2010药典第3增补本

一部修订附录 Ⅸ T 甲醇量检查法

Ⅸ U 二氧化硫残留量测定法 Ⅸ Q 农药残留量测定法

XVIII J-中药材DNA条形码分子鉴定法指导原则-新增

二部修订附录

附录I A 片剂（增订口崩片） 附录Ⅱ 药用辅料 附录Ⅵ G 黏度测定法 附录Ⅸ B 澄清度检查法

附录Ⅹ A 崩解时限检查法（增订口崩片检查法） 附录Ⅹ K 锥入度测定法

附录ⅩⅨ F 药品杂质分析指导原则

二部新增附录

附录ⅩⅨ R 药用辅料性能指标研究指导原则

附录ⅩⅧ J 中药材DNA条形码分子鉴定法指导原则1

本法用于中药材(包括药材及部分药材饮片)及基原物种的鉴定。

DNA条形码分子鉴定法是利用基因组中一段公认的、相对较短的DNA序列来进行物种鉴定的一种分子生物学技术，是传统形态鉴别方法的有效补充。由于不同物种的DNA序列是由腺嘌呤(A)、鸟嘌呤(G)、胞嘧啶(C)、胸腺嘧啶(T)四种碱基以不同顺序排列组成，因此对一定长度的DNA序列进行分析即能够区分不同物种。

中药材DNA条形码分子鉴定是以核糖体DNA第二内部转录间隔区(ITS2)1为主体条形

注

码序列鉴定中药材的方法体系，其中植物类中药材选用ITS2为主体序列，以叶绿体psbA-trnH

注2

为辅助序列，动物类中药材采用细胞色素c氧化酶亚基I(COI)3为主体序列，ITS2为辅助序

注

列。

一、仪器的一般要求

所用仪器有电子天平、离心机、聚合酶链式反应(Polymerase Chain Reaction，PCR)仪、电泳仪和测序仪。

DNA序列测定用测序仪，是一台具有自动灌胶、自动进样、自动数据收集分析等全自动电脑控制的测定DNA片段中碱基顺序或大小，以及定量用精密仪器。测序方法主要采用双脱氧链终止法，又称Sanger法，传统Sanger法采用同位素标记，目前常用的自动测序仪是基于毛细管电泳和荧光标记技术的DNA测序仪，从而大大提高了DNA测序的速度和准确性。4种双脱氧核苷酸(ddNTP)的碱基分别用不同的荧光进行标记，在通过毛细管时，不同长度的DNA片段上的4种荧光基团被激光激发，发出不同颜色的荧光，被电荷藕合元件图像传感器(charge-coupled device，CCD)检测系统识别，并直接翻译成DNA序列，获得供试品的峰图文件和序列文件。

测序仪的配置包括毛细管电泳仪、计算机、液晶显示器及数据采集和分析软件。仪器主要具有进样、电泳、检测、清洗四大功能，其中进样部分的主要作用是放置待检测的样品；起电泳功能的主要部件是毛细管和泵，在60℃条件下电泳，区分不同长度的DNA片段；检测部件主要是激光电源、激光管、光电转换装置；清洗部分主要作用是对毛细管进样口的清洗，保证自动灌胶、上样、电泳过程中无交叉污染。

二、 测定步骤

1

新增指导原则。若正文品种采用该法，则按方法予以收载。

本法主要包括供试品处理、DNA提取、DNA条形码序列PCR扩增、电泳检测和序列测定、序列拼接及结果判定，主要步骤如下。

1. 供试品处理

按药材和饮片取样法(《中华人民共和国药典》附录IIA)取样，除另有规定外，药材和饮片使用75%乙醇擦洗表面后晾干，称取10-100 mg备用。具体见各药材项下。

2. DNA提取

DNA的提取包括使用研钵或研磨仪破碎细胞，释放DNA，用试剂盒法进行DNA的分离和纯化等步骤，目前常用试剂盒包括植物基因组DNA提取试剂盒和动物组织/细胞基因组DNA提取试剂盒，实验选用的试剂盒须能够提取到满足后续实验要求的模板DNA。

由于植物类中药材种类繁多，可根据所鉴定的中药材的具体情况对提取方法加以改进。例如：植物细胞内含有大量多糖、多酚等次生代谢产物，这些物质在提取DNA的过程中与DNA共沉淀，形成粘稠的胶状物，难以溶解或氧化产生褐变，严重影响DNA提取的产量与质量，以及后续的PCR扩增实验。但如在提取DNA过程中加入抗氧化剂β-巯基乙醇，则可抑制氧化反应，避免其褐化。再如：PVP(聚乙烯吡咯烷酮)是酚的络合物，能与多酚形成一种不溶的络合物质，有效去除多酚，减少DNA提取过程中酚的污染；同时它也能和多糖结合，有效去除多糖。因此若将PVP和β-巯基乙醇配合使用，能够有效地防止DNA提取过程中多酚及多糖的污染。此外，乙二胺四乙酸(EDTA)能螯合Mg2+或Mn2+，从而抑制DNA酶(DNase)活性，防止DNA被其降解；在天然状态下，DNA与蛋白质以DNA蛋白质复合物(DNP)的形式存在，十六烷基三甲基溴化铵(CTAB)是一种阳离子去污剂，可溶解细胞膜，并与DNA形成复合物，使细胞中的DNP释放出来，该复合物在高盐溶液(>0.7mol/L NaCl)中能充分溶解，存在于液相中，通过有机溶剂抽提，去除蛋白质、多糖、酚类等杂质后加入乙醇沉淀即可使DNA分离出来。三羟甲基氨基甲烷(Tris-HCl)(pH8.0)溶液可提供一个缓冲环境，防止DNA被降解。

根、根茎、茎木类、皮类 通常根和根茎组织中多酚、多糖含量高，在研磨时多酚极易氧化成醌类，使DNA带有一定颜色，在纯化过程中很难去除，影响后续的PCR反应，所以在提取根及根茎类药材DNA时一定要注意多糖、多酚的去除。提取此类药材DNA时水浴时间一般为90分钟，对于质地坚硬的根、根茎类和茎木类药材，可以延长水浴时间并降低水浴温度，如56℃水浴8-12小时，使得DNA充分释放到缓冲溶液中。此外，根茎类药材由于富含纤维和淀粉等贮藏物质，需加大样品量才能提取到足量DNA，可用大体积离心管(5 mL或15 mL)抽提。皮类中药材组织中富含薄壁组织和纤维等，加液氮不易研磨成细粉，需适当增

加样品量，同时应增加β-巯基乙醇和PVP的使用量。

叶、花、全草类 该类药材采用试剂盒法一般都能成功提取其DNA，对于保存时间较久的叶、花、全草类药材可适当增加水浴时间，同时适当降低水浴温度，如56℃水浴过夜等。

果实、种子类 果实及种子类中药材中多富含油脂，研磨时易被氧化，且易粘着在研钵壁上，损失较大，提取时需增加样品量。另外，对研磨后的材料可用丙酮浸提，去除脂溶性酚类化合物。

动物药材 肌肉类动物药材如海龙、蛇类、蛤蚧等，需使用75%乙醇擦拭表面消除外源性污染，待乙醇挥发后进行充分磨碎。含有脂类较多的动物内脏器官如蛤蟆油，首先用不含蛋白酶K和十二烷基硫酸钠(SDS)的缓冲液浸泡药材，SDS是一种阴离子表面活性剂，在55～65℃条件下能裂解细胞，释放出核酸；然后在试剂盒消化缓冲液中增加SDS含量，有利于脱去脂类。角甲类药材如龟甲、鳖甲和鹿茸等，由于DNA含量较低，样品量要适当增大，也可用大体积离心管抽提。壳类药材如石决明、瓦楞子、蛤壳等，由于存在共生或寄生生物，提取前需进行去除。

3. PCR扩增

植物类中药材及其基原物种扩增ITS2或psbA-trnH序列，动物类中药材及其基原物种扩增COI序列，通用引物及扩增条件如下，特殊规定见各药材项下。

ITS2序列扩增正向引物ITS2F：5′-ATGCGATACTTGGTGTGAAT-3′；反向引物ITS3R：5′-GACGCTTCTCCAGACTACAAT-3′。psbA-trnH序列扩增正向引物psbAF：5′-GTTATGCATGAACGTAATGCTC-3′

；

反

向

引

物

trnHR

：

5′-CGCGCATGGTGGATTCACAATCC-3′。COI序列扩增正向引物HCO2198：5′-TAAACTTCAGGGTGACCAAAAAATCA-3′5′-GGTCAACAAATCATAAAGATATTGG-3′。

PCR反应体系以25 μL为参照，包括：1×PCR缓冲液(不含MgCl2)，2.0 mmol/L MgCl2，0.2 mmol/L dNTPs，0.1 μmol/L引物对，模板DNA，1.0 U Taq DNA聚合酶，加灭菌双蒸水至25 μL。设置未加模板DNA的PCR反应为阴性对照。

ITS2序列扩增程序：94℃ 5分钟；94℃ 30秒，56℃ 30秒，72℃ 45秒，35-40个循环；72℃ 10分钟。psbA-trnH序列扩增程序：94℃ 5分钟；94℃ 1分钟，55℃ 1分钟，72℃ 1.5分钟，30个循环；72℃ 7分钟。COI序列扩增程序：94℃ 1分钟；94℃ 1分钟，45℃ 1.5分钟，72℃ 1.5分钟，5个循环；94℃ 1分钟，50℃ 1.5分钟，72℃ 1分钟，35个循环；72℃ 5分钟。

；

反

向

引

物

LCO1490

：

4. PCR产物检测

采取琼脂糖凝胶电泳方法检测PCR产物。电泳后，PCR产物应在相应的DNA条形码序列长度位置(具体见各药材项下)出现一条目的条带，阴性对照应无条带。

5. 测序

使用DNA测序仪对目的条带进行双向测序，PCR扩增引物作为测序引物，测序原理同Sanger测序法。有目的条带的样品在测序仪上进行双向测序。

6. 中药材DNA条形码序列获得 （1）序列拼接

对双向测序峰图应用有序列拼接功能的专业软件进行序列拼接，去除引物区。 （2）序列质量与方向

为确保DNA条形码序列的可靠性，需去除测序结果两端信号弱或重叠峰区域，序列方向应与PCR扩增正向引物方向一致，获得相应的DNA序列。

7. 结果判定

将获得的序列在中药材DNA条形码鉴定系统(http://www.tcmbarcode.cn)中应用BLAST

4

注

(Basic Local Alignment Search Tool)方法进行结果判定。具体流程为登录中药材DNA条形码

鉴定数据库系统网站，在主页点击“物种鉴定”。根据需鉴定物种的种类，选择对应的鉴定数据库，如点击植物类药材鉴定(ITS/ITS2)。将需要鉴定的物种序列复制后粘贴到“植物类药材鉴定(ITS/ITS2)”的序列输入栏，点击“提交”按钮，进行BLAST鉴定。BLAST比对结果中，在“序列比对信息”栏查看相关比对信息，在“物种鉴定结果”栏显示查询序列与数据库中目标序列的序列相似性5及目标序列对应的基原物种。如果植物类药材ITS/ITS2序列

注

比对后最接近的物种为真菌，则需采用psbA-trnH序列重复上述方法流程。

二. 中药材DNA条形码数据库构建原则

建立中药材DNA条形码数据库时，应在药材原产地及主产地采集供试品，采用经典分类方法确定其基原，采集样本尽可能覆盖其分布区，每个物种采集来自不同产地样本20份以上。根据具体药材测定ITS2、psbA-trnH或COI等DNA条形码序列，分析确定该药材DNA条形码序列种内变异大小。对实验获得或国际基因数据库(GenBank)中的中药材DNA条形码序列必须经过核准后方可录入中药材DNA条形码数据库，同时需定期对数据库进行更新。

三. 方法学验证 1. 影响因素考察

考察DNA条形码分子鉴定法的影响因素，包括DNA提取(样品量、水浴温度和水浴时间)、

PCR条件(变性时间、退火温度与时间及延伸时间)和产物纯化(考察不同纯化试剂盒)，保证实验方法的准确性。

2. 精密度考察 （1）重复性

至少用3批供试品，每批3次或同批供试品进行6次测定试验后对结果进行评价。实验结果判定应基本一致。 （2）中间精密度

考察实验室内部条件改变(如不同人员、不同仪器、不同工作日和实验时间)对测定结果的影响，至少应对同实验室不同操作人员的结果进行考察。 （3）重现性

实验结果在3家以上实验室能够重现，同一样品在不同实验室获得DNA条形码序列应相同。

3. 方法适用性考察

采用DNA条形码分子鉴定法对20批次以上药材或基原物种进行测定，积累数据，确定种内序列变异大小，保证该测定方法的适用性。

4. 基原物种对比验证

以分类学家确认的基原物种叶片为对象，采用该方法获得DNA条形码数据，与相应药材产生的DNA条形码数据进行对比，避免内生真菌等污染，保证结果准确性。

四. 注意事项

1. 实验场所应具备分子生物学实验室的基本条件。

2. 本法暂不适用于混合物与炮制品的鉴定及硫磺熏蒸等造成不适用的情况。 3. 为防止外源真菌污染，实验前须将实验用具进行高压灭菌，并用75%乙醇擦洗药材表面。有些药材本身含有内生真菌，如果内生真菌存在于药材的外围组织，则选用内部组织进行实验。如果真菌遍布整个药材，植物类药材需选用psbA-trnH条形码(真菌内不含有该基因片段)，不能选用ITS2序列。为进一步确保实验结果不被真菌污染，实验者可在GenBank数据库应用BLAST方法对所获ITS2序列进行检验，以确保序列鉴定准确。

4. 本法用于鉴定药材的基原物种，不能确定药用部位。 5. 必要时结合其他鉴别方法综合判断。

6. 种内阈值的确定。同一物种的不同样品间存在一定的变异范围，即种内变异阈值。不同物种，不同条形码序列均会影响种内变异范围。各基原物种的种内变异范围(种内遗传

距离阈值)应在药材品种项下具体明确。 附注：

1. ITS2：ITS(internal transcribed spacer of nuclear ribosomal DNA)为内部转录间隔区，是核糖体RNA(rRNA)基因非转录区的一部分。ITS位于18S rRNA基因和28S rRNA基因之间,中部被5.8S rRNA基因一分为二，即ITS1(the first internal transcribed spacer)区和ITS2(the second internal transcribed spacer)区。5.8S、18S和28S进化速率较慢，常用于探讨科级和科级以上等级的系统发育问题。而间隔区ITS(包括ITS1和ITS2)进化速率较快，一般用于研究属间、种间甚至居群间等较低分类等级的系统关系。

2. psbA-trnH：psbA-trnH基因间区是位于叶绿体基因psbA基因和trnH基因之间的一段非编码区，该间区进化速率较快，常用于植物属间、种间的系统发育研究。

3. COI：COI为线粒体基因组的蛋白质编码基因，全称为细胞色素c氧化酶亚基I (cytochrome c oxidase subunit I)，由于该基因进化速率较快，常用于分析亲缘关系密切的种、亚种及地理种群之间的系统关系。

4. BLAST：Basic Local Alignment Search Tool，即基于局部序列比对，并对数据库进行快速搜索的工具，其特点是仅搜索序列之间高度相似区域，精确且快速，是目前应用最广泛的序列相似性搜索工具之一。

5. 序列相似性：指序列比对过程中查询序列和目标序列之间相同或相似核苷酸或氨基酸残基占全部比对核苷酸或氨基酸残基的百分比。

一部：修订

附录Ⅵ E 甲醇量检查法

本法系用气相色谱法（附录Ⅵ E）测定酒剂或酊剂中甲醇的含量。除另有规定外，按下列方法测定。

第一法（毛细管柱法）

色谱条件与系统适用性试验 采用（6%）氰丙基苯基-（94%）二甲基聚硅氧烷为固定液的毛细管柱（选择大口径、厚液膜色谱柱，建议规格为30m×0.53mm×3.00μm）；起始温度为40℃，维持2分钟，以每分钟3℃的速率升温至65℃，再以每分钟25℃的速率升温至200℃，维持10分钟；进样口温度200℃；检测器（FID）温度220℃；分流进样，分流比为1:1；顶空进样平衡温度为85℃，平衡时间为20分钟。理论板数按甲醇峰计算应不低于10000，甲醇峰与其他色谱峰的分离度应大于1.5。

测定法 取供试液作为供试品溶液。精密量取甲醇1ml，置100ml量瓶中，加水稀释至刻度，摇匀，精密量取5ml，置100ml量瓶中，加水稀释至刻度，摇匀，作为对照品溶液。分别精密量取对照品溶液与供试品溶液各3ml，置10ml顶空进样瓶中，密封，顶空进样。按外标法以峰面积计算，即得。

第二法（填充柱法）

色谱条件与系统适用性试验 用直径为0.18～0.25mm的二乙烯苯-乙基乙烯苯型高分子多孔小球作为载体；柱温125℃。理论板数按甲醇峰计算应不低于1500；甲醇峰、乙醇峰与内标物质各相邻色谱峰之间的分离度应符合规定。

校正因子测定 精密量取正丙醇1ml，置100ml量瓶中，用水溶解并稀释至刻度，摇匀，作为内标溶液。另精密量取甲醇1ml，置100ml量瓶中，用水稀释至刻度，摇匀，精密量取10ml，置100ml量瓶中，精密加入内标溶液10ml，用水稀释至刻度，摇匀，取1μl注入气相色谱仪，连续进样3～5次，测定峰面积，计算校正因子。

测定法 精密量取内标溶液1ml，置10ml量瓶中，加供试液至刻度，摇匀，作为供试品溶液，取1μl注入气相色谱仪，测定，即得。

除另有规定外，供试液含甲醇量不得过0.05％（ml/ml）。

【附注】 如采用填充柱法时，内标物质峰相应的位置出现杂质峰，可改用外标法测定。

附录IX Ｕ 二氧化硫残留量测定法2

■

本法系用酸碱滴定法、离子色谱法、气相色谱法分别作为第一法、第二法、第三法测

定经硫磺熏蒸处理过的药材或饮片中二氧化硫的残留量。对于具体品种，可根据情况选择适宜方法进行二氧化硫残留量测定。

离子色谱法作为复试方法；检测结果为限度150 ppm（μg/g）±30%（即105~195 ppm）和限度400 ppm（μg/g）±20%（即320~480 ppm）时，应采用离子色谱法复试作为最终测定结果。

鉴于二氧化硫在样品中的不均匀性和随时间挥发的特点，二氧化硫残留量的检测结果不予复验。■[增订]

■

第一法（酸碱滴定法）

3

本方法系将中药材以水蒸汽蒸馏法进行处理，样品中的亚硫酸盐系列物质加酸处理后转化为二氧化硫，随水蒸气蒸馏，并被双氧水吸收、将其氧化为硫酸根离子，采用酸碱滴定法测定，最后折算二氧化硫计算结果。

仪器装置 如图1。A为1000ml两颈圆底烧瓶；B为竖式回流冷凝管；C为(带刻度)分液漏斗；D为连接氮气流入口；E为二氧化硫气体导出口。另配磁力搅拌器、电热套、氮气源及气体流量计。

图1 酸碱滴定法仪器装置

23

修订原蒸馏滴定法为酸碱滴定法，增订离子色谱法和气相色谱法。

原为蒸馏滴定法，见2010年版药典第一增补本修订稿，拟取消，由酸碱滴定法代替。

测定法 取药材或饮片细粉约10g（如二氧化硫残留量较高，超过1000 mg/kg，可适当减少取样量，但应不少于5g），精密称定，置两颈圆底烧瓶中，加水300～400ml。打开与自来水连接的回流冷凝管开关给水，将冷凝管的上端E口处连接一橡胶导气管置于250 ml锥形瓶底部。锥形瓶内加入20 ml的 3%过氧化氢溶液作为吸收液（橡胶导气管的末端应在吸收液液面以下），并置于磁力搅拌器上不断搅拌。开通氮气，使用流量计调节气体流量至约0.2 L/min。打开分液漏斗C的活塞，使盐酸溶液（6 mol/L）10 ml流入蒸馏瓶，立即加热两颈烧瓶内的溶液至沸，并保持微沸。烧瓶内的水沸腾1.5h后，停止加热，放冷，转移至100 ml容量瓶中，定容，摇匀，放置1小时后，亚硫酸盐生成的硫酸用标准氢氧化钠溶液（0.01 mol/L）滴定。在吸收液中加入甲基红指示剂（2.5 mg/ml）3滴，用0.01 mol/L NaOH滴定，至黄色持续时间20秒不褪，并将滴定的结果用空白实验校正。 照下式计算：

（32.03?VB?M?1000供试品中二氧化硫残留量（?g/g）?

m式中，32.03为二氧化硫的毫克当量重量；

VB 为摩尔浓度中达到终点所需氢氧化钠的体积，ml； M为氢氧化钠溶液摩尔浓度，mol/L； 1000为单位转化，毫克当量转为微克当量； m为药材称样量，g。■[修订]

■

第二法（离子色谱法）

4

本方法将中药材以水蒸汽蒸馏法进行处理，样品中的亚硫酸盐系列物质加酸处理后转化为二氧化硫，随水蒸气蒸馏，并被双氧水吸收、氧化为硫酸根离子，采用离子色谱仪检测，最后折算二氧化硫计算结果。

仪器装置 水蒸气蒸馏装置如图2。蒸馏部分装置需订做，另配磁力搅拌器及电热套。

4

增订离子色谱法作为第二法。

本文来源：https://www.bwwdw.com/article/gxtt.html