《体外诊断试剂分析性能评估系列指导原则(征求意见稿)》

《体外诊断试剂分析性能评估系列指导原则（征求意见稿）》

目 录

1.体外诊断试剂分析性能评估指导原则――编制说明 2.体外诊断试剂分析性能评估指导原则——检测限 3.体外诊断试剂分析性能评估指导原则——线性范围 4.体外诊断试剂分析性能评估指导原则——可报告范围

5.体外诊断试剂分析性能评估指导原则——准确度（回收实验） 6.体外诊断试剂分析性能评估指导原则——准确度（方法学比对） 7.体外诊断试剂分析性能评估指导原则——精密度 8.体外诊断试剂分析性能评估指导原则——干扰实验 9.体外诊断试剂分析性能评估指导原则——稳定性

10.体外诊断试剂分析性能评估指导原则——参考值（参考区间）

体外诊断试剂分析性能评估指导原则

——编制说明

《体外诊断试剂注册管理办法（试行）》颁布后，体外诊断试剂产品的

注册过程中要求提供申报产品的分析性能评估资料，产品性能评估是产品研发、制定产品标准等过程的重要技术支持研究过程，并可能对产品的质量造成一定的影响。

目前国际上对体外诊断试剂的性能评估通常是以美国临床实验室标准化组织（Clinical and Laboratory Standards Institude以下称为CLSI）的相关标准为依据，也是美国FDA推荐采用的评价标准，但我国还没有相关的标准及指导原则的要求。

为进一步明确体外诊断试剂分析性能评估的技术要求，我中心组织有关专家起草产品分析性能评估指导原则，以明确体外诊断试剂产品性能评估的技术要求。体外诊断试剂产品性能评估包括检测限、线性范围、可报告范围、准确度（回收实验）、准确度（方法学比较）、精密度、干扰实验、稳定性、参考区间共九个项目。起草的主要依据CLSI发布的以下标准:

1. C28-A2: How to define and determine reference intervals in the clinical laboratory; Approved Guideline-Second Edition.

2. EP5-A: Evaluation of precision performance of clinical chemistry devices; Approved Guideline.

3. EP6-A: Evaluation of the linearity of quantitative measurement procedures; A Statistical Approach; Approved Guideline.

4. EP7-A: Interference testing in clinical chemistry; Approved Guideline.

5. EP9-A2: Method comparison and bias estimation using patient samples;

Approved Guideline-Second Edition.

每项性能的主要研究方法均采用以上标准和国内实际采用的评价方法相结合的方法。

我中心对于专家起草的指导原则的初稿进行了适当的文字调整，之后将分析性能评估指导原则发给十位相关专业的专家征求意见。意见返回后我们对专家的回复意见进行了整理，对有些意见进行了采纳，有些意见暂时没有采纳。

采纳的意见，如：线性范围中的“3.4计算公式”的描述采用专家意见将公式的书写进行了文字更改，与CLSI文件一致；“3.3剔除离群值”中的Y的均描述由Yave改为；还有一些文字性错误也进行了修改。

有一些专家意见因为对一些概念还存在分歧，因此暂时未采纳，待经过专家讨论会后再进行确定。如“检测限评估”中的检测方法“连续测定20次，计算均值加2SD的方法缺少依据，建议采用可报告范围评估下限所提供的方法。”；“建议将批内/批间精密度”改为“分析内/分析间精密度”；“精密度是用变异系数表示还是用臵信区间表示”；参考值：“结果分析中应首先验证是否为正态分布，对于正态分布，则应根据临床应用目采用均值±2SD或均值±3SD，对于偏态分布则应选择单侧95％分位数或双侧2.5％-97.5％分位数”。

由于一些概念在学术界还存在分歧，因此我们会通过上网征求意见和专家会的形式进行讨论，找到最理想、最适合企业及我国国情又能保证产品质量的评价方法。

体外诊断试剂分析性能评估指导原则

——检测限（征求意见稿）

一、概述

检测限（limit of detection）是指检测方法可检测出的最低被测量浓度，也称检测低限（lower limit of detection）或最小检出浓度（minimum detectable concentration），有时也称为分析灵敏度（analytical sensitivity）。检测限评估资料是评价拟上市产品有效性的重要依据，也是产品注册所需的重要申报资料之一。

本指南基于国家食品药品监督管理局《体外诊断试剂注册管理办法（试行）》（以下简称《办法》）的有关要求，参考CLSI有关标准，对定量检测方法检测限的评估方法和数据处理方法进行了要求。其目的是为生产企业进行定量检测方法检测限评估提供原则性指导，也为注册管理部门审核该部分分析性能评估资料提供技术参考。同时，本指南亦可指导临床实验室进行定量检测方法检测限评估。

由于体外诊断试剂产品发展速度快、专业跨度大，国家食品药品监督管理局将根据体外诊断试剂发展的需要，适时对本指南进行修订。

二、 检测限评估的基本原则

1. 实验人员应熟悉检测方法与仪器操作；

2. 采用合适的校准品、质控品并保持仪器处于正常状态； 3. 用于实验的试剂应为同一批号，且在有效期内。 三、 检测限的评估和数据处理方法 1. 实验材料和基本要求

空白样本的制备：空白样本应不含被测物，但其基质应与待测定常规

样本相同。如空白样本难以得到，可采用5%牛血清或人血清白蛋白溶液。或根据测定项目选用相应基质的样本，但应注意将基质效应减至最小。 2. 实验方法

在一次运行中将空白样本重复测定20次。 3. 数据处理

（1） 数据记录：将测定结果记录于表格中。如果检测系统对于低于零的

结果报告为零，应记录初始响应值，如吸光度值等。 （2） 数据统计：计算20次结果的均值与标准差SD。 4. 结果报告：

以空白均值加两倍标准差报告方法的检测限。（+2SD）

体外诊断试剂分析性能评估指导原则

——线性范围（征求意见稿）

一、概述

线性范围评估资料是评价拟上市产品有效性的重要依据，也是产品注册所需的重要申报资料之一。

本指南基于国家食品药品监督管理局《体外诊断试剂注册管理办法（试行）》、《中华人民共和国卫生行业标准---定量测定方法的线性评价》的有关要求，参考CLSI有关标准，对定量检测方法中线性范围的评估方法和数据处理方法进行了原则性要求。其目的是为生产企业进行线性范围评估及准备线性范围评估资料提供原则性指导，也为注册管理部门审核该部分分析性能评估资料提供技术参考。同时，本指南亦可指导临床实验室建立定量测定方法的线性范围或对标称的线性参数进行验证。

由于体外诊断试剂产品发展速度快、专业跨度大，国家食品药品监督管理局将根据体外诊断试剂发展的需要，适时对本指南进行修订。

二、线性范围评估的基本原则

（1）实验操作人员应熟悉方法原理与操作，能对样本进行正确处理，确保仪器工作状态正常，采用适当的校准品对仪器进行校准。

（2）仪器的各项性能指标（如精密度）应与标称值相符，不存在明显的携带污染等。

（3）应使用同批号试剂及校准品。

三、线性范围的评估及数据处理方法

1.实验样本的基本要求和制备方法 1.1 基本要求

（1）样本基质应与临床实验样本相似，但不可采用含有对测定方法具有明确干扰作用物质的样本，如溶血、脂血、黄疸或含有某些特定药物的样本。进行血清学标志物检测时，理想的样本为分析物浓度接近预期测定上限的混合人血清。

（2）建立一种定量测定方法的线性范围时，需在预期测定范围内选择7-11个浓度水平。如将预期测定范围加宽至130%，在此范围内选择更多的浓度水平，然后依据实验结果逐渐减少数据点直至表现出线性关系，可发现最宽的线性范围。

（3）当对标称线性参数进行验证时，需在已知线性范围内选择5-7个浓度水平。

（4）无论是建立或验证线性范围，所选用的浓度水平应可覆盖整个预期测定范围并包括与临床有关的重要评价浓度，如最小测定浓度或线性范围的最低限、不同的医学决定水平、最大测定浓度或线性范围的高限等。

1.2 制备方法

（1）不同浓度水平的样本可通过将高浓度样本与低浓度样本进行倍比稀释得到，注意在进行液体吸取时应选择精密度与准确性好的移液装臵。制备时应将样本完全混合并避免蒸发或其他使样本变质的情况。每份样本的浓度与体积单位应统一。

（2）如果高/低浓度血清的值未知，可将每种血清编码，用编码代表每个血清的相对浓度。对于等浓度间隔样本，可用连续整数（如1、2、3、4、5）代表连续样本。进行数据处理时可用样本号代替X值。

表1和表2中描述的样本制备过程是按照等浓度间隔的设计进行的，每个浓度水平的样本量为1.00ml。

制备非等浓度间隔的样本时应明确各样本间的浓度关系，测定时可以这些样本间的相对浓度比值做为X值。

表1：11个浓度水平的样本制备

样本号 1 2 3 4 5 6 低浓度血清(ml) 1.00 0.90 0.80 0.70 0.60 0.50 高浓度血清(ml) 0.00 0.10 0.20 0.30 0.40 0.50 样本号 7 8 9 10 11 低浓度血清(ml) 0.40 0.30 0.20 0.10 0.00 高浓度血清(ml) 0.60 0.70 0.80 0.90 1.00 表2：5个浓度水平的样本制备

样本号 1 2 3 4 5 低浓度血清(ml) 1.00 0.75 0.50 0.25 0.00

高浓度血清(ml) 0.00 0.25 0.50 0.75 1.00 （3）样本的特殊处理：在无法得到适用的人血清时，需对样本进行一些特殊处理以满足实验要求。这些处理过程包括稀释、加入添加物或透析、热处理等，无论进行何种处理均应以保持基质恒定为基本原则。在评价报告中应对所使用的稀释液、添加物、溶剂等的材料来源加以注明。

样本稀释液应选用由厂家推荐或经实验室证明可使用的产品，如可采用5%牛血清白蛋白或人白蛋白溶液。

欲提高样本浓度时可在样本中添加分析物纯品。在添加物为溶液状态时，应注意添加液体对样本的稀释作用（小于10%）并注明所用溶剂。

2．实验过程

2.1 建立线性范围：需测定9-11个浓度水平，每个浓度水平重复测定3-4次。

2.2 验证标称线性参数：需测定4-6个浓度水平，每个浓度水平重复测定3-4次。

2.3 所有样本应在一次运行中或几次间隔很短的运行中随机测定，最好在一天之内完成。

3.数据处理 3.1 数据记录

（1）可参考表3进行数据记录。

（2）可采用其它形式进行记录，但应注意保留原始数据。 表3：线性评价数据记录表（11个浓度水平，重复测定4次）

项目： 仪器： 操作者： 样本号 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 测定1 试剂/批号： 审核者： 测定2 样品： 校准品/批号： 测定日期： 测定3 测定4 均值 3.2 数据可用性检查

可通过绘制散点图对测定数据的可用性进行初步检查。以样本号或样本浓

度为X轴，以测定结果为Y轴做图，在图上标出针对每个样本的测定值及每个浓度水平的测定均值，手工或用计算机做图将均值点相连，观察数据点与直线间的偏差，如偏差过大，表明数据组存在明显非线性，需要对测定过程进行检查，排除因操作错误所至误差，并对样本进行重新测定。如图形与直线接近，表明可对数据组继续进行统计分析。

3.3 剔除离群值

离群值可由散点图初步判断，标准中建议采用格拉布斯（GRUBBS）法进行离群值检验。检验步骤如下:

每组数据中有4个测定结果，分别记为 y1，y2，y3，y4。

(1)将4个测定值按大小顺序排列,最大值记为max,最小值记为 min; (2)由4个测定值计算均值 和标准差S:

=(y1+y2+y3+y4)/4；

(3)根据可疑值 max或 min分别按下式计算统计量t:

t1 = (max-)/S，t2 = (min-)/S;

(4)根据给定的显著性水平a和重复测定次数查表得临界值; (5)如t值大于临界值，则相应的可疑值为离群值。

Grubbs检验临界值(Ta)值表

样本显著性水平 数 样本显著性水平 数

0.05 0.025 0.01 0.005 0.05 0.025 0.01 0.005 3 1.153 1.155 1.155 1.155 4 1.463 1.481 1.492 1.496 3.4 进行多项回归分析

对数据组进行多项回归分析，得到一级、二级与三级多项式。一级多项式为直线，二级多项式表示上升曲线或下降曲线，三级多项式表示S形曲线（在测量范围两端具有明显的非线性）。

多项式方程如下：

级数 多项式 回归自由度（Rdf） 一级 Y = b0 + b1X 2 二级 Y = b0 + b1X + b2X2 3 三级 Y = b0 + b1X + b2X2 + b3X3 4

3.5对回归方程进行线性检验

多元回归方程中以bi表示的系数为回归系数。在二级与三级方程中，b2与b3为非线性系数。对回归方程进行线性检验就是对每个非线性系数作t检验，判断回归系数与零是否有显著性差异。b0与b1不反映非线性，故不需对其进行检验。对b2与b3的检验方法如下：

计算统计量t，计算公式为：

t = bi/ SEi

其中，SEi 为每个非线性系数的斜率标准误，计算公式为：S

其中，Y为回归方程预测值，与为测定均值。

由公式df = L*R-Rdf 计算自由度，L为样本数，R为每个样本的测定次数，Rdf为回归自由度，即回归方程中系数（包括b0）的个数。如测定5样本，每个样本重复测定4次，则对测定数据进行回归分析后其三级多项式中L=5，R=4，Rdf=4，df=5*4-4=16。在t值表中寻找t界值（双边检验，α=0.05），将计算出的t值与界值比较，如p>0.05，表示非线性系数与零无显著性差异，数据组被认为具线性，此时可对数据组进行精密度检验，具体方法见后。当精密度符合线性判断要求时，数据分析可结束。如p<0.05，表示此非线性系数具有统计学显著性，数据组为非线性，此时应进行临床标准的线性与非线性检验。

3.6 临床标准的线性与非线性检验

上述多项式回归分析主要是利用统计学方法进行线性判断，统计学标准的线性可称为一阶线性，对数据组的要求很高。对于在临床实验室中使用的测定方法，在其临床应用实践中允许有一定的非线性误差，此时通过对统计学标准的非线性作程度判断，可得到临床标准的线性，即二阶线性。

临床标准的线性检验中使用了两个统计量，ADL（偏离直线平均差异average deviation from linearity）与PctBnd（百分区界 percent bound） ，对于大多数分析物PctBnd取5%。如ADL小于所要求的临界判断值，则可认为数据组具有临床可接受的线性，所拟合出的最适非线性多项式无临床意义。

（1） ADL值的计算：

ADL表示最优拟合曲线与直线的平均差异，其计算公式如下：

[p(x)?(a?bx)]?Lx 100% ADL = 2x?Xcp(x)：最优拟合二阶或三阶方程的拟合值 a+bx：拟合一阶方程的拟合值 L：样本数

c：总平均浓度（全部测量数据的平均值） c= (y1+y2+y3+……+yn)/n

（2）将ADL与临界值比较

一般设定ADL小于5%为临床允许误差，即取PctBnd为5%，通过查表（见附表A与B）得到ADL临界值。如ADL小于临界值，可认为多项式具有临床可接受的非线性，为二阶线性。如ADL大于临界值，则为临床不可接受的非线性。

3.7 对数据组进行精密度检验

测量数据的精密度可直接影响多项式回归分析的结果，为提高统计功效，

需对数据组进行精密度检验。

（1）计算最优拟合方程的回归标准误（σ）

σ = ?[yi?1ni?p(xi)]2n?d?1yi: 各个测量值

p(xi): 最优拟合方程的拟合值 n: 样本数乘以重复次数(L x R) d: 最优拟合方程的阶数

（2）计算不精密度

用最优拟合方程的回归标准误（σ）与总平均浓度(c)的百分比代表不精密度。

（3）数据组的不精密度检验 跟据以下公式进行判断：

?c?PctBndL?RC?σ：最优拟合方程的回归标准误

c：总平均浓度

?L：样本数 R：重复测量的次数 C：常数(附表C) PctBnd:取5%

不精密度满足判断式时, 说明数据的精密度好可作线性评价。反之则表示数据的精密度差，不能作线性评价。当PctBnd取5%时, 尚可通过查不精密度

和临界值表判断数据是否精密 (附表A和B), 如此时不精密度对应的临界值显示P, 表明测量数据的精密度不符合作线性判断的要求。

4.结果报告

线性范围报告的具体格式不要求，但至少应包括以下几方面： （1） 进行线性评价的实验室或生产厂家名称。 （2） 被评价的方法或试剂名称，批号。 （3） 测定项目。

（4） 线性范围（如为二阶线性应包括临床允许误差）。

（5） 如可能应标出测定项目的医学决定水平及在此水平处的临床允许误

差。

表A 不精密度和ADL的临界值（PctBnd=5%，d=1或2阶） σ/c% 1 2 3 4 5 6 7

?L*R=10 5.5 6.1 6.6 7.1 6.6 8.2 8.7(P)

L*R=12 5.5 6.0 6.4 6.9 7.4 7.9 8.4(P)

L*R=14 5.4 5.9 6.3 6.8 7.2 7.7 8.1

L*R=16 5.4 5.8 6.3 6.7 7.1 7.5 7.9

L*R=18 5.4 5.8 6.2 6.6 7．0 7.4 7.8

L*R=20 5.4 5.7 6.1 6.5 6.9 7.2 7.6

8 9 >9

P P P

P P P

8.6(P) P P

8.3(P) P P

8.1 8.5(P) P

8．0 8.3(P) P

L*R:样本数*重复测量的次数

表B 不精密度和ADL的临界值（PctBnd=5%，d=3阶）

σ/c% 1 2 3 4 5 6 7 8 9 >9

?L*R=10 5.5 6.1 6.7 7.2 7.8 8.4 9.0(P) P P P

L*R=12 5.5 6.0 6.5 7.0 7.6 8.1 8.7(P) P P P

L*R=14 5.4 5.9 6.4 6.9 7.4 7.9 8.4 8.9(P) P P

L*R=16 5.4 5.9 6.3 6.8 7.2 7.7 8.2 8.6(P) P P

L*R=18 5.4 5.8 6.2 6.7 7.1 7.5 8.0 8.4 8.9(P) P

L*R=20 5.4 5.8 6.2 6.6 7.0 7.4 7.8 8.2 8.7(P) P

L*R:样本数*重复测量的次数

表C 不精密度界值的常数

最优拟合方程的阶数

一阶或二阶 三阶

精密度界值的常数（C）

6.3 6.5

体外诊断试剂分析性能评估指导原则 ——可报告范围（征求意见稿）

一、概述

定量分析方法的可报告范围（reportable range）是临床实验室发出检验报告的依据之一，可报告范围包括可报告低限与可报告高限。可报告范围评估资料是评价拟上市产品有效性的重要依据，也是产品注册所需的重要申报资料之一。

本指南基于国家食品药品监督管理局《体外诊断试剂注册管理办法（试行）》的有关要求，参考CLSI有关标准，对定量检测方法中可报告范围的评估方法和数据处理方法进行了原则性要求。其目的是为生产企业进行可报告范围评估及准备可报告范围评估资料提供原则性指导，也为注册管理部门审核该部分分析性能评估资料提供技术参考。同时，本指南亦可指导临床实验室对定量分析方法的可报告范围进行验证。

由于体外诊断试剂产品发展速度快、专业跨度大，国家食品药品监督管理局将根据体外诊断试剂发展的需要，适时对本指南进行修订。

二、可报告范围评估的基本原则

1.实验人员应熟悉测定方法与仪器操作。

2.采用合适的校准品、质控品并保持仪器处于正常状态。 3.用于评价实验的试剂应为同一批号，并在有效期内。

三、可报告范围的评估及数据处理方法

1.实验样本的基本要求和制备方法 1.1 样本要求

最好选择与测定样本具有相同基质的样本。

1.2 制备方法

（1）低值样本：将待测样本（含被分析物）用混合人血清（含被分析物浓度水平较低）或5%牛血清白蛋白生理盐水溶液进行稀释，产生接近于方法线性范围低限浓度水平的样本，一般为5个浓度水平，浓度水平间隔应小于线性范围低限的10%。

（2）高值样本：选取含被测物的高值样本，必要时可添加被分析物的纯品，并计算出理论值。使用混合血清或5%牛血清白蛋白生理盐水溶液或测定方法要求的稀释液对高值待测样本进行稀释，使其接近于线性范围的上1/3区域内，并记录稀释倍数。至少选用三个高浓度样本，稀释倍数应为方法性能标明的最大稀释倍数、并适当增加或减小稀释比例。

2.实验过程

在一次运行中将低值样本重复测定10次，高值稀释样本重复测定3次。 3.数据处理

3.1 数据记录：可根据附表进行数据记录。

3.2 数据统计：分别计算AVE()、SD、CV值。对于可报告范围高限还应计算乘以稀释倍数后的还原浓度和相对偏差。

4.结果报告

4.1 可报告范围低限：以方法性能标示的CV值为可接受界值，由数据中选取CV值等于或小于可接受界值的最低浓度水平做为可报告范围低限。

4.2 可报告范围高限：选取还原浓度与理论浓度的偏差（%）等于或小于方法标示CV值时的最大稀释倍数为方法推荐的最大稀释倍数，方法线性范围的上限与最大稀释倍数的乘积为该方法可报告范围的高限。

附表： 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 AVE SD CV% 浓度1 可报告范围（低限）数据记录表 浓度2 浓度3 浓度4 可报告范围（高限）数据记录 浓度1 浓度2 浓度5 1 2 3 AVE 稀释倍数 还原浓度 理论浓度 相对偏差（%）

浓度3

体外诊断试剂分析性能评估指导原则 ——准确度（回收实验）（征求意见稿）

一、概述

准确度评估资料是评价拟上市产品有效性的重要依据，也是产品注册所需的重要申报资料之一。定量检测方法的回收实验是评估准确度的方法之一，用于评估定量检测方法准确测定加入纯分析物的能力，结果用回收率表示。

本指南基于国家食品药品监督管理局《体外诊断试剂注册管理办法（试行）》的有关要求，参考CLSI有关标准，对采用回收实验进行准确度评估的实验方法和数据处理方法进行了原则性要求。其目的是为生产企业采用回收实验方法进行准确度评估并准备准确度评估资料提供原则性指导，也为注册管理部门审核该部分分析性能评估资料提供技术参考。同时，本指南亦可指导临床实验室采用回收实验方法对准确度进行评估。

由于体外诊断试剂产品发展速度快、专业跨度大，国家食品药品监督管理局将根据体外诊断试剂发展的需要，适时对本指南进行修订。

二、回收实验评估的基本原则

1.实验人员应熟悉测定方法与仪器操作。

2.采用合适的校准品、质控品并保持仪器处于正常状态。

三、回收实验的评估及数据处理方法

1.实验样本的基本要求和制备方法

1.1 选择合适浓度的常规检测样本，分为体积相同的3-4份。

1.2 在其中2-3份样本中加入不同量的待测物标准，制成2-3个不同加入浓度的回收样本，计算加入的待测物的浓度。

1.3 在另一份样本中加入同样量的无被测物的溶剂，制成基础样本。

2.实验过程

用待评价方法对回收样本和基础样本进行测定，通常对样本进行2-3次重复分析，取其均值进行计算。 3.数据处理及结果报告 3.1 计算回收率：回收率1 = 3.2 计算平均回收率：

平均回收率 =

3.3 计算比例系统误差：比例系统误差 = 100% - 平均回收率 3.4 可接受判断：比例系统误差不大于CLIA 88允许总误差的1/2。 4． 注意事项：

4.1 加入体积：加入的标准液体积一般在样本体积的10%以内；并且保证在加样过程中的取样准确度。

4.2 加入待测物的浓度：在保证总浓度在方法分析测量范围内，尽量使加入标准液后样本中的被测物浓度达到医学决定水平。

4.3 标准物浓度：因为标准物溶液加入体积不到10%，为保证得到不同浓度的回收样本，标准物的浓度应该足够高。 5．范例——某法测定血清葡萄糖回收率 5.1 样本制备：

（1）基础血清：血清1ml（浓度5.5mmol/L）+蒸馏水0.1ml;

（2） 回收样本1：血清1ml+0.1ml葡萄糖水溶液（浓度22mmol/L）; （3） 回收样本2：血清1ml+0.1ml葡萄糖水溶液（浓度55mmol/L）； 5.2 采用待评价方法，按照从低到高的浓度顺序，每个样本测定3次，取平

均值。填入下表： 测定浓度加入浓度回收浓度回mmol/L 基础样本 5.00 mmol/L 2.00 5.00 mmol/L 2.06 4.95 率% 103 99 收分析样本1 7.06 分析样本2 9.95 5.3 计算平均回收率：平均回收率 = = 101%。

5.4 计算比例系统误差：比例系统误差 = |100% - 101%| = 1% 5.5 可接受判断：受

> 1%, 该方法的回收试验（准确度）试验可接

体外诊断试剂分析性能评估指导原则 ——准确度（方法学比对）（征求意见稿）

一、概述

很多临床实验室内部，通常会有两个以上的检测系统，多个检测系统之间应该定期进行比对。对于开放检测系统，也应该对系统进行验证，其中最重要的一项便是准确度的评价，准确度评价可以通过方法学比对来实现，利用两种方法的比对对非配套系统的准确度进行评估是评估准确度的方法之一。准确度评估资料是评价拟上市产品有效性的重要依据，也是产品注册所需的重要申报资料之一。

本指南基于国家食品药品监督管理局《体外诊断试剂注册管理办法（试行）》的有关要求，参考CLSI有关标准，对采用方法学比对进行准确度评估的实验方法和数据处理方法进行了原则性要求。其目的是为生产企业采用方法学比对进行准确度评估并准备准确度评估资料提供原则性指导，也为注册管理部门审核该部分分析性能评估资料提供技术参考。同时，本指南亦可指导临床实验室采用方法学比对进行准确度评估。

由于体外诊断试剂产品发展速度快、专业跨度大，国家食品药品监督管理局将根据体外诊断试剂发展的需要，适时对本指南进行修订。

二、方法学比对的基本原则

1.熟悉待评价系统。

2.编写仪器标准操作规程，其中包括校准程序和室内质控程序。 3.比对方法的选择：

对于比较、对方法，采用符合生产厂家要求的实验室现行方法，或采用公认的参考方法。比对方法应具有以下条件：

（1）具有比实验样品方法更好的精密度。 （2）没有已知的干扰物。

（3）同实验样品方法具有相同单位。

比较方法应该选择正确性经过验证的方法，根据实际条件，选择的顺序如下：参考方法、原装系统、配套系统、经过验证的非配套系统。

4.待评价方法的处理：

进行方法学对比实验前，应该对系统进行初步评价（可参考NCCLS EP-10），并且对待评价方法进行精密度评价（参考相关标准），只有在以上评价完成并且达到相关标准后，才可进行对比实验。

三、方法学比对的评估及数据处理方法

1.实验样本的基本要求

1.1 按照实验对样品的要求收集处理病人样品，样本贮存时间及条件由被测组分的稳定性而定，尽可能避免使用贮存的样品。

1.2 样品应来自于许多病人，并且此病人的疾病对于被测组成的影响应该是知道的，不要使用含有干扰此方法的组分或条件(如溶血)样品。

1.3 在具有临床意义范围内即医学决定水平范围内，评价实验样品方法，通常基本从低于参考范围的低限到高于参考范围的高限。分析浓度尽可能在报告的浓度范围内均匀分布。商品质控物或者校准物可能存在基质效应，应避免使用。

2.实验过程

2.1 每天选择8个临床病人样本，按1到8的顺序编号。用两种方法同时进行实验，按照1，2，3，4，5，6，7，8，8，7，6，5，4，3，2，1的样本顺序进行测定。

2.2 以上实验至少重复5天，即至少分析40个不同的临床病人样本。每天实验必须进行校准和室内质控。只有在室内质控合格的情况下，当天的实验室数据才有效。

3.数据处理及结果报告 3.1 记录测定结果（Xii和Yjj）。

3.2 计算每个样本测定的均值（Xi和Yi），样本重复测定间差值的绝对值（DXi 和DYi）及两种方法测定结果间的差值（Yi-Xi）。

3.3 以Yi对Xi作散点图。 3.4 以（Yi-Xi）对Xi做偏倚图。 3.5 以（Yjj-Xij）对Xi做偏倚图。

3.7 检查批内离群点：计算样本重复测定间差值（DXi 和DYi）的平均数，实验结果差值超出平均数4倍时，则判断为离群点。

3.8 检查批间离群点：计算两种方法测定结果间均值差值(Yi-Xi)的平均数，超出该平均数4倍时，则判断该样本为离群点。

3.9 相关系数计算：利用所有样本双份测定值进行相关系数计算，如果r≥0.975(或r2≥0.95)，则认为X范围适合，数据满足要求。X的误差可以由数据范围给以适当补偿，并且简单的线性回归可以用来评价斜率和截距。

如果r2?0.95，那么必须通过分析另外一些样品以扩大数据范围，然后再检查全部数据系列。如果没有超出范围，采用分步偏差程序代替线性回归，评价平均偏差。

3.10回归计算：利所有样本双份测定的有效数据，计算两个方法间的线性回归方程：Y=a+bX.

3.11 偏差估计：在医学决定水平，利用回归方程计算预期偏差,预期偏

差Bx=a+(b-1)X,相对偏差=Bx/X

3.12 根据相关规定，判定预期偏差、相对偏差是否在规定范围内。

体外诊断试剂分析性能评估指导原则

——精密度（征求意见稿）

一、概述

精密度是衡量体外诊断试剂批内和批间变异的重要指标，通常包括批内和批间不精密度。精密度评估资料是评价拟上市产品有效性的重要依据，也是产品注册所需的重要申报资料之一。

本指南基于国家食品药品监督管理局《体外诊断试剂注册管理办法（试行）》（以下简称《办法》）的有关要求，参考CLSI有关标准，对定量检测方法中精密度的评估和数据处理方法进行了要求。其目的是为生产企业进行定量检测方法中精密度的评估提供原则性指导，也为注册管理部门审核该部分分析性能评估资料提供技术参考。同时，本指南亦可指导临床实验室进行定量检测方法的精密度评估。

由于体外诊断试剂产品发展速度快、专业跨度大，国家食品药品监督管理局将根据体外诊断试剂发展的需要，适时对本指南进行修订。

二、定义

1.批内精密度

是众多种类精密度中最基本的一个，它是在严格的相似条件下，所得到的最佳的精密度。

2.批间精密度

指在同一实验室，由同一（组）操作员在同一仪器上，使用同一方法和同种、同一批号试剂，在一段时间内(一般为一个月或20个工作日)对同一测试样品（常用质控品）测量结果的精密度。

三、精密度评估的基本原则

1.操作者必须熟悉方法和/或仪器工作原理，了解并掌握仪器的操作步骤和各项注意事项，能在评估阶段维持仪器的可靠和稳定。

2.用于评估试验的样品一般常采用临床实验室收集的稳定和冷冻贮存的血清(浆)库；当实验室收集的样品不稳定或不易得到时，也可考虑使用稳定的、以蛋白质为基质的商品物质，如校准品或质控品。

3.评估精密度时，应至少评估二个浓度水平样本的精密度。当二个浓度的精密度有显著差异时，建议增加为三个浓度。所选样本浓度应在测量范围内有医学意义，即至少有一个浓度在医学决定水平(medical decision levels)左右。不要为了得到较小的精密度，都选用较高值的样品，甚至超出测量范围。也不应选用靠近最低检出限的样品，此时所得的精密度往往偏大。相当多的检验项目低值常无实际临床意义，但有少数检验项目，其低值也有临床价值，此时就需要评估有判断价值的低值精密度，适用时，可进行功能灵敏度的评估。如没有医学决定水平，可在参考区间上限左右选一个浓度。此外，再根据检验项目的性质在线性区间内选择另一个值。如与厂商或文献报导的精密度进行比较，所选浓度应与被比较精密度的浓度相接近。否则，有可能得出不恰当的结论。

四、精密度评估的方法和数据处理

1.只评估批内不精密度

1.1 试剂和校准品：应使用同一种类、同一批号的试剂和校准物,如可能,只进行一次校准。使用不同批号试剂和多次校准都会增加检验结果的变异程度。

1.2 评估方法：在以上条件满足的情况下，在一批内对样本进行重复测定，至少进行20次重复测定。

1.3 质量控制：检验时应同时至少测一个质控品。当质控品结果超出规定的失控限，不论实验结果是否满意都应弃去不用，重新进行试验以取得20个实验数据。要保存所有的质控数据和失控处理记录。

1.4 数据收集：在进行数据分析前，检查数据中有无由于偶然差错引起的离群值(outliers)，可用下述离群值的标准；从已收集的20数据计算出总均值和标准差，任何结果和总均值的差值超过4个标准差时，可认为是离群值。为了能收集到至少20个有效数据。除补充由于质控失控而增加的测试外，还应再增加由于离群值不用于精密度的计算所需增加的检验次数。

在进行这种批内精密度评估实验时，一次只能有一个离群值，当离群值超过1个时，应怀疑是否为方法不稳定或操作者不熟悉所致。此时，应不用此次试验数据。检查问题和解决问题后重新开始新的评估实验。

1.5数据的记录：将所收集到的数据记录在表1：

表1 批内精密度实验原始数据记录 序号 测量值 （均值-测量值）2 1 2 ... ... 19 20 均值 1.6 批内精密度估计值的计算 求出均值：x=∑Xi/n

使用下列公式计算出批内标准差估计值的标准差

Sr??(x?xi)2/(n?1)

1.7 批内精密度估计值的95%可信限

查统计表得出自由度20的上限公差因数为1.25，相应下限公差因数为0.75，得出批内精密度的95%可信区间为：（批内精密度×0.75）-（批内精密度×1.25）

2.同时评价批内和批间不精密度

2.1 评估方法：

每天做2个批次的测试，每批测试时，对同一样品作双份测量，共做20天。评估结束时共有40对，即80个测试结果。从40批次测量中双份结果的差值求出批内精密度。从所有80个数据计算出批间精密度。

在实施此项评估工作时，必须由同一个或一组操作者在同一台仪器上进行，应该使用相同的校准品、相同种类和批号的试剂。所用时间不得少于20个工作日，这样所测到的精密度能更好地反映出该临床实验室定量测量方法在一段时间内的理想或最适的稳定性。

在每一批次测量中，必须同时测量质控品，以保证结果是可靠的，数据能够采用。

注：①也可以一日进行一个批次测量，一个批次中对同一样品重复测量4次，共测20个工作日，由80个数据求出批内和批间精密度；

②如果取得稳定样品有困难，也可改为测5日，每日2个批次，每个批次测一个样本8次。仍有80个数据。从10个批次中每一样品8次差异算出批内精密度。从所有80个结果计算出批间精密度。

2.2数据的收集

要收集到足够有效数据(至少为80个数据)。除补充由于质控失控而增加的测试外，应在进行数据分析前，检查数据中有无由于偶然差错引起的离群值(outlier)，可用下述剔除值的标准；

从实施段已收集的40对均值的数据计算出总均值和标准差，出现下列任何一种情况都可认为是离群值：

（1）任何一对均值和总均值的差超过4倍标准差 （2）任何一对中二个结果的绝对差值超过4倍标准差

离群值不用于精密度的计算。在剔除后应再增加检验次数，以保证至少有40批次，80个数据进行计算。

注：任何一次实验的剔除值不能超过总测量数的2.5%。当超过时，应怀疑是否为方法不稳定或操作者不熟悉所致。此时应不用此次试验数据，重新开始新的试验。

2.3数据的记录

将所收集到的数据记录在表2

表2 精密度实验原始数据记录

批次1 序号 日期 结果1 结果2 均值 1 1 2 结果结果2 均值 批次2 …… ……

19 20 2.4批内精密度的计算

按表3要求对数据进行进一步计算，将结果填入表3

表3 精密度实验原始数据计算 批次1 日 （结果1-结果2）2 （结果1-结果2）2 1 2 …… …… 19 20 批次2 利用表4中的结果(3)、(4)可计算出批内精密度Sr：

Sr??(x1?x2)2/(4I) ，其中I=检验日数

2.5 批间精密度估计值的计算 将上述实验结果记录在表4中

表4：批间精密度实验原始数据记录

第一批 序 日 （均值-结果（均值-结果号 期 结果1 结果2 21） 2）2 1 2 … … 19 第二批 （均值-结果（均值-结果结果1 结果2 21） 2）2

20 合计 (1) (5) (2) (6) （3） （7） （4） （8） 求出均值，公式为：X??X/n 从上表得出：X?[(1)?(2)?(3)?(4)]/n

求出批间精密度，公式为：

2Srr?【?（均值-结果1）??(均值-结果2)2】/(n?1)

从上表得出

Srr?[(5)?(7)?(6)?(8)]/(n?1)

式中n=检验总数

2.6 批间精密度估计值的臵信区间

由于检验次数不可能无限增加，当按规定方案，多次重复测量，就是在很好控制条件下，也很难得到相同的值，换言之，通过这样实验的数值只是精密度的估计值，围绕“真值”而变动。变动的范围大小和检验次数密切相关。人们往往在给出精密度值外，还给出其95%的臵信区间。

臵信区间与所测次数相关，次数愈多，可信限愈小。可以查出与检次数相关自由度的0.95因数，乘以标准差值就可得出95%可信限的上、下值。实际工作中，可查出95%可信限的上值的公差因数（tolerance factor），由此计算出95%可信限。实验室在报告精密度同时，可给出95%臵信区间。

3.与其它来源的精密度的比较

临床实验室在测定方法的精密度后，应评价得到的精密度是否满意，最简单办法就是与生产企业（文献）所提供的精密度进行比较，判断是否存在差异。如果临床实验室所测的精密度小于生产企业（文献）的精密度，说明临床实验室所得到的精密度是合适的。如果临床实验室测得的精密度大于生产企业（文献）的值，可利用F-检验法（F-test），即方差比值检验（variance ratio test）

对实验室测得的结果和生产企业提供的结果进行比较计算。表5是为此工作设计的数据记录和计算表格：

表5 与生产企业（文献）声明批间标准差的比较表

实验浓度= 实验标准差=sr或srr 方差=sr2或srr2 测量次数自由度=n-1 声明浓度= 声明标准差=σr或σrr 方差=σr2或σrr2 声明测量次数自由度=n-1 注：标准差大小常与浓度有关，比较时，必须检查二者浓度是否接近一致，如差异较大不应进行比较。如接近一致，按下列公式计算出F值，以批间精密度为例： F=Srr2/σrr2

将计算出的F值和根据二组自由度从表6中查到的F值(p=0.05)进行比较，如计算F值小于查表得出F值，虽然实验室得到的标准差大于声称值，但在统计学上无差异。反之，说明实验室得到的标准差没有达到方法应达到的水平。此时，实验室应该进一步改善条件，例如培训操作人员，修改操作程序或者维修仪器等再次进行测定。仍然达不到时，应与生产企业讨论和取得协助。

表6 F分布临界值表(p=0.05)

分母自由度 05 10 15 20 30 40 60 100 120 分子自由度 5 10 14 20 40 50 100 200 ∞ 5.05 4.74 4.64 4.56 4.46 4.44 4.41 4.39 4.36 3.33 2.98 2.86 2.77 2.66 2.64 2.59 2.56 2.54 2.90 2.54 2.42 2.33 2.20 2.18 2.12 2.10 2.07 2.71 2.35 2.22 2.12 1.99 1.97 1.91 1.88 1.84 2.53 2.16 2.04 1.93 1.79 1.76 1.70 1.66 1.62 2.45 2.08 1.95 1.84 1.69 1.66 1.59 1.55 1.51 2.37 1.99 1.86 1.75 1.59 1.56 1.48 1.44 1.39 2.31 1.93 1.79 1.68 1.52 1.48 1.39 1.34 1.28 2.29 1.91 1.78 1.66 1.50 1.46 1.37 1.32 1.25

∞ 2.21 1.83 1.69 1.57 1.39 1.35 1.24 1.17 1.00 五、精密度的报告形式

精密度的结果受众多因素影响，在报告测量精密度时，应同时说明下列各点：

? 批内标准差及其95%臵信区间； ? 批内变异系数;

? 批间标准差及其95%臵信区间; ? 批间变异系数; ? 实验进行的工作日数; ? 检验批次数;

? 每个批次重复检验数和总检验数; ? 试剂的种类和批号;

? 校准品种类、批号和校准次数; ? 如适用，使用仪器的种类和型号。

体外诊断试剂分析性能评估指导原则 ——干扰实验（征求意见稿）

一、概述

干扰物质是体外诊断试剂使用过程中造成测量误差的一个主要原因，针对体外诊断试剂进行的干扰实验是指通过实验查找出对体外诊断试剂测量结果产生影响的物质的过程。干扰实验评估资料是评价拟上市产品有效性的重要依据，也是产品注册所需的重要申报资料之一。

本指南基于国家食品药品监督管理局《体外诊断试剂注册管理办法（试行）》（以下简称《办法》）的有关要求，参考CLSI有关标准，对干扰实验的评价方法、实验所需材料、实验过程及实验结果处理进行了原则性要求。其目的是为生产企业进行干扰实验评估及准备干扰实验评估资料提供原则性指导，也为注册管理部门审核该部分分析性能评估资料提供技术参考。

由于体外诊断试剂产品发展速度快、专业跨度大，国家食品药品监督管理局将根据体外诊断试剂发展的需要，适时对本指南进行修订。

二、干扰实验评估的基本原则

（一）干扰物质来源：干扰物质可能来自内源或外源物质。可疑干扰物质的来源通常有：

1.常见的异常标本，例如溶血、黄疸及脂血； 2.普通的处方药及非处方药； 3.患者群体中异常的生化代谢物； 4.患者群体中常见的治疗药物； 5.干扰测量程序的药物（包括代谢物）； 6.已报道干扰相似测量程序的物质；

7.标本处理过程中的添加物，例如抗凝剂、防腐剂；

8.采集及处理过程中接触标本的物质，例如血清分离设备、导管、标本收集容器及塞子；

9.影响某些实验的膳食物质，例如咖啡因，β- 胡萝卜素，罂粟籽。 （二）在实施评价实验前，必须决定临床可接受的标准。

（三）在实施评价实验前，操作者必须熟悉仪器设备及测量程序并对精密度及准确度进行评价，在进行实验设计时要避免遗留效应影响分析结果，确保分析系统保持稳定。

三、干扰实验的评估及数据处理方法

干扰物质对实验结果的影响，一般是通过测定对照或基础样本池中待测物的浓度计算得出的。在某些情况下，对照样本池中可能含有一定量的内源性干扰物质，如胆红素、血红蛋白、蛋白质和脂类。在一些测量程序中，采用标本前处理、样本空白、血清基质校正物和因子校正等手段以减少这些干扰物质在平均浓度下的影响，只有当患者样本中干扰物质浓度高于或低于平均水平时，由于干扰物质引起的误差才会显现出来。

基于此，有两种评估干扰物质的基本方法，每一种方法都有它的优点及内在局限性，当两种方法同时使用时，可提供相互补充的信息。一种方法是将可疑干扰物质加入样本以评价干扰效果，另一种方法是测量个别有代表性病人标本，相对于高特异性可比较的测量程序评价被分析测量程序产生的偏倚。

（一）干扰筛查

评价很多可疑干扰物质在相对较高浓度下所产生的干扰，称此为“干扰筛查”。将可疑干扰物质加入基础样本池，计算实验样本相对于对照样本测量结果所产生偏倚，称此为“配对差检验”。如果可以观察到临床显著性影响，可

以认为此种物质为干扰物质，需要进一步评估干扰物质浓度与干扰程度的关系。

1.实验材料和基本要求

（1）基础样本池：从一些未服用药物的健康个体获得新鲜标本，以此反应标本基质。若不能获得新鲜标本，可使用冷冻或冻干的标本代替，但应保证实验材料充分接近新鲜临床标本。使用适当纯度的分析物将样本池中分析物的浓度调整到医学决定水平，但要避免引入其它的干扰物质。

（2）储存溶液：准备一种适当纯度或者最接近循环形式的可疑干扰物质。选择一种实验物质能充分被溶解的溶剂，例如试剂纯水、稀释的HCl或NaOH、甲醇或乙醇、丙酮、二甲亚砜（DMSO）及其他有机溶剂。制备至少20倍干扰物实验浓度的储存溶液。

（3）每个标本所需要的重复测量次数： 双侧检验的实验重复次数为：

，单侧检验用Z1-α

代替Z1-α/2。其中，Z1-α/2是双侧检验的可信度为100(1-α)% 时标准正态分布相对应的百分位数；Z1-α是单侧检验的可信度为100(1-α)% 时标准正态分布相对应的百分位数；Z1-β是把握度为100(1-β)%时标准正态分布相对应的的百分位数；dmax是检测分析物浓度时最大允许的干扰（interference）；s是测量程序的重复性标准差。由于实验次数必须为整数，所以将计算结果四舍五入为整数。

（4）干扰物实验浓度：干扰物质浓度应达到病理标本的最高浓度值。 （5）分析物实验浓度：分析物实验浓度应选择两个浓度水平。在大多数情况下，可选择医学决定水平、参考范围的上、下限或病理浓度。

2.实验过程

本文来源：https://www.bwwdw.com/article/l3r7.html