高纯度燕麦β-葡聚糖测定方法研究
更新时间:2023-05-18 10:20:01 阅读量: 实用文档 文档下载
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高纯度燕麦β-葡聚糖测定方法研究
随着人类物质生活水平的提高,人类的饮食结构反而愈不均衡。因此具有显著降血脂、降血糖及维持肠道微生物生态环境功能的燕麦葡聚糖[1~4]的需求市场明显增大,而高纯度的燕麦葡聚糖因其功效更为显著,其需求更为明显。但目前国内外对于高纯度燕麦葡聚糖的检测并无统一标准,这极其不利于高纯度燕麦葡聚糖的研究发展。
目前,谷物麸中β-葡聚糖的测定[4~7]主要是采用AOAC995.16酶法,该方法应用于测定高纯度燕麦葡聚糖的原理虽然相同,但是由于含量的增加,产品的分子量不同,对于酶解的用量,水解的时间等条件有所不同,因此,本文着重研究酶解测定高纯度葡聚糖时的作用条件,并通过对方法的精密度和回收率进行判断方法的准确性。
1 材料
1.1试剂与待测样
70%纯度燕麦β-葡聚糖:广东省食品工业研究所 试剂盒:Megazyme ;K-BGLU 1.2主要仪器设备
移液枪:Tomos;L1160471
恒温水浴锅:上海申胜生物技术有限公司;W201B 漩涡混合振荡器:上海琪特分析一起有限公司;XW-80A 紫外可见分光光度仪:上海美谱达仪器有限公司;UV-6300PC 2 实验方法 2.1测定步骤
准确称量约10mg70%纯度燕麦β-葡聚糖样品到试管内,确保全部样品完全落入试管。
用0.2ml乙醇(50%v/v)湿润样品,加磷酸钠缓冲液(4.0ml,20mM,Ph6.5)并且用振荡器振荡。
然后,马上将试管放入开水中,保持一分钟。用振荡器振荡样品,保持在开水中2分钟,再次振荡。
把含有样品的试管放入40℃水中,保持5分钟。加地衣多糖酶试剂(0.2ml),振荡。
放入40℃水浴中分解2小时,并不时振荡。加醋酸钠缓冲溶液(50ml,200mM,Ph4.0),用振荡器振荡样品。
将试样降到室温。准确用移液枪在三个测定试管中添加0.1ml的已经过地衣多糖酶酶解的高纯度燕麦β-葡聚糖样品。
加β-葡萄糖苷酶试剂0.1ml到三个测定试管中的两个,第三个作为空白,添加0.1ml50mM醋酸钠缓冲液。加GOPOD试剂3.0ml到三个试管中,在37℃水浴中分解20分钟。取出样品,并用分光光度计测定(510nm)。
2.2标准曲线
以标准葡萄糖配成浓度分别为0.0,6.4,9.6,12.8,16.0,19.2μg/ml的标准样品,以分光光度计在510nm下测定吸光度。
表1 标准曲线标样表
Table1 Sample Table of Standard curve
1、葡萄糖标准曲线 葡萄糖浓度x (μg/ml) 吸光度y
0 0
6.4 0.2
9.6 0.283
12.8 0.377
16 0.476
19.2 0.583
2、精密度实验
配制样品溶液为2mg/ml,分别在4支试管中加入5mL样品溶液,依上述检测方法测定
序号 吸光度 测定值(mg) 平均值(mg) 相对标准偏差(RSD) 计算方法:RSD=S/X*100
X——测定值的平均值 S——标准差 3、回收率实验
为了确定本方法的准确度,分别取不同量的标准葡聚糖样品到已知含量的燕麦葡聚糖产品中,依据上述检测方法测定。
称取已知含量的燕麦葡聚糖样品125mg,定容到250mL水中,备用; 称取标准葡聚糖样品(含量=8.8%,水分=10.07%)200mg,定容至50mL水中,
1 0.166 5.54
2 0.170 5.69
5.72 2.4%
3 0.173 5.79
4 0.176 5.86
备用;
每个试管分别移取20ml已知含量的燕麦葡糖溶液,再分别加入0.5ml、1 ml、
1.5ml、2 ml、2.5 ml、3ml标准葡聚糖样品溶液,然后定容至25ml,依法测定。
单位:mg
序号
本底值X2
1 2 3 4 5 6 平均值
回收率计算公式:
P=X /m*100% P——加入标准物质的回收率 m——加入的标准物质的量; X——实际测得的标准物质的量; 4、结论:
燕麦葡聚糖的产品是采用AOAC995.16进行检测的,通过对该方法可行性的验证,进行精确度及回收率的实验,结果表明:采用此法的相对标准偏差RSD=2.4%,回收率P=99.43%,因此采用此法进行检测燕麦葡聚糖是可行的。
- 5.72
添加量m 0.158 0.316 0.474 0.632 0.79 0.948 -
加标的吸光度
0.176 0.181 0.185 0.19 0.195 0.201 -
实测值X1 0.15 0.319 0.457 0.623 0.788 0.997 -
回收率% 95.3 101.2 96.5 98.6 99.8 105.2 99.43
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