酶活性的测定
更新时间:2023-10-31 11:49:01 阅读量: 综合文库 文档下载
准确称取天山云杉种子0.1 g,先加入 1 ml 预冷的50 mmol/ L的磷酸缓冲液 (pH 7.0,内含1 mmol/ L EDTA),研磨成匀浆,然后用 4.5 ml 分两次冲洗研钵至试管中,4 ℃,10000 r/min 离心 20 min,上清液即为酶提取液,4 ℃保存用于ROS系统酶活性分析。 3 酶活性的测定
3.1 过氧化物酶 (POD,EC 1.11.1.7) 活性的测定。
按照 Chance 和 Maehly[6]的方法,并作如下修改:反应混合液为50 mmol/ L的磷酸缓冲液 (pH 7.0,内含 0.1 mmol/ L EDTA) 2.9 mL,2 % H2O2 1.0 mL,50 mmol/ L 愈创木酚1.0 mL。测定时,反应混合液先在 25 ℃ 水浴中预热,立即加入0.1 mL酶液以启动反应,以缓冲液调零,测定OD470值,每隔 30 s读数一次。取 0 — 60 s 时间段,即 1 min 反应时间来计算酶活性。以每分钟OD470增加0.01的酶量为一个酶活单位,U·g-1。
计算公式: POD活性 = ΔA470 × Vt × (0.01× t × FW × V1) -1 注: ΔA470:反应时间内吸光度的变化;Vt:酶提取液总体积,ml;V1:测定用酶提取液体积,ml;FW:样品鲜重,g;t: 反应时间,1 min 3.2 过氧化氢酶 (CAT,EC 1.11.1.6) 活性的测定。
按照 Aebi[7]的方法,并作如下修改: 反应混合液为酶液 0.2 mL (空白管以失活的酶液代替),50 mmol/ L的磷酸缓冲液 (pH 7.0,内含 0.1 mmol/ L EDTA) 1.5 ml,蒸馏水 1.0 ml。测定时,反应混合液和 0.1 mol/ L H2O2 预先在 25 ℃ 水浴中预热。取反应混合液,加入0.1 mol/ L H2O2 0.3 ml,终体积为 3 ml,测定OD240值,每隔1 min读数一次,共读4 min。以每分钟OD240减少0.1的酶量为一个酶活单位,U·g-1。
计算公式:CAT活性 = ΔA240 × Vt × (0.1× t× FW × V1) -1
注: ΔA240:A0-(A1+ A2) / 2;A0:对照管的吸光度;A1,A2:样品管的吸光度;Vt:酶提取液总体积,ml;V1:测定用酶提取液体积,ml;FW:样品鲜重,g;t: 反应时间,1 min 3.3 超氧化物歧化酶 (SOD,EC 1.15.1.1) 活性的测定。
按照 Giannopolitis 和 Ries[8]的方法,并作如下修改:反应体系: 50 mmol/ L,pH 7.8 磷酸缓冲液3.0 ml,130 mmol/L甲硫氨酸0.6 ml,750 μmol/L氮蓝四唑0.6 ml,0.1 mmol/ L EDTA 0.6 ml,酶提取液0.2 ml(对照管以失活的酶液代替),蒸馏水 1.0 ml,20 μmol/ L核黄素0.6 ml。混匀后,将一支对照管放置暗处,其他各管置于 30 ℃光照为 4000 lx 日光灯下反应 20 min(要求照光情况一致,视酶活性高低适当调整反应时间)。至反应结束后,用黑布遮住试管,终止反应。以避光的对照管作为空白,测定各管OD560值。以抑制NBT光化还原的50 % 为一个酶活单位,U·g-1。
计算公式:SOD活性 = (A0-As) × Vt × (0.5 × A0 × FW × V1) -1
注: A0:照光对照管的吸光度;As:样品管的吸光度;Vt:酶提取液总体积,ml;V1:测定用酶提取液体积,ml;FW:样品鲜重,g
3.4 抗坏血酸过氧化物酶 (APX,EC 1.11.1.11) 活性的测定。
按照 Nakano 和 Asada[9]的方法,并作如下修改: 反应混合液为 50 mmol/ L 磷酸缓冲液(pH 7.0,内含 0.1 mmol/ L EDTA),0.5 mmol/ L ASA。测定时,反应混合液和 6 mmol / L H2O2 预先在 25 ℃ 水浴中预热。取反应混合液 2.9 ml,加入酶液 50 μl,加入 6 mmol / L H2O2 50 μl (终浓度为 0.1 mmol/ L) 以启动反应,终体积为 3 ml,以不加H2O2作空白调零,测定 OD290值,每隔 10 s读数一次。取 0 — 30 秒时间段,即 30 秒反应时间来计算酶活性。以每分钟氧化1 μmol ASA的酶量为一个酶活单位,U·g-1·min-1。
计算公式: APX活性 = ΔA290 × Vt × (2.8 × t × FW × V1) -1 注: ΔA290:反应时间内吸光度的变化;Vt:酶提取液总体积,ml;V1:测定用酶提取液体积,ml;2.8: 1 mmol ASA在290nm波长的消光系数;FW:样品鲜重,g;t: 反应时间,0.5min 3.5 谷胱甘肽还原酶 (GR,EC 1.6.4.2) 活性的测定。
按照 Halliwell 和 Foyer[10]的方法,并作如下修改:反应混合液为 50 mmol/ L 磷酸缓冲液, (pH 7.5,内含 0.1 mmol/ L EDTA),5 mmol/ LMgCl2。测定时,反应混合液、10 mmol/ LNADPH2 和 10 mmol/ L GSSG 预先于 25℃ 水浴中预热。取反应混合液 2.34 ml,加入酶液 450 μl、10 mmol/ L NADPH2 60 μl ( 终浓度为 0 . 2 mmol/L ) 及 10 mmol/ L GSSG 150 μl (终浓度为 0.5 mmol/ L ) 以启动反应,终体积为 3 ml,以缓冲液代替酶液调零,测定OD340值,每隔 30 s读数一次。取 0 — 3.5 min 时间段,即 3.5 min 反应时间来计算酶活性。以每分钟消耗1 μmol NADPH的酶量为一个酶活单位,U·g-1·min-1。
计算公式: GR活性 = ΔA340 × Vt × (6.22 × t× FW × V1) -1 注: ΔA340:反应时间内吸光度的变化;Vt:酶提取液总体积,ml;V1:测定用酶提取液体积,ml;6.22: 1 mmol NADPH在340nm波长的消光系数;FW:样品鲜重,g;t: 反应时间,3.5min
3.6 谷胱甘肽过氧化物酶 (GPX,EC.1.11.1.9) 活性的测定。
按照黄爱缨[3]、Flohe[4,5]等的方法,并作如下修改:反应体系由1.0 mmol/ L GSH 0.2 ml (含2.5 mmol/ L NaN3),酶液0.2 ml组成,由37 ℃预热的1.5 mmol/L H2O2 0.1ml启动反应,立即于37 ℃水浴中反应3 min后, 加1.67 % 的偏磷酸沉淀液 (含2 % EDTA-2Na, 28 % NaCl) 2 ml 沉淀蛋白质,5000 r/min离心20 min,保留上清液。取上清液1 ml (空白管加入双蒸水0.2ml和1.67%的偏磷酸沉淀液0.8 ml),加入0.32 mol/L Na2HPO4 1.25 ml 及DTNB (5,5’-二硫对二硝基苯甲酸) 0.25 ml,反应5 min,测OD422值。必要时也要测定样品本身的GSH (及其他-SH) 的值。以单位鲜重 (g) 的植物样品,在37 ℃下,每分钟使GSH的改变为总量的0.001时为一个酶活性单位(扣除非酶反应的GSH) ,U·g-1·min-1。
计算公式: GPX活性 = (A0-As) × Vt × (0.001 × A0 × t × FW × V1) -1
注: A0:照光对照管的吸光度;As:样品管的吸光度;Vt:酶提取液总体积,ml;V1:测定用酶提取液总体积,ml;FW:样品鲜重,g;t:反应时间,5min
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