TCID50,EID50等数据的计算(可打印修改)
更新时间:2023-05-06 19:47:01 阅读量: 实用文档 文档下载
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中和试验
动物受到病毒感染后,体内产生特异性中和抗体,并与相应的病毒粒子呈现特异性结合,因而阻止病毒对敏感细胞的吸附,或抑制其侵入,使病毒失去感染能力。中和试验
(Neutralization Test)是以测定病毒的感染力为基础,以比较病毒受免疫血清中和后的残存感染力为依据,来判定免疫血清中和病毒的能力。
中和试验常用的有两种方法:一种是固定病毒量与等量系列倍比稀释的血清混合,另一种是固定血清用量与等量系列对数稀释(即十倍递次稀释)的病毒混合;然后把血清-病毒混合物置适当的条件下感作一定时间后,接种于敏感细胞、鸡胚或动物,测定血清阻止病毒感染宿主的能力及其效价。如果接种血清病毒混合物的宿主与对照(指仅接种病毒的宿主)一样地出现病变或死亡,说明血清中没有相应的中和抗体。中和反应不仅能定性而且能定量,故中和试验可应用于:
1.病毒株的种型鉴定:中和试验具有较高的特异性,利用同一病毒的不同型的
毒株或不同型标准血清,即可测知相应血清或病毒的型,所以,中和试验不但可以定属而且可以定型。
2.测定血清抗体效价:中和抗体出现于病毒感染的较早期,在体内的维持时间
较长。动物体内中和抗体水平的高低,可显示动物抵抗病毒的能力。
3.分析病毒的抗原性。
毒素和抗毒素亦可进行中和试验,其方法与病毒中和试验基本相同。用组织细胞进行中和试验,有常量法和微量法两种,因微量法简便,结果易于判定,适于作大批量试验,所以近来得到了广泛的应用。
(一)定血清-稀释病毒法(病毒中和试验)
1.病毒毒价的测定
毒价单位:衡量病毒毒价(毒力)的单位过去多用最小致死量(MLD),即经规定的途径,以不同的剂量接种试验动物,在一定时间内能致全组试验动物死亡的最小剂量。但由于剂量的递增与死亡率递增不呈线性关系,在越接近100%死亡时,对剂量的递增越不敏感。而一般在死亡率越接近50%时,对剂量的变化越敏感,故现多改用半数致死量(LD50)作为毒价测定单位,即经规定的途径,以不同的剂量接种试验动物,在一定时间内能致半数试验动物死亡的剂量。用鸡胚测定时,毒价单位为鸡胚半数致死量(ELD50)或鸡胚半数感染量 (EID50)。用细胞培养测定时,用组织细胞半数感染量(TCID50)。在测定疫苗的免疫性能时,则用半数免疫量(IMD50)或半数保护量(PD50)。
1)LD50的测定(以流行性乙型脑炎病毒为例)。
测定方法:将接种病毒,并已发病濒死的小鼠,无菌法取脑组织,称重、加稀释液充分研磨,配制成10-1悬液,3 000r/min离心20分钟,取上清液,以10倍递次稀释成10-1、10-2、10-3 ……10-9,每个稀释度分别接种5只小鼠,每只脑内注射0.03ml,逐日观察记录各组的死亡数。
表2-24 LD50的计算(接种剂量为0.03ml)
1
病毒稀释度10-410-510-610-710-810-9接种鼠数555555
活鼠数001455
死鼠数554100死亡15105100
积累总计
活鼠00151015死亡比15/1510/105/61/60/100/15死亡率(%)100100831700
●LD50的计算:按Reed和Muench氏法计算。
距离比例= (高于50%的死亡分数-50%) / (高于50%的死亡百分数-低于50%的死亡百分数) = (83%-50%) / (83%-17%)
= 0.5
LD50的对数=高于50%病毒稀释度的对数+距离比例×稀释系数的对数
本例高于50%病毒稀释度的对数-6,距离比例为0.5,称释系数的对数为-1。代入上式:
LgLD=-6+0.5×(-1)=-6.5
则LD50=10-6.5,0.03ml,(10-6.5也写作10E-6.5),即该病毒作10-6.5稀释,接种0.03ml能使半数小鼠发生死亡。
注意:稀释血清法中和试验,计算TCID50或LD50,MID50时,计算公式应改为:TCID50的对数=高于50%血清稀释度的对数-距离比例×稀释系数的对数。
●如按Karber氏法计算,其公式为:
IgLD50(或TCID50)=L+d(S-0.5)
L为病毒最低稀释度的对数,d为组距,即稀释系数,S为死亡比值的和。
本例L=-4,d=-1,S=1+1+5/6+1/6=3
IgLD50=-4+(-1)×(3-0.5)=-6.5
则LD50=10-6.5,0.03ml
注意:用本法计算稀释血清中和试验中和效价时,S应为保护比值之和。
2)EID50的测定(以新城疫病毒为例)
将新鲜病毒液体10倍递次稀释法释成10-1、10-2、10-3……10-9不同稀释度,分别接种9-10日龄鸡胚尿囊腔,鸡胚必须来自健康母鸡,并且没有新城疫抗体。每只鸡胚接种
0.2ml,每个稀释度接种6只鸡胚为一组,以石蜡封口,置37-38℃培养,每天照蛋,24h之内死亡的鸡胚弃掉,24h之后死亡的鸡胚置4℃保存。连续培养5天,取尿囊液作血球凝集试验,出现血凝者判阳性,记录结果,按上述方法计算 EID50。
2
3)TCID50的测定(以致细胞病变病毒为例)
取新鲜病毒悬液,以10倍递次稀释成不同稀释度,每个稀释度分别接种经Hank’s液洗3
次的组织细胞管,每管细胞接种0.2ml,每个稀释度接种4只细胞管,接种病毒后的细胞
管放在细胞盘内,细胞层一侧在下,使病毒与细胞充分接触,放置37℃吸附1h,加入维持液,置37℃培养,逐日观察并记录细胞病毒管数,按上述方法计算TCID50。
2.中和试验
1)病毒稀释度的选择
选择病毒稀释度范围,要根据毒价测定的结果而定,如病毒的毒价为10-6,则试验组选
用10-2-10-8对照组选用10-4-10-8其原则是:最高稀释度要求动物全存活(或无细胞病变),最低稀释度动物全死亡(或均出现细胞病变)。
2)血清处理
用于试验的所有血清在用前须作56℃30min加温灭活。但来自不同动物的血清,灭活的
温度和时间也是不同的。
3)病毒的稀释
按选定的病毒稀释度范围,将病毒液作10倍递次稀释,使之成为所需要的稀释度。
4)感作
将不同稀释度病毒分别定量加入两排无菌试管内,第一排每管加入与病毒等量的免疫
(或被检)血清作为试验组;第二排每管加入与免疫(或被检)血清同种的正常阴性血
清作为对照组;充分摇匀后放37℃感作12h。
5)接种
按“病毒价测定”中所述接种方法接种试验动物(或鸡胚、组织细胞)。观察持续时间,根据病毒和接种途径而定。
6)中和指数据计算
物按Reed和Muench两氏法(或Karber)法分别计算试验组和对照组的LD50(或
EID50、TCID50)
试验级LD50 (EID50、TCID50)
中和指数 =
对照组LD50 (EID50、TCID50)
假如试验组LD50为10-2.2,对照组LD50为10-5.6。则中和指数为
103.3,103.3=1 995,也就是说该待检血清中和病毒的能力比正常血清大1995倍
7)结果判定
固定血清—稀释病毒法进行中和试验,当中和指数大于50,表示补检血清中有中和抗体;中和指数在10-50为可疑;若中和指数小于10为无中和抗体存在。
(二)固定病毒-稀释血清法(血清中和试验)
1.病毒毒价的测定(微量法)
1)病毒的制备
3
将病毒接种于单层细胞,37℃吸附1h后加入维持液,置温箱培养;逐日观察,待细胞病
变(CPE)达75%以上,收获病毒悬液冻融或超声波处理,以3 000r/min离心10min,取
上清液,定量分装成1ml小瓶置-70℃保存备用,选用的病毒必须是对细胞有较稳定的致
病力。
2)病毒毒价测定
取置-70℃冰箱保存的病毒一瓶,将病毒在96孔培养板上作10倍递进稀释即10-1,10-
2,10-11……,每孔病毒悬液量为50μl,每个稀释度作8孔,每孔加入100细胞悬液,
每块板的最后一行设8孔细胞对照,制备细胞悬液的浓度以使细胞在24h内长满单层为
度。把培养板置5%CO2温箱37℃培养,从48-14h逐日观察细胞病变,记录结果。
按Reed和Muench两氏法计算TCID50。
56%-50%
距离比例 =
56%-33%
表2-25 TCID50计算(接种剂量50μl)
病毒稀释度10-210-310-410-510-610-710-810-9接种数88888888 CPE数88754420无CPE数00134468 CPE3931231510620累计
无CPE00148121826 CPE率39/3931/3123/2415/1910/186/182/200/26百分数(%)10010096795633100 IgTCID50 = -6+0.26×(-1) = -6.3
则TCID50=10E-6.3,50即病毒作10E-6.3稀释,每孔接种50μl,可使半数组织细胞管发生
病变。
2.中和试验
1)血清的处理
动物血清中,含有多种蛋白质成分对抗体中和病毒有辅助作用,如补体、免疫球蛋白和
抗补体抗体等。为排除这些不耐热的非特异性反应因素,用于中和试验的血清须经加热
灭活处理。各种不同来源的血清,须采用不同温度处理,猪、牛、猴、猫及小鼠血清为60℃;水牛、狗及地鼠血清为62℃;马兔血清为65℃;人和豚鼠血清为56℃。加热时间
为20-30min,60℃以上加热时,为防止蛋白质凝固,应先以生理盐水作适当稀释。
2)稀释血清
取已灭活处理的血清,在96孔微量细胞培养板上,用稀释液作一系列倍比稀释,使其稀
释度分别为原血清的1:2、1:4、1:8、1:16、1:32、1:64,每孔含量为50μl,每个稀释度作
4孔。
3)病毒
取-70℃冰箱保存的病毒液,按经测定的毒价作200TCID50稀释(与等量血清混合,其
毒价为100TCID50)。如本例病毒价为10-6.3,50μl。所以应将病毒作2×10-4.3稀释。
4
4)感作
每孔加入50μl病毒液,封好盖,置于37℃温箱中和1h。
病毒与血清混合,0℃下,不发生中反应,4℃以上中和反应即可发生。常规采用37℃作
用1h,一般病毒都可发生充分的中和反应。但对易于灭活的病毒可置4℃冰箱感作,根
据不同耐热性的病毒感作温度和时间应有所不同。
5)加入细胞悬液
在制备细胞悬液时,其浓度以在24h内长满单层为度:血清病毒中和1h后取出,每孔加入100μl细胞悬液。置5%CO2 37℃温箱培养,自培养48h开始逐日观察记录,14h终判。
由于各种病毒引起细胞病变时间不同,终判时间应根据病毒致细胞病变的快慢而定。
6)设立对照
为保证试验结果的准确性,每次试验都必须设置下列对照,特别是在初次进行该种病毒
的中和试验时,尤为重要。
阳性和阴性血清对照:阳性和阴性血清与待检血清进行平行试验,阳性血清对照应不出
现细胞病变,而阴性血清对照应出现细胞病变。
病毒回归试验:每次试验每一块板上都设立病毒对照相馆,先将病毒作
0.1、1、10、 100、1000 TCID50稀释,每个稀释度作4孔,每孔加50μl。然后每孔
100μl细胞悬液。 0.1TCID TCID50应不引起细胞病变,而且100TCID TCID50必须引起细胞病变,否则该试验不能成立。
血清毒性对照相:为检查被检血清本身对细胞有无任何毒性作用,设立被检血清毒性对
照是必要的。即在组织细胞中加入低倍稀释的待检血清(相当于中和试验中被检血清的
最低稀释度)。
正常细胞对照相:即不接种病毒和待检血清的细胞悬液孔。正常细胞对照应在整个中和
试验中一直保持良好的形态和生活特征,为避免培养板本身引起试验误差,应在每块板
上都设立这一对照。
7)结果判定和计算
当病毒回归试验,阳性、阴性、正常细胞对照相,血清毒性对照全部成立时,才能进行
判定,被检血清孔出现100%CPE判为阴性,50%以上细胞出现保护者为阳性;固定病毒稀释血清中和试验的结果计算,是计算出能保护50%细胞孔不产生细胞病变的血清稀释度,该稀释度即为该份血清的中和抗体效价。
用Reed和Muench两氏法(或Karber法)计算结果,如表2-26
距离比例=(80%-50%) / (80%-20%) =0.5
Ig TCID50=高于50%血清稀释度的对数-距离比例×稀释系数的对数
Ig TCID50=(-1.5)-0.5×(-0.3)=-1.35
表2-26 固定病毒-稀释血清法中和抗体效价计算
血清稀释1:4 (10-
0.6)1:8(10-
0.9)
1:16(10-
1.2)
1:32(10-
1.5)
1:64(10-
1.8)
CPE数0/40/41/43/44/4
总空数00134
无CPE数44310
5
CPE00148
累计
无CPE128410 CPE比率0/120/81/54/58/8
百分数(%)002080100
则TCID50=10E-1.36,50μl
因10E-1.35=1/22,即1:22的血清可保护50%细胞不产生病变,1:22就是该份血清的中和抗体效价。
(三)影响中和试验的因素:
1)病毒毒价的准确性是中和试验成败的关键,毒价过高易出现假阴性能,过低会出现假
阳性。在微量血清中和试验中,一般使用100-500 TCID50。
2)用于试验的阳性血清规戒律,必须是用标准病毒接种易感动物制备的。
3)细胞量度的多少与试验有密切关系,细胞量过大或过小易造成判断上的错误,一般以
在24h,内形成单层为宜。
4)毒价测定的判定时间应与正式试验的判定时间相符。
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