流式细胞仪上机培训手册簿

更新时间:2023-04-08 14:58:01 阅读量: 实用文档 文档下载

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流式细胞仪上机操作培训手册

一、样本处理

以PBMC表面抗原的流式检测步骤为例

1)取样。取新鲜提取或冻存后复苏的PBMC;

2)编号。根据实验设计,标记好流式管,如每份PBMC设两管:

a)1号管:相应同型对照;

b)2号管:CD3,CD4,CD8,CD56四标管;

3)加样。用移液器取100ul细胞/管(约1×106个细胞/管),分别加到已经标

记好的流式管底部;

4)洗涤。加入1ml PBS/管,涡旋1600rpm/min,离心6min;

5)染色。弃上清,加入100 μl PBS/管涡旋混匀细胞,并根据实验设计,向各

流式管中加入相应的荧光素标记抗体,混匀,室温避光孵育30min(操作尽量保持在避光条件下进行。)

6)洗涤。加入1ml PBS/管,涡旋1600rpm/min,离心6min;

7)重悬。弃上清,加入0.5ml PBS/管,混匀,上机检测(可选择BD FACSCanto

II或BD Accuri C6)。

(注:若不能及时上机,应加入4%多聚甲醛固定,并于4℃避光保存。)

8)试验结果分析。(注:实验过程中如果进行多色标记,需要调节荧光补偿)。参考值:

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二、上机检测

BD FACSCanto II简要操作流程启动流式细胞仪

1 打开流式细胞仪电源

2 启动计算机,打开软件登录

3 确保软件连接到流式细胞仪

必要时,点击Cytometer > connect

检查液体水平

1 启动流式细胞仪后,检查液体水平

低液面水平或者废液桶满都用红色指示。

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2 如果液流车未自动开启,选择Cytometer > Fluidics Startup 。

3 当液流启动完成后,点击OK 关闭对话框。

检查气泡

1 在检查完液体水平后,开启流动室门,检查流动室中是否有气泡。

2 如果没有看到气泡,进行第5步。如果看到气泡,点击

Cytometer > Cleaning Modes >

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De-gas Flow Cell.

3 当完成信息出现后,点击OK。

4 如果还可以看到气泡,重复上述操作。

注意:如果打开流动室细胞进口门时出现错误信息,通过关闭进口门,并等待30秒关闭该信息。

5 当您完成上述操作后,在往下进行之前请先检查激光预热是否已经完成。

创建实验

1 按照需要,在工作区工具栏中点击相应的按钮来显示浏览器、细胞仪、检测器、工作表、获取控制板和双指数编辑器窗口。

2 创建文件夹:

A 在浏览器中选择数据库图标,并点击浏览器工具栏上的New Folder。

B 对该文件夹命名。

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3 选择该文件夹,点击New Experriment来创建一个新实验。

4 对该实验进行重命名。

5 选择实验级别的细胞仪设置,然后点击Inspector(检测器)中的Parameters(参数)选项卡。

6 按照需要变更,添加或者删除参数。

运行样本并记录数据

1 将样品管安装到流式细胞仪中并点击Aquire Data(获取数据)。

A 把抽吸臂向左侧推。

B 把流式管放置到SIT上,确保试管竖直,并用力向上推试管直到试管完个停止并完个就位。

C 把抽吸臂放置到试管下的中心位置。抽吸臂上有3个传感器引脚。试管底部应定位在

这些引脚的中心位置内。

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2 调节FSC 和SSC 电压以正确显示细胞的散射光特征。

3 必要时,点击阈值图标并对FSC 阈值进行调节。

4 调节P1门仅围绕目的细胞群体。

5 调节好后,点击Record Data(记录数据)以记录数据。

6 获取停止,取出试管。

建立全局工作表

1 如果用户参数中启用了Default global worksheet(默认个局工作表)(默认选项),则全局工作表已经存在。展开全局工作表文件夹来定位和重命名工作表。(注:如果Default global worksheet 被禁用,则通过点击浏览器工具栏中的New Global Worksheet(新个局工作表)按钮创建个局工作表。)

2 使用设计对话框定义参数标记并指定各个试管要记录的细胞颗粒数。标记会出现在点图轴上和所有的统计结果图中。

A 选择Experiment(实验)>Experiment Layout(实验布局)。

B 在Labels(标签)选项卡中,为试管输入适当的标签。例如,在FIT

C 域中输入CD3。使用Tab 键移动到下一个域。

3 在该全局工作表中,创建用预览数据的点图。例如:创建PerCP-Cy5.5对SSC,FITC 对APC, FITC 对PE, FITC 对PE-Cy7和F ITC 对APC-Cy7点图。

设门

通过设门的方法可以定义细胞亚群的区域。如:PBMC 样本是混合细胞群,如果想单独分析淋巴球细胞,可根据FSC 或细胞大小,在 FSC ,SSC

的散点图中设门,其数据结果只反

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映淋巴细胞亚群的荧光特性。

关机

1选择Cytometer(细胞仪)>Fluidics Shutdown(液流关闭),并遵循所有的提示。

2关闭细胞仪电源。

3退出BD FACSDiva软件。

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C6简要操作流程

开机

1.打开电脑,上样处放置一管双蒸水

2.打开C6仪器,其自动执行“startup”,时间约5min,期间禁止开盖

3.当软件显示仪器状态为“Cytometer Connected and ready”并亮绿灯时,则可以上样

4. (推荐用质控微球上机,FL1-H和FL2-H直方图中必须有八个峰,FL3-H中必须有6-8个峰,即仪器分辨率CV值满足标准)

采集样品

1.样品震荡混匀后置于上样二档处

2.设置流速,采样数目或时间或体积

3.点击“Dot Plot”或“Histogram”或“Density Plot”,选择需要的图形

4.点击坐标轴参数,从下拉菜单中选择需要的参数(如:“FL1-A”“FSC-A”)

5.点击“Plot Spec”,选择“linear”或者“log”,设置坐标轴显示范围

6.右击坐标轴参数,选择“Rename Parameters”,进行坐标轴重命名

7.选择“Display”中的“Events Display Settings”,选择显示的细胞数

8.选择样品位置,点击“run”,进行采样

9.取下样品

10.取新的流式细胞管置于上样针处,点击“backflush”,清洗上样针

11.样品命名

12.点击“Zoom In”,放大指定区域,设置阈值。点击“Zoom Out”,返回放大

设门

1.在图像下方点击设门工具,圈定指定区域,设置为门

2.点击相应图像上方的“Gate”,选择该图像需要应用的门

设置补偿

若样本是双荧光或三荧光检测,则实际图像显示中会用到荧光补偿

1.点击“Set Color Compensation”

2.选择需要补偿的荧光参数,输入补偿值,点击“Save & Close”

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分析统计

点击“Statistic”

可选择预览选择的样品图形,所有的Plot列表。所有的Plots,Gates以及统计学的列表,从中选择需要显示的信息

关机清洗

1.放置一管去离子水,运行2min,清洗时<10 Events/sec 才算干净

2.放置一管0.5%-1%有效氯的清洗液,运行2min

3.放置一管去离子水,运行2min,运行结束后去离子水保留在上样处

4.退出软件,关闭电脑

5.关闭电源键(按住时间小于5秒钟),仪器自动Shutdown,时间约为13min,完成后仪

器电源键自动关闭

三、数据分析

略。

本文来源:https://www.bwwdw.com/article/g9ol.html

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