提取质粒实验学习整理

更新时间:2024-02-02 15:45:01 阅读量: 教育文库 文档下载

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1. 菌液OD值越高,质粒产量越高

2. 大肠杆菌OD值越高,提取的质粒的浓度就越高吗???还要看质粒纯度,纯度一般

在1.8-1.9最适合,再高了就是蛋白污染

3. 一般而言gene 导入原核细胞称转化,导入真核细胞称转染。

4. 用QIANGEN质粒提取试剂盒提取质粒,我没有提不出来的经历,有以下几点要注意,

从细胞、试剂盒及操作三个方面考虑:

1..确定细菌是阳性转化子,应该含有你的质粒,过夜摇菌已足够,记得加抗生素。 2.关于试剂。溶液2中是否浑浊,SDS在低温产生结晶,使用前用37度水浴。溶液3中的醋酸钾可能产生结晶,使用前应该温水溶解。确认洗脱液1中的乙醇没有挥发,闻一闻就知道了。洗脱液2是否在使用前已加乙醇,加乙醇后在盖子上打钩,以免与没加的混淆。

3.抽提过程中,加溶液1(放4度保存)后应该充分悬浮菌体,以便裂解充分;加溶液2和3应该快,加溶液2后打开盖有丝状物,加溶液3出现絮状沉淀,离心要充分。请严格按说明书操作。

如果你觉得以上几点你都做的很好,试剂盒是新的,换含其它质粒的菌株试一试,如pUC18的转化子。如果试剂和是用过的,放置太久,换其它试剂盒吧,要不换土法试试!

5. Qiagen我卖这么多个,到目前还是零投诉。不过出现问题基本如下:

1。如果是质粒超纯试剂盒,得率偏低,因为Qiagen自己得专利树脂填料,对纯度得要求比对得率得要求高,在超纯质粒的抽提过程中,得率比同类产品要低些,不过OD得比值很好,就是纯度很高。

2。如果是质粒小提,快速提取等,基本不出什么问题。 有些操作要注意,

1。Solution 2,3有没有沉淀。

2。细菌培养过程中,有没有抗生素选择压力,不然质粒丢失。 4。收获细菌有没有测OD值,有些仅凭目测,呵呵,又差异得。 不过,有个建议,质粒小提,快速提取,就不要用Qiagen得了,偏贵。

6. 从你跑的电泳来看,你的质粒不是很多,差不多就是300ng,可能你的小片段太少,所

以你的小片断那就看不出来了,不知道你大片段分子是小片段的多少倍,一般跑电泳能看到在50ng左右,标准的MARK是每条带是50ng,如果你即使切下来了,但你的小片段太小,也是什么都看不到的,这里有一个大约估计量的公式,小片段的纳克数等于大片段纳克数乘他们分子量的比值

7. 提取质粒失败的可能的原因:1:克隆有问题;2:提质粒时裂解时间过长;3:质粒提

取试剂盒的溶液有问题;4:有点可能本身拷贝数就比较低,可换感受态重新转化后提质粒

8. 做重组质粒转化大肠杆菌,质粒用的pGL3-Basic (长度4818bp),连接的目的片段为1.8kb,通过抗

性平板筛选每次都有几个单菌落长出,挑单菌落于LB培养基扩增,之后摇菌提取质粒想做酶切验证是都阳性克隆,但是提取到的质粒具有多个条带,这样的话也就没法做酶切验证了。如图前五个孔为同一平板上的五个单菌落提出的质粒,最后孔为1KB marker。请大家帮忙分析是什么原因,难道是污染?

不要跑质粒,因为质粒有开环,半开环,螺旋的,跑出来的条带大小不一样,你先以重组载体作为模板,做PCR,如果有,再做双酶切,跑质粒的话由于质粒的形态不一致就会跑出多个条带,一定要把质粒变成线性的跑才能验证。验证重组载体是否构建成功包括PCR,双酶切和测序,希望能够帮到你。 9. 一般marker的DNA是线性的DNA分子。

从Ecoli中直接提出来的质粒,一般直接电泳会出现所谓的超螺旋的,线性的,双环断开的。所以在这一步,我是直接拿出测序了。但是我在之前都会再确认下。 你可以在提质粒时,先进行下菌液PCR,确定为阳性的克隆再质粒

10. 冻存的菌最好拿出来以后先在抗性平板上划线复苏一下 然后再挑去单菌落培养 提取质粒DNA 11. 我一般都是50ml离心管加15ml培养基,菌液先活化2小时再接种1:100的比例接,

然后培养14个小时吧,第二天用试剂盒提质粒,一般都能提出来,你的提不出来是不是传代次数太多,时间久了质粒丢失,之前有没有保存好的质粒,重新转化一次试试

12. 质粒怎么都能提出来的吧,只是是不是你的目的质粒而已,但是每个人操作方法也不

同,我觉得你可以一步一步排除原因,首先是你的菌液,先鉴定一下,pcr什么的,确保菌是正确的,然后是摇菌,我们一般认为大肠的生长期为12—16h,所以12小时不算长,也可以参考od值,第三就是用试剂盒的操作步骤和方法了

13. 提质粒的话我们都是摇将近12个小时的,这应该不是提不出来的原因~如果培养时加

抗生素了,保证长出来的菌是转化子,提不出来可能是由于质粒的拷贝数太低~之前我们做谷棒就是这样,一直提不出来,后来才知道是拷贝数只有不到5,根本就提不出来

14. 环状质粒在完整的超螺旋状态下比线性的迁移快,但是如果有nick,会比线性迁移慢,

慢多少和胶浓度有关。

15. 质粒:超螺旋形式跑得最快,其次是完全线性化的质粒,再就是开环形式,其中完全

线性化后才是质粒真正的大小

。提取之后质粒一般有两个条带。操作粗鲁的话可能有三条。

16. 重组质粒第一步需要鉴定出正确克隆,然后过夜培养提质粒,你提质粒的菌液OD值

应该为2——4。另外你现在选的感受态转化效率没有全是金的T1转化效率高,不行可以换它。测序确认你的目的条带

17. 提质粒前要先做菌落PCR或菌液PCR,正确以后再提质粒,提完以后再做酶切鉴定然

后送测序。同时你的片段只有110bp应该特别好连,检查你的酶切位点是否正确,载体有没有问题。

提质粒时一般如果在加入solutionII的时候不拉丝就不用往下提了

18. 正常情况下,质粒是环状的。你提取时,试剂及外力,会对它破坏作用。所以提取出

来的质粒,会有环状、开环、线状,三种状态。而每次提取时,这三种状态的比例,是不断变化的。所以一般都用单酶、或双酶切作进一步的鉴定。当然,也有用快而经济的PCR方法来鉴定,这种方法有假阳性的可能。

19. 之前从别的老师那接了JM109,我所需要的目的基因在其质粒上(Amp抗性),经摇

菌并用20%甘油保存、试剂盒提取、1%琼脂糖凝胶电泳显示单一条带(约2500bp),目的基因能扩增出来。但是过了近一个月,我再用之前保存的甘油菌划线、摇菌、试剂盒提取质粒、1%琼脂糖凝胶电泳显示单一条带(近6000bp)。那么问题来了,同一株菌种提取得到的质粒大小竟然不一样,我又做了几次重复,提取出来的质粒大小都是近6000bp,都能扩增出来我所需要的目的基因!我不知道这是什么原因造成的? 可能是两个质粒重组了,这事我也遇到过,用酶切一下再看就好了

20. 1.如果连入外源基因,不大可能2500bp,一般来说;。puc18算是很小的了,也有

2.7kb,所以你第一看到的是超螺旋状态,至于大小,肯定比2500大。

2.一般我们提取质粒,看到的是超螺旋的,如果放置时间过长,也可能产生,解螺旋的,也就是好开环的,电泳速度低,但基本不会全部变成解螺旋的。

两次看到的大小不同,个人感觉不大可能是因为构想导致,可能是质粒在大肠杆菌体内形成了二聚体,但这种情况,只是听说过,没有见过。

先进行单酶切看看。

21. 我提取质粒一般只用了试剂盒里面的前三种溶液(任何试剂盒都有三种溶液,要么是

solution I,solution II和solution III,或者Buffer P1,Buffer P2和Buffer P3等等啦,当然这三种溶液可以自己配,本人嫌麻烦就是用的试剂盒里面的),后面的就是嫁接的碱法提取法,从来不用带的柱子,一般3mL菌液提取的质粒大概是

2000ng/uL*50uL左右,取1uL电泳检测效果蛮好,后续酶切转染稀释一下用,效果挺好的!

22. 可以将洗脱液加热,再过柱子,可过两次增加洗脱效率。还有注意裂解菌时是否都悬

浮起来

23. 我一般是5-6ml菌液,用35-45ul水洗脱。正常情况下400ng/ul*40ul

24. 最多5微升菌液,浓度在一百到两百左右,在260有峰值 25. 冻存的菌液可能提取不到质粒。

26. 为什么提取的不同质粒有的有好几个条带,有的只有一个条带,而且提取的同种菌里

保藏的同种质粒两次提取出来的条带也不一样?再有就是质粒是环状的,那跑琼脂糖凝胶电泳还能判断它的大小吗?有意义吗?

你看到的几条带应该分别是超螺旋、开环和复制中间体(小到大),提质粒时操作差别会让这三种形态质粒量上有差异,一条带的时候一般都是超螺旋的。 直接电泳只能作为大小的参考,想要确定大小需要单酶切后电泳

27. 我们实验室是用axygen的质粒盒进行质粒提取的。这几天一直在提质粒,但是效果并

不是很好,主要原因是在加入s2和s3之后,10min离心,这之后产生的上清很少。之前提取都是产生一团白色的贴壁物质,现在变成了一团白色伴有半透明的水包,这样子产生的上清很少,求指导是什么原因!研一狗问的问题很低端,求大神解答! 这种情况最大可能性是菌液使用量太大了。减少菌液使用量再试试。 裂解没做好

估计是菌液没有裂解完全,或者离心的转数小了!

28. 质粒提取试剂盒天根的和omega的都不错,不过我喜欢用omega的,因为比天根的

步骤少。我们实验室都是用的是杭州AXYGEN的,它们公司专门做质粒提取的,试剂盒很好用,比较过的。用过天根的,跟它比,不太好,提取效率。

29. 1.5-2ml 的话70ul 应该是70-120ng/ul ,这个量貌似也不高啊!当然有可能和你的菌

有关,我们2ml 菌液 100ul洗脱可以提260ng/ul左右。

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