 无促凝剂 促凝剂 促凝剂/分离胶 肝素锂、肝素钠 肝素锂/分离胶 EDTA-K2或K3 操作步骤 采血后不需混匀 采血后立即颠倒混匀5~8次 采血后立即颠倒混匀5~8次 采血后立即颠倒混匀5~8次 采血后立即颠倒混匀5~8次 采血后立即颠倒混匀5~8次 主要用途 生成血清,生化/免疫学试验 生成血清,生化/免疫学试验 生成血清,生化/免疫学试验 生成血浆,生化试验 生成血浆,生化试验 血常规试验 凝血试验 红细胞沉降率试验 血糖试验 枸橼酸钠∶血液=1∶ 采血后立即颠倒混9 匀3~4次 枸橼酸钠∶血液=1∶ 采血后立即颠倒混4 匀5~8次 葡萄糖酵解抑制剂(氟化钠)/草酸钾或EDTA-Na2 采血后立即颠倒混匀5~8次
4,常见的血液标本添加剂作用原理及用途。抗凝剂 抗凝概念。
常见的血液标本添加剂作用原理及用途。 添加剂 作用 主要用途 全血细胞计数、离心法HCT测定 注意事项 抗凝剂用量与血液的比例要准确,采血后立即混匀 乙二胺四乙酸盐与血液中Ca2+结合成螯(EDTA-Na/K+) 合物,阻止血液凝固 枸橼酸盐 与血液中Ca2+结合,阻止血液凝固 血沉、凝血试验、 抗凝能力相对较血液保养液 弱,抗凝剂浓度、体积和血液的比例非常重要 快速生化检验、血气分析、红细胞渗透脆性试验 草酸钾干粉常用于血浆标本抗凝 缩短血清分离时间,特别适用于急诊生化检验 快速分离出血清标本;有利于标本冷藏保存 电极法测血钾与血清结果有差异;不适合血常规检查 容易造成钾离子污染;现已少用 常用促凝剂有凝血酶、蛇毒、硅石粉、硅碳素等 分离胶的质量影响分离效果和检验质量 肝素 加强抗凝血酶灭活丝氨酸蛋白酶,阻止凝血酶形成 与血液中Ca2+形成草酸钙沉淀 激活凝血过程,加速血液凝固 高黏度凝胶在血清和血块间形成隔层,达到分离血细胞和血清目的 草酸盐 促凝剂 分离胶 抗凝:用物理或化学方法除去或抑制血液中的某些凝血因子的活性,以阻止血液凝固,称为抗凝。
抗凝剂:能够阻止血液凝固的物质,称为抗凝剂或抗凝物质。
5,血液标本拒收常见原因。
①标本容器上无标识、申请单与标本标识不一致;②血液采集容器错误; ③标本污染、容器破损; ④标本运送条件不当; ⑤抗凝标本出现凝固; ⑥中度以上溶血; ⑦采血量不足等。
6,血液标本保存条件。
①全血标本保存:血液分析仪测定采用的抗凝全血,宜室温保存,不宜存放在2~8℃冰箱中,低温可使血液成分和细胞形态发生变化。室温保存,也不宜超过6小时,最多不超即过8小时。
②分离后标本保存:①保存1周的标本,置于4℃冰箱内保存;
②保存1个月的标本,置于-20℃冰箱内保存; ③保存3个月以上的标本,置于-70℃冰箱内保存。
7,溶血常见原因。8,如何避免采血的操作不当影响检验结果。
9,血涂片制备的方法学评价
方法 薄血膜推片法 评价 用血量少、操作简单,临床应用最广,主要用于观察血细胞形态及仪器法检测结果异常时的复查。某些抗凝剂可使血细胞形态发生变化,分类时应注意鉴别。白细胞减低患者的标本经离心后取棕黄层(有核细胞和血小板集中层)涂片,可提高异常细胞的阳性检出率。 对疟原虫、微丝蚴等的阳性检出率高。 血涂片中细胞分布均匀、形态完好,且推片与染色可和血液分析仪构成流水线作业,适用于大批量标本的处理。但需要较高的投入。 厚血膜涂片法 仪器自动涂片法 10,良好血涂片的“标准”
①血膜至少长25mm,至玻片两侧边缘的距离约为5mm。 ②血膜边缘要比玻片边缘窄,且边缘光滑,适用于油镜检查。 ③血细胞从厚区到薄区逐步均匀分布,末端呈方形或羽毛状。 ④血膜末端无粒状、划线或裂隙。
⑤在镜检区域内,白细胞形态应无人为异常改变。 ⑥无人为污染。
11,血涂片质量问题及可能的原因
血涂片质量问题 不规则的间断和尾部过长 有空泡(空洞) 血膜偏长或偏短 血膜无尾部 两侧无空隙 血膜偏厚或偏薄 原因 推片污染、推片速度不均匀、载玻片污染 载玻片被油脂污染 推片角度小、血滴未完全展开即开始推片时血膜偏长;推片角度大、血滴太小时血膜偏短 血滴太大 推片太宽或血滴展开太宽 血滴大、血液黏度高、推片角度大、推片速度快,血膜厚;相反则血膜偏薄 12,瑞氏染色法(Wright’s stain)
①瑞氏染料:酸性染料伊红和碱性染料美蓝组成的复合染料。 瑞氏染液是瑞氏染料溶于甲醇而成。 细胞染色原理:物理吸附作用; 化学亲和作用。
染色易受pH影响:偏酸环境染色偏红,偏碱环境偏蓝。
②Wright染色血细胞着色的原理 成分 碱性物质 酸性物质 中性颗粒 细胞核 着色原理 与伊红结合染成红色,该物质称为嗜酸性物质,如血红蛋白及嗜酸性颗粒等 与亚甲蓝结合而染成蓝紫色,该物质称为嗜碱性物质,如淋巴细胞胞质及嗜碱性颗粒等 呈等电状态,与伊红、亚甲蓝均结合,染成淡紫红色,该物质称为嗜中性物质 主要由DNA和碱性强的组蛋白等组成,后者与伊红结合染成红色,但因细胞核中含有少量的弱酸性物质,与亚甲蓝作用染成蓝色,因含量太少,蓝色反应极弱,故细胞核染成紫红色 ①原始红细胞和早幼红细胞胞质含有较多的酸性物质,与亚甲蓝亲和力强,故染成较浓厚的蓝色 ②晚幼红细胞和Ret含有酸性物质和碱性物质,可同时与亚甲蓝和伊红结合,故染成红蓝色或灰红色 ③成熟红细胞的酸性物质完全消失,只与伊红结合,染成橙红色 红细胞 ③Wright染色步骤:用蜡笔在已干的血膜两端划线——→瑞氏染液2~5滴,染 0.5~1min——→加等量或稍多的缓冲液,混匀,染10~15min——→流水冲去染液,干后镜检。
④Wright染色法质量保证: 染色前:血涂片:血涂片血膜厚度、细胞数量要恰当。血膜彻底干透后方可染色。
涂片后1小时内染色。
染液质量:染液放置时间越久,亚甲蓝转变为天青B越多,染色效果
越好。
染色中: 项目 时间与浓度 染色过程 pH值 冲洗染液 质量保证 染液浓度低、室温低、细胞多、有核细胞多,则染色时间要长;反之,则染色时间要相应短。 血涂片应水平放置;染液不能过少,以免蒸发后染料沉淀,不易冲洗掉,使细胞深染或胞浆中有大量碱性颗粒出现;加染料后可用洗耳球轻吹,让染液覆盖全部血膜;加缓冲液后要让缓冲液和染液充分混匀,两者比例约为(1~1.5):1 偏酸或偏碱均可导致染色效果不佳 ①应用流水将染液与缓冲液冲去,而不能先倒掉染液后再用流水冲洗,以免染料沉着于血涂片上,干扰检查 ②水流不宜太快,水压不宜太高,避免水流垂直冲到血膜上,而导致血膜脱落 ③冲洗时间不宜过长,以免脱色 ④冲洗后的血涂片应立即立于玻片架上,防止血涂片被剩余水分浸泡脱色 ⑤若见血膜上有染料颗粒沉积,用甲醇或Wright染液溶解,但应立即用水冲洗 ①染色过深:可用甲醇或Wright染液适当脱色,也可用清水冲洗一定时间; ②染色过浅:可以复染,复染时应先加缓冲液,后加染液,或加染液与缓冲液的混合液,不可先加染液 脱色与复染
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