沙门氏菌的检测鉴定

沙门氏菌的检测及鉴定

杨淑霞

设备和材料 除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下： 2.1 冰箱：2 ℃~5 ℃。 2.2 恒温培养箱：36 ℃±1 ℃,42 ℃±1 ℃。 2.3 均质器。 2.4 振荡器。 2.5 电子天平：感量0.1 g。 2.6 无菌锥形瓶:容量500 mL,250 mL。 2.7 无菌吸管：1 mL(具0.01 mL刻度)、10 mL(具0.1 mL刻度)或 微量移液器及吸头。 2.8 无菌培养皿：直径90 mm。 2.9 无菌试管：3 mm×50 mm、10 mm×75 mm。 2.10 无菌毛细管。 2.11 pH计或pH比色管或精密pH试纸。 2.12 全自动微生物生化鉴定系统。

3 培养基和试剂 3.1 缓冲蛋白胨水(BPW)。 3.2 四硫磺酸钠煌绿(TTB)增菌液。 3.3 亚硒酸盐胱氨酸(SC)增菌液。 3.4 亚硫酸铋(BS)琼脂。 3.5 HE琼脂：见附录A中A.5。 3.6 木糖赖氨酸脱氧胆盐(XLD)琼脂。 3.7 沙门氏菌属显色培养基。 3.8 三糖铁(TSI)琼脂。 3.9 蛋白胨水、靛基质试剂。 3.10 尿素琼脂(pH 7.2)。 3.11 氰化钾 (KCN) 培养基。 3.12 赖氨酸脱羧酶试验培养基。 3.13 糖发酵管。 3.14 邻硝基酚β-D半乳糖苷(ONPG)培养基。 3.15 半固体琼脂。 3.16 丙二酸钠培养基。 3.17 沙门氏菌O和H诊断血清。 3.18 生化鉴定试剂盒。

A.1 缓冲蛋白胨水(BPW) A.1.1成分 蛋白胨10.0 g 氯化钠5.0 g 磷酸氢二钠(含12个结晶水)9.0 g 磷酸二氢钾1.5 g 蒸馏水1 000 mL pH 7.2±0.2 A.1.2 制法 将各成分加入蒸馏水中，搅混均匀，静置约10 min,煮沸溶解，调节pH,高 压灭菌121 ℃,15 min。

A.2 四硫磺酸钠煌绿(TTB)增菌液 A.2.1基础液 蛋白胨10.0 g、牛肉膏5.0 g、氯化钠3.0 g、碳酸钙45.0 g、蒸馏水1 000 mL、pH 7.0±0.2 除碳酸钙外，将各成分加入蒸馏水中，煮沸溶解，再加入碳酸钙，调节pH,高压灭 菌121 ℃,20 min。 A.2.2硫代硫酸钠溶液 硫代硫酸钠(含5个结晶水)50.0 g,馏水 加至100 mL,高压灭菌121 ℃,20 min。 A.2.3碘溶液 碘 片20.0 g、碘化钾25.0 g、蒸馏水 加至100 mL,将碘化钾充分溶解于少量的蒸 馏水中，再投入碘片，振摇玻瓶至碘片全部溶解为止，然后加蒸馏水至规定的总量， 贮存于棕色瓶内，塞紧瓶盖备用。 A.2.4 0.5%煌绿水溶液 煌绿0.5 g、蒸馏水100 mL 溶解后，存放暗处，不少于1d,使其自然灭菌。 A.2.5牛胆盐溶液 牛胆盐10.0 g,蒸馏水100 mL加热煮沸至完全溶解，高压灭菌121 ℃,20 min。 A.2.6 制法 基础液900 mL、硫代硫酸钠溶液100 mL、碘溶液20.0 mL、煌绿水溶液2.0 mL 牛胆盐溶液50.0 mL 临用前，按上列顺序，以无菌操作依次加入基础液中，每加入一种成分，均应摇匀 后再加入另一种成分。

A.3 亚硒酸盐胱氨酸(SC

)增菌液 A.3.1成分 蛋白胨5.0 g 乳糖4.0 g 磷酸氢二钠10.0 g 亚硒酸氢钠4.0 g L-胱氨酸0.01 g 蒸馏水1 000 mL pH 7.0±0.2 A.3.2 制法 除亚硒酸氢钠和L-胱氨酸外，将各成分加入蒸馏水中，煮沸溶解，冷至55 ℃以下， 以无菌操作加入亚硒酸氢钠和1 g/L L-胱氨酸溶液10 mL(称取0.1 g L-胱氨酸，加 1 mol/L氢氧化钠溶液15 mL,使溶解，再加无菌蒸馏水至100 mL即成，如为DL胱氨酸，用量应加倍)。摇匀，调节pH。

A.4 亚硫酸铋(BS)琼脂 A.4.1成分 蛋白胨10.0 g 牛肉膏5.0 g 葡萄糖5.0 g 硫酸亚铁0.3 g 磷酸氢二钠4.0 g 煌 绿0.025 g或5.0g/L水溶液5.0mL 柠檬酸铋铵2.0 g 亚硫酸钠6.0 g 琼 脂18.0 g~20 g 蒸馏水1 000 mL pH 7.5±0.2注：本培养基不需要高压灭菌， 在制备过程中不宜过分加热， 避免降低其选择性，贮于室温 暗处，超过48 h会降低其选择 性，本培养基宜于当天制备， 第二天使用。

A.4.2 制法 将前三种成分加入300 mL蒸馏水(制作基础液),硫酸亚铁和磷酸氢二钠分别 加入20 mL和30 mL蒸馏水中，柠檬酸铋铵和亚硫酸钠分别加入另一20 mL和30 mL蒸馏水中，琼脂加入600 mL蒸馏水中。然后分别搅拌均匀，煮沸溶解。冷至 80 ℃左右时，先将硫酸亚铁和磷酸氢二钠混匀，倒入基础液中，混匀。将柠檬 酸铋铵和亚硫酸钠混匀，倒入基础液中，再混匀。调节pH,随即倾入琼脂液中， 混合均匀，冷至50 ℃~55 ℃。加入煌绿溶液，充分混匀后立即倾注平皿。

注：本培养基不需要高压灭菌，在制备过程中不宜过分加热，避免 降低其选择性，贮于室温暗处，超过48 h会降低其选择性，本培养基 宜于当天制备，第二天使用。

A.5 HE 琼脂(Hektoen Enteric Agar) A.5.1成分 蛋白胨 12.0 g 牛肉膏3.0 g 乳糖12.0 g 蔗糖12.0 g 水杨素 2 .0 g 胆盐20.0 g 氯化钠5.0 g 琼脂18.0 g~20.0 g 蒸馏水1 000 mL 0.4%溴麝香草酚蓝溶液16.0 mL Andrade指示剂20.0 mL 甲液20.0 mL 乙液20.0 mL pH 7.5±0.2

A.5.2 制法 将前面七种成分溶解于400 mL蒸馏水内作为基础液;将琼脂加入于600 mL蒸馏 水内。然后分别搅拌均匀，煮沸溶解。加入甲液和乙液于基础液内,调节pH。再 加入指示剂,并与琼脂液合并,待冷至50 ℃~55 ℃倾注平皿。 注:①本培养基不需要高压灭菌，在制备过程中不宜过分加热，避免降低其选择 性。 ②甲液的配制 硫代硫酸钠34.0 g 柠檬酸铁铵4.0 g 蒸馏水100 mL ③乙液的配制 去氧胆酸钠 10.0 g 蒸馏水 100 mL ④Andrade 指示剂酸性复红 0.5 g 1mol/L氢 氧化钠溶液 16.0 mL 蒸馏水 100 mL 将复红溶解于蒸馏水中,加入氢氧化钠溶液。 数小时后如复红褪色不全,再加氢氧化钠溶液1 mL~2 mL。

6、木糖赖氨酸脱氧胆盐(XLD)琼脂 A.6.1成分 酵母膏3.0 g L-赖氨酸5.0 g 木糖3.75 g 乳糖7.5 g 蔗

糖7.5 g 去氧胆酸钠2.5 g 柠檬酸铁铵0.8 g 硫代硫酸钠6.8 g 氯化钠5.0 g 琼脂15.0 g 酚红0.08 g 蒸馏水1 000 mL pH 7.4±0.2 A.6.2制法 除酚红和琼脂外，将其他成分加入400 mL蒸馏水中，煮沸溶解，调节pH。另将 琼脂加入600 mL蒸馏水中，煮沸溶解。将上述两溶液混合均匀后，再加入指示 剂，待冷至50 ℃~55 ℃倾注平皿。 注:本培养基不需要高压灭菌，在制备过程中不宜过分加热，避免降低其选择性， 贮于室温暗处。本培养基宜于当天制备，第二天使用。

A.7 三糖铁(TSI)琼脂 A.7.1成分 蛋白胨20.0 g 牛肉膏5.0 g 乳 糖10.0 g 蔗 糖10.0 g 葡萄糖1.0 g 硫酸亚铁铵(含6个结晶水)0.2 g 酚 红0.025 g或5.0 g/L溶液5.0 mL 氯化钠5.0 g 硫代硫酸钠0.2 g 琼 脂12.0 g 蒸馏水1 000 mL pH 7.4±0.2 A.7.2 制法 除酚红和琼脂外，将其他成分加入400 mL蒸馏水中，煮沸溶解，调节pH。另 将琼脂加入600 mL蒸馏水中，煮沸溶解。 将上述两溶液混合均匀后，再加入指示剂，混匀，分装试管，每管约2 mL~4 mL,高压灭菌121 ℃10 min或115 ℃15 min,灭菌后置成高层斜面，呈桔红 色。

A.8 蛋白胨水、靛基质试剂A.8.1 蛋白胨水 蛋白胨(或胰蛋白胨) 20.0 g 氯化钠 5.0 g 蒸馏水1 000 mL pH 7.4±0.2 将上述成分加入蒸馏水中，煮沸溶解，调节pH,分装小试管,121 ℃高压灭 菌15 min。 A.8.2 靛基质试剂 A.8.2.1 柯凡克试剂：将5 g对二甲氨基甲醛溶解于75 mL戊醇中,然后缓慢加 入浓盐酸25 mL。 A.8.2.2 欧-波试剂：将1 g对二甲氨基苯甲醛溶解于95 mL95%乙醇内。然 后缓慢加入浓盐酸20 mL。 A.8.3 试验方法

挑取小量培养物接种,在36 ℃±1 ℃培养1 d~2 d,必要时可培养4 d~5 d。 加入柯凡克试剂约0.5 mL,轻摇试管,阳性者于试剂层呈深红色；或加入欧波试剂约0.5 mL,沿管壁流下，覆盖于培养液表面,阳性者于液面接触处呈 玫瑰红色。 注：蛋白胨中应含有丰富的色氯酸。每批蛋白胨买来后，应先用已知菌种鉴 定后方可使用。

9 尿素琼脂(pH 7.2) A.9.1成分 蛋白胨1.0 g 氯化钠5.0 g 葡萄糖1.0 g 磷酸二氢钾2.0 g 0.4%酚 红3.0 mL 琼 脂20.0 g 蒸馏水1 000 mL 20%尿素溶液 100 mL pH7.2±0.2 A.9.2制法 除尿素、琼脂和酚红外，将其他成分加入400 mL蒸馏水中，煮沸溶解，调节pH。另 将琼脂加入600 mL蒸馏水中，煮沸溶解。 将上述两溶液混合均匀后，再加入指示剂后分装，121 ℃高压灭菌15 min。冷至50 ℃~55 ℃,加入经除菌过滤的尿素溶液。尿素的最终浓度为2%。分装于无菌试管内， 放成斜面备用。 A.9.3试验方法 挑取琼脂培养物接种,在36 ℃±1 ℃培养24 h,观察结果。尿素酶阳性者由于产碱而 使培养基变为红色。

.10 氰化钾 (KCN) 培养基 A.10.1成分 蛋白胨10.0 g 氯化钠5.0 g 磷酸二

氢钾0.225 g 磷酸氢二钠5.64 g 蒸馏水1 000 mL 0.5%氰化钾20.0 mL A.10.2 制法 将除氰化钾以外的成分加入蒸馏水中，煮沸溶解，分装后121 ℃高压灭菌15 min。 放在冰箱内使其充分冷却。每100 mL培养基加入0.5%氰化钾溶液2.0 mL(最后浓度 为1:10 000),分装于无菌试管内,每管约4 mL,立刻用无菌橡皮塞塞紧,放在4 ℃冰箱 内,至少可保存两个月。同时，将不加氰化钾的培养基作为对照培养基,分装试管备用。 A.10.3 试验方法 将琼脂培养物接种于蛋白胨水内成为稀释菌液，挑取1环接种于氰化钾(KCN)培养 基。并另挑取1环接种于对照培养基。在36 ℃±1 ℃培养1 d~2 d,观察结果。如有 细菌生长即为阳性(不抑制),经2 d细菌不生长为阴性(抑制)。 注:氰化钾是剧毒药,使用时应小心，切勿沾染，以免中毒。夏天分装培养基应在冰箱 内进行。试验失败的主要原因是封口不严,氰化钾逐渐分解，产生氢氰酸气体逸出， 以致药物浓度降低，细菌生长，因而造成假阳性反应。试验时对每一环节都要特别 注意。

A.11 赖氨酸脱羧酶试验培养基 A.11.1成分 蛋白胨5.0 g 酵母浸膏3.0 g 葡萄糖1.0 g 蒸馏水1 000 mL 1.6%溴甲酚紫-乙醇溶液1.0 mL L-赖氨酸或DL-赖氨酸 0.5 g/100 mL或1.0 g/100 mL pH 6.8±0.2 A.11.2制法 除赖氨酸以外的成分加热溶解后,分装每瓶100 mL,分别加入赖氨酸。L-赖氨酸按0.5 %加入，DL-赖氨酸按1%加入。调节pH。对照培养基不加赖氨酸。分装于无菌的小试 管内，每管0.5 mL,上面滴加一层液体石蜡，115 ℃高压灭菌10 min。

A.11.3试验方法从琼脂斜面上挑取培养物接种，于36 ℃±1 ℃培养18 h~24 h,观察结果。氨基酸脱 羧酶阳性者由于产碱，培养基应呈紫色。阴性者无碱性产物，但因葡萄糖产酸而使培 养基变为黄色。对照管应为黄色。

A.12 糖发酵管A.12.1成分 牛肉膏5.0 g 蛋白胨10.0 g 氯化钠3.0 g 磷酸氢二钠(含12个结晶水)2.0 g 0.2%溴麝香草酚蓝溶液12.0 mL 蒸馏水1 000 mL pH 7.4±0.2 A.12.2 制法 A.12.2.1葡萄糖发酵管按上述成分配好后，调节pH。按0.5%加入葡萄糖，分装于有 一个倒置小管的小试管内，121 ℃高压灭菌15 min。 A.12.2.2 其他各种糖发酵管可按上述成分配好后,分装每瓶100 mL,121 ℃高压灭菌 15 min。另将各种糖类分别配好10%溶液，同时高压灭菌。将5 mL糖溶液加入于100 mL培养基内，以无菌操作分装小试管。 注：蔗糖不纯,加热后会自行水解者，应采用过滤法除菌。 A.12.3 试验方法:从琼脂斜面上挑取小量培养物接种，于36 ℃±1 ℃培养,一般2 d~ 3 d。迟缓反应需观察14 d~30 d。

A.13 ONPG 培养基 A.13.1 成分

邻硝基酚β-D半乳糖苷(ONPG) (O-Nitrophenyl-β-D-galactopyranoside) 60.0 mg 0.01mol/L磷酸钠缓

冲液(pH7.5) 10.0 mL 1%蛋白胨水(pH7.5) 30.0 mL A.13.2制法将ONPG溶于缓冲液内，加入蛋白胨水，以过滤法除菌，分装于无菌的小试管内，每管 0.5 mL,用橡皮塞塞紧。 A.13.3试验方法 自琼脂斜面上挑取培养物1满环接种于36 ℃±1 ℃培养1 h~3 h和24 h观察结果。如果β半乳糖苷酶产生，则于1 h~3 h变黄色，如无此酶则24 h不变色。

A.14 半固体琼脂 A.14.1成分 牛肉膏0.3 g 蛋白胨1.0 g 氯化钠0.5 g 琼脂0.35g~0.4 g 蒸馏水100 mL pH 7.4±0.2 A.14.2 制法 按以上成分配好,煮沸溶解,调节pH。分装小试管。121 ℃高压灭菌15 min。直立凝固 备用。 注:供动力观察、菌种保存、H抗原位相变异试验等用。

A.15 丙二酸钠培养基

A.15.1成分酵母浸膏1.0 g 硫酸铵 2.0 g 磷酸氢二钾 0.6 g 磷酸二氢钾 0.4 g 氯化钠 2.0 g 丙二酸钠 3.0 g 0.2%溴麝香草酚蓝溶液12.0 mL 蒸馏水1 000 mL pH 6.8±0.2 A.15.2制法 除指示剂以外的成分溶解于水，调节pH,再加入指示剂，分装试管，121 ℃高 压灭菌15 min。 A.15.3试验方法 用新鲜的琼脂培养物接种，于36 ℃±1 ℃培养48 h,观察结果。阳性者由绿色 变为蓝色。

4 检验程序

5 操作步骤5.1 前增菌 称取25 g(mL)样品放入盛有225 mL BPW的无菌均质杯中，以8 000 r/min~10 000 r/min均质1 min~2 min,或置于盛有225 mL BPW的 无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打1 min~2 min。若样品为液态， 不需要均质，振荡混匀。如需测定pH值，用1 mol/mL无菌NaOH或HCl 调pH 至6.8±0.2。 无菌操作将样品转至500 mL锥形瓶中，如使用均质袋，可直接进行培 养，于36 ℃±1 ℃培养8 h~18h。 如为冷冻产品,应在45 ℃以下不超过15 min,或2 ℃~5 ℃不超过18 h解冻 5.2 增菌 轻轻摇动培养过的样品混合物，移取1 mL,转种于10 mL TTB 内，于 42℃±1 ℃培养18 h~24 h。同时，另取1 mL,转种于10 mL SC内， 于36 ℃±1 ℃培养18 h~24 h。

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