趋化因子生物活性的测定

趋化因子生物活性的测定

1.基本原理：

趋化因子的趋化作用没有种属特异性，趋化因子的靶细胞主要有中性粒细胞、单核细胞、淋巴细胞、嗜酸性粒细胞、嗜碱性粒细胞、树突状细胞和成纤维细胞等。（以IL-8为例）

IL-8是典型的CXC家族趋化因子，对嗜中性粒细胞和T淋巴细胞有趋化作用。由于它的趋化作用没有种属特异性，因此，可以用豚鼠嗜中性粒细胞代替人嗜中性粒细胞对其进行活性检测。

趋化因子诱导的细胞移动方式有两类： 化学增活现象，指增强细胞的随机运动，琼脂糖小滴化学动力实验是检测这种活性的比较简易，快速，重复性好的方法。

趋化性，指诱导细胞向趋化因子化学浓度高的方向移动。琼脂糖中的趋化实验和微孔小室中的趋化实验则是常用的测定细胞因子趋化活性的方法。

微孔小室中的趋化实验：

微孔小室中的趋化实验是根据靶细胞（单核巨噬细胞，中性粒细胞或淋巴细胞等）能够趋化性主动迁移，穿过一定孔径的滤膜而设计的。滤膜将小室分隔成上下两部分。靶细胞在上面，趋化因子在下面，趋化因子通过滤膜形成梯度，细胞则沿着梯度穿过膜孔，黏附在膜的下面，染色并计数滤膜下表面的细胞数即可测出趋化因子的趋化能力。

趋化材料和趋化时间的选择：

趋化滤膜的材料和孔径需根据靶细胞的大小选择；中性粒细胞用3μm孔径的PVPF聚碳酸膜（ Polycarbonate membranes）, 趋化时间为30分钟；单核细胞用8μm孔径的PVPF聚碳酸膜，趋化时间为90分钟；粘附力弱的淋巴细胞则用下表面复以明胶或纤粘素的5μm或8μmPVPF聚碳酸膜，以免淋巴细胞穿过膜后落入下室，趋化时间为180分钟。

趋化因子浓度的确定：

由于趋化因子的特异活性非常高，某些趋化因子在较高浓度时促进细胞趋化的作用反而降低，所以待测样品常需连续稀释（5倍或10倍系列稀释）以获得最适剂量的趋化结果。每次实验都需设好对照，因为不同来源或不同活力靶细胞的趋化能力差异很大。

趋化因子活性的表达方式有三种，其中最常用的是用趋化指数表示，趋化指数（chemotactic index,CI）是指细胞迁移到待测样品液的数目和迁移到对照液的数目的比值。

2.试剂和材料：

纯化的IL-8 注射器，离心管，移液器，Tip头 0.17% D(+)-糖原/生理盐水 解剖器械（剪刀，镊子，止血钳）

17%D(+)-Glycogen 趋化小室，趋化滤膜，细胞刮子

计数板，显微镜，玻璃片

红细胞裂解液：

0.17M Tris0.16M NH4CL

将10ml 0.17M Tris加至90ml 0.16M NH4Cl中，调至PH7.2

甲醇，Gimsa染色液 Hanks使用液 RPMI1640 豚鼠中性粒细胞

3.实验程序：

一．豚鼠嗜中性粒细胞的制备：

1） 取成年豚鼠1只，腹腔注射含0.17%糖原的生理盐水，13小时后，用PBS缓冲液

冲洗腹腔，收集腹腔液，1500rpm/min 10min,弃上清。

2） 轻轻弹起沉淀，用3-5ml PH 7.2的37oC预温的（ Tris-NH4CL） 红细胞溶解液，

充分吹散，作用3-5分钟，立即加入10-15ml serum-free RPMI1640,吹打均匀，1500rpm/min 5min,弃上清，再加入serum-free RPMI1640,离洗两次。得到豚鼠嗜中性粒细胞，纯度可达97%以上。

3） 将纯化后的嗜中性粒细胞溶在serum-free RPMI 1640中，细胞计数，调整细胞浓度

为5×105/ml，备用。

二．样品的准备：

1） 将纯化的IL-8用PBS分别稀释为1000ng/ml,100ng/ml,10ng/ml,1ng/ml,0.1ng/ml。同

时用稀释IL-8的PBS作阴性对照。（样品加入小室前最好放入室温平衡或37oC培养箱中预温，以免加样时出气泡）。

三．准备底层小室，加样：

1） 将趋化小室底层板放水平台上，NP标记位于右下方。 2） 将稀释好后预温的样品加入孔中，使液面微微隆起，每孔27μl（，国产板每孔25μl），

每个样品3个复孔。为防止样品过度蒸发，整个加样过程应不超过5分钟。

3） 将适当孔径的滤膜取出，在滤膜的一角剪去1mm的小角，缺角对着NP标记，分别

用镊子夹住滤膜两端，水平下降，中间部位最先接触小室液面，将膜平放在加完样的底层板上。

4） 铺上硅胶垫，装上上层板，硅胶垫的缺角及上层板的NP标记位于右下方。装上螺

丝，拧紧装置。

四．加入细胞：

1） 将已稀释好的细胞悬液加入上层小孔中，每孔50μl，加样时微量加样器Tip贴着

小孔壁，Tip末端恰好位于滤膜稍上方垂直快速加样，避免孔底滞留气泡，（注意这一步加样过程中一定不要有气泡形成）。 2） 检查上层液体中是否有气泡，一个比较简便的方法是观察小孔凸的反射光，如果小

孔上方有一个异常大的凸液面，通常表明有滞留气泡。解决的办法是用Tip将孔中的液体吸干净，重新加样。

五．孵育：

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将趋化小室放入37C 5%CO2孵箱中，孵育30分钟。

，

六．取出滤膜，清洗，染色：

1） 取出滤膜，拧下螺帽，将整个小室倒置，托着上层板的四角，将小室慢慢地水平放

在纸巾上，卸下下层板。

2） 清洗，迁移细胞现位于滤膜朝上的一面，此面称为细胞面，另一面为非细胞面，用

镊子夹起滤膜的一角，然后用大塑料夹夹住滤膜这一端距边缘1mm的宽度，拎起滤膜，迅速用塑料夹夹住滤膜另一端。在盛有PBS缓冲液的平皿中沾湿非细胞面，注意细胞面不要接触到PBS。

3） 在细胞刮上刮去非细胞面上的细胞，靠近大夹子处的滤膜先接触细胞刮，在与细胞

刮成30度角方向轻轻上拉，该过程重复两次。

4） 固定，小心将滤膜浸入甲醇中，室温3分钟，将滤膜取出，用塑料夹夹住，自然干

燥。 5） 染色，将固定后的滤膜在Gimsa染色液中染色30分钟，自来水冲洗，置于玻片上，

显微镜下观察。 6） 计数，在高倍镜下，每孔随机选取5个视野，累积细胞数，算出三个复孔的平均值。

作为该稀释度的迁移细胞数。

IL-8组趋化的细胞数与缓冲液对照组中趋化细胞数的比值即为趋化指数，趋化指数大于2有意义。

七．技术要点：

1）分离纯化嗜中性粒细胞时，要仔细认真，保证细胞活力。

2） 每次做实验均要设阴性对照，用真核细胞转染上清做趋化实验时，要设空载体转染

上清做阴性对照。

3） 向趋化小室下孔中加样品时，上样量要适中，使之能够形成稍微隆起的液面，既能

防止气泡形成，又可以防止样品发生交叉污染。 4） 每个样品要做三个复孔。

5） 放膜时，要对准位置，否则，过多调整位置时易发生样品间的交叉污染。 6） 洗膜时，注意不要把细胞面与非细胞面弄反。

7） 不同趋化因子的趋化谱不同，用不同细胞做趋化反应时，应选用不同孔径的滤膜、

不同的细胞浓度和不同的趋化时间。 8） 做实验前要把小室处理干净。

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