细胞培养(hela, 293,239T等细胞的培养)

更新时间:2024-01-29 18:26:01 阅读量: 教育文库 文档下载

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Hela细胞传代培养操作步骤

1.观察培养基是否正常,细胞状态如何,细胞密度如何,决定是否传代。观察时拧紧盖子。 2.加热PBS、versene、培养基,(提前做好) 瓶子不要倒着放,不要让液体接触到瓶塞。

3.打开超净台(先开风机,后开照明),用75%乙醇清洁台面,点燃酒精灯。不要把废液缸拿出去倒,如果废液太多,可以用其他容器先装废液。取小离心管一个,置于架子上。

4.取尖吸管、吸量管各一支,放置在专用的架上。放置的方式,注意吸管、吸量管前端都不要与架子接触。 5.取待传代的细胞。打开versene,用酒精灯外焰烧。烧吸管时距离酒精灯心远些,不要把渣滓带进去。把试剂拿入台子的时候,尽量平稳,不要让试剂碰到瓶口。

6.用吸量管吸取旧的培养基,置离心管中,吸量管加入versene,然后将versene瓶收起来。(加versene主要是为了将旧培养基洗去)。在离心管中间部分将液体加入。吸液体和加液体时都不要对着细胞。 7.打开胰酶,然后将versene弃掉。换新管,用尖吸管吸取适量胰酶加入。加胰酶后,尽快放平,使细胞消化时间一致。

8.将细胞放入37度孵箱。放孵箱2min, 收胰酶,打开PBS. 之后拿出来镜下随时观察。使用二次消化法,去除容器中残余的细胞。别忘了用旧培养基中和。

9.取细胞,镜下观察消化情况。消化程度合适之后(细胞变圆,但不漂起),用尖吸管弃去胰酶,取离心管中的培养基加入细胞,吹打,至所有细胞从培养皿底部脱落下来。用PBS洗细胞,versene对细胞有毒性,且不能被血清中和。然后吸取至离心管中,800 rpm离心5分钟。 10.吸量管吸取适量培养基加入新的培养皿中。

11.细胞离心毕,用吸新培养基的管弃去上清,先把泡沫吸走。换吸量管吸取培养皿中培养基适量,加入离心管,小体积混匀,将细胞重悬,尖吸管吹匀。

12.擦计数板,用枪吸10ul的液体,计数。不要把枪伸到离心管内。

13.吸量管吸取细胞悬液,加入新的培养皿中。镜下观察,摇匀,放入37度孵育。收超净台。

293T细胞

培养条件:

37℃,5% CO2,PH值7.2~7.4,无菌恒温培养。 细胞相关操作: 细胞复苏

1. 37°C水浴预热培养基(DMEM+10% FBS);

2. 从液氮中取出细胞迅速放入37°C水浴快速解冻(解冻后不要继续暖细胞); 3. 在超净台中加入5ml培养基重悬细胞,1000rpm离心5min; 4. 弃上清,加入5ml培养基重悬细胞后转入T25培养瓶中,轻轻晃匀;

5. 置于37°C,5% CO2培养箱中培养(培养瓶盖没有透气孔的话,瓶盖不要拧太紧); 6.第二天,用新鲜的培养基给细胞换液后继续培养。

细胞传代

1. 当细胞融合度达到90%以上时,给细胞传代; 2. 37°C水浴预热培养基(DMEM+10% FBS);

3. 在超净台中,弃培养基,加入2-5mlPBS清洗细胞后,再加入1ml胰酶消化细胞;

4. 显微镜下观察到细胞变圆,有细胞开始脱离瓶壁时,加入5ml培养基(DMEM+10% FBS)终止消化; 5.用移液器轻轻吹下瓶壁上剩余的细胞,并轻轻吹打将细胞吹散; 6.将细胞移入离心管中,1000rpm离心5min;

7.弃上清,加入15-20ml的培养基(含血清)重悬细胞后转入T75培养瓶中或按适当比例传到T25瓶中(确保细胞贴壁后融合度在25-50%之间),细胞密度在1×104 cells/cm2 (2.5×105 cells/T-25瓶),混匀细胞悬液,确保细胞均匀分布;

8.将培养瓶置于37°C,5% CO2的无菌培养箱中培养。 细胞冻存

1.37°C水浴预热培养基(DMEM+10% FBS); 2.消化细胞后给细胞计数:

1)洗净晾干血小板计数板和盖玻片,将盖玻片完全覆盖计数区;

2)充分混匀细胞,取少量(0.1-0.5ml)细胞悬液与等体积的染色液台盼蓝混合,移液器吹吸混合均匀,用移液器取20ul混合液从盖玻片两端(与中间凹槽平行的两端)分别打入细胞,以细胞悬液刚好浸湿盖玻片为佳; 3)显微镜下,数四个计数区的总细胞数,无活性细胞染成蓝色,活细胞不被染色; 4)细胞密度=细胞总数/4×10000×2;

这里10000是不变的,因为计数的细胞是在体积为1mm×1mm×0.1mm即10-4cm3计数池内,1cm3=1ml,将四个计数区的细胞数除以4取平均数,乘2是补偿加等体积台盼蓝形成的稀释。 5)细胞活性=活细胞数/细胞总数×100%。

注:细胞密度高时,可调整细胞悬液和台盼蓝的比例,计数时乘以相应的稀释倍数即可。 3.当细胞密度达到传代密度且细胞活性在90%以上时,可以冻存细胞。 4.在超净台中将要冻存的细胞移入离心管,1000rpm离心5min。

5.弃上清,用90%培养液+10%DMSO的混合液重悬细胞,并调整细胞密度为1-3×106/ml。 6.将细胞悬液分装到冻存管中(1-1.5ml/管)。

7.将装有细胞的冻存管放入程序降温冻存盒,-20°C放1-2h后,-80°C过夜,然后快速转移到液氮中。

293细胞培养

293细胞培养特性:

1、293细胞明显适应酸性环境,pH值在6.9~7.1时,可顺利贴壁生长, 换液时动作要轻。一般用高糖的DMEM培养基。

2、传代:倒去废液,PBS洗一次(轻),用0.02íTA与0.25%Trypsin消化,生长良好细胞,培养瓶中轻摇,使之流遍所有细胞表面,即将其吸除或弃去消化30s,然后吸去,再让剩下的EDTA/Trypsin作用30s,镜下观察细胞变圆,就可加DMEM终止消化,反复吹打至细胞全成单个悬浮细胞即可。12小时-24小时90%以上细胞贴壁。293细胞传代时机为达80-90%汇合,传代比例为1:3。

3、293细胞在低代时容易贴壁,生长良好,在传到几十代以后,易聚集成团,且贴壁不牢,用PBS冲洗时即可能脱落,即使消化后也不容易吹打成单细胞悬液,最好购入时先大量冻存。 4、复苏 293细胞的另一生长特性是贴壁所需时间长且贴壁不牢。细胞冷冻后复苏时,都有不同程度的肿胀,若以50ml培养瓶待细胞长满瓶底的70%~80%时消化冻存,复苏时将其全部接种至2

个50ml瓶中时较为合适。刚复苏的293贴壁很慢,复苏接种后24小时内,应尽量减少观察细胞次数或不作观察,以免因晃动而影响细胞贴壁。复苏后48小时左右观察贴壁情况并进行首次更换培养基比较合适,如果用一次性塑料培养瓶可增加细胞贴壁牢度。换液前宜将培养基预热。 5、转染:体外应用293细胞进行细胞转染时,如果是采用磷酸钙转染,一定要注意293细胞不要全部长满细胞培养盘,长满细胞时加入磷酸钙就会使293细胞大片的脱落,最好是当293生长到1/2或2/3时进行磷酸钙转染,可以避免细胞的大量脱落。

其它的经验:1、用大瓶培养较小瓶要好,可能是更有利于293均匀的分布,利于营养的摄取 2、培养液要新鲜,每次只配1000ml,分为2-4瓶,不用的培养液,冻存在-20度,

3、要及时传代,最好是细胞基本铺满培养瓶底部,但是细胞之间还没有完全贴紧,总是多少有空隙的时候最好。

4、如果细胞贴壁不好,可能是消化过久,或是培养瓶不够干净,当然要除外细胞污染。 5、如果使用用玻璃培养瓶或皿,可以采用高压灭菌的0.2%明胶溶液预处理培养瓶/培养皿,方法是将明胶加入培养皿,使之浸泡到底面的各个部分,然后吸出,置超净台内晾干即可使用。这样处理后细胞贴壁效果好且镜下细胞立体感强。如果是新的塑料培养瓶就不用处理。 培养基;GIBCO DMEM粉剂,加双抗,HEPES,NaHCO3 配置高糖的DMEM培养基1000ml,

1.一袋DMEM培养基(GIBCOBRL)用去离子水溶解 2.加入NaHCO3 2.0g

3.加入谷氨酰胺 0.146g(终浓度为5mM)

4.加入青霉素10万U(终浓度100u/ml),链霉素6.5万U(终浓度100u/ml) 5.定容900ml

6.过滤除菌、分装到两个消毒的500ml瓶子中 7.加入灭活小牛血清100ml。

Jurkat细胞(人外周血白血病T细胞),是一种悬浮细胞。我的经验如下:

1、培养液:RPMI1640,15%小牛血清,2%Na2CO3,1%HEPES,青霉素100IU/1ml,庆大霉素100IU/ml;

2、培养条件:5%CO2,37度,30%湿度;

3、细胞复苏:要快速将冻存管放入37度水中,不断轻轻摇晃,直到细胞完全溶解,加入10ml左右的培养液,800~1000rpm,10分钟离心,之后倒掉液体,加入新的培养基就可以进行培养了;

4、细胞培养:起初进行传代时由于细胞刚刚复苏,长得比较慢,所以可以3~4天传一代,传过两代后,一般2~3天传一代,每次传代后在倒置显微镜下观察细胞形态,在传过几代合适的时候可以进行实验。

5、细胞冻存:1000rpm离心后,弃去液体,加入含有15%DMSO的冻存液,按下列顺序降温:室温→4℃(20分钟〕→冰箱冷冻室(30分钟)→低温冰箱(-80℃1小时)→液氮。培养

经验

细胞培养箱在每使用1个月最好用酒精擦洗一次,这样可以减少污染;

(2)虽然说加样器放在紫外下照射会不准,但我们还是丢了一把1ml的加样器在超净台,没有

拿出来过,我想这样也许会减少污染;

(3)小牛血清我们用的是国产的,所以在一开始的时候加了15%的小牛血清,但细胞总是长不 好,后来摸索条件,把小牛血清的量调到了20%,细胞生长旺盛; (4)HEPES虽然贵点,但加上去后细胞会长的不错; (5)在超净台操作前要用0.1%的新洁尔灭或75%酒精擦手。

1.

AsPC-1(转移胰腺腺癌细胞)

【细胞复苏的方法】:

(l)从液氮中取出冷冻管,迅速投入37~42℃水浴中,晃动,使其尽快融化(1分钟左右)。 (2)用培养液稀释至原体积的10倍以上,直接培养。 (3)或低速离心,去上清,加新鲜培养液培养。

SK-OV-3 [SKOV-3]细胞,人卵巢癌细胞细胞(株)

KM12人结肠癌细胞

本文来源:https://www.bwwdw.com/article/gm4w.html

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