WB实验基本步骤

实验基本步骤

提取细胞蛋白

↓ BCA定量

↓

制备蛋白胶（SDS-PAGE胶）

↓

蛋白样品变性

↓ 电泳 ↓ 转膜 ↓ 封闭 ↓ 一抗 ↓ TBST洗涤

↓ 二抗 ↓ TBST洗涤

↓ 显影 ↓ 结果分析

试剂配制

1.PBS磷酸盐缓冲溶液1L

磷酸二氢钾 0.24g 磷酸氢二钠 1.44g 氯化钠 8g 氯化钾 0.2g

加入500ml纯水，调PH=7.2 定容至1L,高压蒸汽灭菌

2.PBST（PBS+0.05%吐温-20）

500mlPBS+0.25ml吐温-20

3.电转液500ml

Tris 1.5g 甘氨酸 7.2g 400ml水溶解

加入100ml甲醇，置于4℃冰箱预冷

4.电泳液（1X）

10x稀释，50ml10x电泳液+450ml纯水

5.TBS

6.TBST（TBS+0.05%吐温-20）

50mlTBS+450ml纯水+0.25ml吐温-20

7.封闭液

TBST1X+5%奶粉

40ml封闭液=40mlTBST+2g奶粉，40℃预热

WB实验

一、蛋白样品制备

准备:一管细胞，PBS（4℃预冷），PMSF（100mM），移液枪（1000ul，10ul），1.5mlEP管2个，高速冷冻离心机4℃预冷

1.于-20℃冰箱中取出一管细胞样品，吸去培养液

2.加入1ml 4℃预冷的PBS（0.01M pH7.2～7.3）。用移液枪轻轻吹成悬浮液后4℃，8000r离心5min，然后弃去上清。重复以上操作一次，共洗细胞两次以洗去培养液。

3.按1ml裂解液加10 μl PMSF（100 mM），摇匀置于冰上。（PMSF要摇匀至无结晶时才可与裂解液混合。） 4.在样品中加入300ul含PMSF的裂解液，吹匀，于冰上裂解30 min，为使细胞充分裂解培养瓶要经常来回摇动。

5.裂解完后，于4℃下12000 rpm离心5 min。

7.将离心后的上清分装转移倒0.5 ml的离心管中放于－20℃保存。

二、 蛋白含量的测定（BCA定量）

准备：96孔板，移液枪（1000ul，10ul，200ul），BCA工作液（A+B），50mlEP管，1xPBS，BSA标准液 1.将96孔板分好区域，若不够分则只做两个重复，（外围一圈的孔最好不用）

2.算好孔数（总的）每孔加200ulBCA工作液（A+B），（A液：B液=50:1，一般配多些，如60孔，A液12000ul，B液240ul）

3.将样品稀释到一定倍数才能定量，（10倍，20倍，30倍），每孔需要20ul样品（2ul样品+18ulPBS,即稀释10倍），做三个重复则需要60ul，一般配80ul

4.配蛋白标准样品，将2mg/ml的蛋白标准溶液稀释至0.5mg/ml，若配200ul 的0.5mg/ml蛋白标准溶液则需要50ul的2mg/ml的蛋白标准溶液和150ul PBS溶液

5.将稀释好的样品加入孔板中（标记的区域），接着标准品按0，1,2,4,8,12,16,20ul加到标号的区域，之后在加标准样品的孔内，将孔内溶液用PBS补足到20ul 6.每孔加200ul配好的工作液,平行加,不能上下加,以减少误差 7.将加好的96孔板放在37℃下孵育30分钟

8.孵育完后,放在酶标仪轻微震荡3-10s,中速,吸光值595nm,进行比色测定,记录标准曲线及样品吸光值数据后,以蛋白含量（ml）为横坐标,吸光值为纵坐标作标准曲线。（R2 >0.98才有用,酶标仪操作:两个箭头图标,1是结果,2是保存）

9.计算蛋白含量（注意定量样品已经稀释了10倍）

序号

标准蛋白量/ul （0.5mg/ml） 背景液（PBS）/ul 标准液浓度mg/ml

1 0 20 0

2 1 19 0.025

蛋白质定量标准曲线加样量 3 2 18 0.05

4 4 16 0.1

5 8 12 0.2

6 12 8 0.3

7 16 4 0.4

8 20 0 0.5

三、SDS－PAGE电泳

1. 配胶（12%,可以提前配好）

准备：玻璃板，梳子，AP（解冻，现拿现用），聚丙烯酰胺（4℃冰箱冷藏） （1）玻璃板验漏5min （2）按表配置分离胶

（3）灌胶，加酒精封压，凝30min（注意不要有气泡）

（4）按表配浓缩胶，倒掉酒精，用吸水纸吸去酒精，灌胶，插梳子（注意不要有气泡），凝30min （5）取胶，用水冲洗一下浓缩胶，加少量水放入一次性手套中4℃冰箱保存备用 2. 样品处理

准备：PBS，移液枪，1.5mlEP管

（1）稀释样品：一般每孔上样5ul，即1mg/ml浓度的样品，测完蛋白含量后，将样品用PBS稀释至1mg/ml（注意loadingbuffer的加入也得算入）

（2）取出上样样品15ul至1.5 ml离心管中，加入6×SDS 上样缓冲液3ul至终浓度为1×。（上样总体积一般不超过15 μl，加样孔的最大限度可加20 μl样品。） （3）将样品在100℃煮5 min震荡使蛋白完全变性（注意仪器操作） 3. 电泳

准备：电泳液500ml（现配），蛋白胶，10ul移液枪（枪头），样品，Marker，冰盒，电泳装置

（1）将SDS-PAGE胶放入电泳槽中，加足够的电泳液。（短玻璃板面向内，长玻璃板面向外。若只跑一块胶，那槽另一边要垫一块塑料板且有字的一面面向外。电泳液至少要漫过内测的短玻璃板。注意先检漏。） （2） 上样。用移液枪贴壁吸取样品，将样品吸出不要吸进气泡。将加样器针头插至加样孔中缓慢加入样品。（加样太快可使样品冲出加样孔，若有气泡也可能使样品溢出。加入下一个样品时，进样器需在外槽电泳缓冲液中洗涤3次，以免交叉污染。）

（3）先设置80V，开始电泳，样品溴酚蓝跑至分离胶后增至120V电压，电泳至溴酚兰刚跑出即可终止电泳，进行转膜。（此时准备好电转液）

四、转膜

准备：电转液（现配4℃冰箱冷藏），镊子，滤纸，PVDF膜（0.45um），电转装置，冰盒 注意：拿滤纸和膜时一定要戴手套或用镊子，因为手上的蛋白会污染膜。 1. 在加有转移液的盘里放入转膜用的夹子、两块海绵垫

2. 滤纸浸入电转液中，PVDF膜在甲醇中润湿成半透明，小心将膜放入4℃电转液中平衡至少5min。 3. 将夹子打开使黑的一面保持水平。在上面垫一张海绵垫，用玻棒来回擀几遍以擀走里面的气泡。（一手擀另一手要压住垫子使其不能随便移动。）在垫子上垫三层滤纸（可三张纸先叠在一起在垫于垫子上），一手固定滤纸一手用玻棒擀去其中的气泡。

4. 先将玻璃板撬掉才可剥胶，撬的时候动作要轻，要在两个边上轻轻的反复撬。撬一会儿玻璃板便开始松动，直到撬去玻板。（撬时一定要小心，玻板很易裂。）除去小玻璃板后，将浓缩胶轻轻刮去（浓缩胶影响操作），要避免把分离胶刮破。小心剥下分离胶盖于滤纸上（做好标记），用手调整使其与滤纸对齐，轻轻用玻棒擀去气泡。将膜盖于胶上，要盖满整个胶（膜盖下后不可再移动）并除气泡。在膜上盖3张滤纸并除去气泡。最后盖上另一个海绵垫，擀几下就可合起夹子。整个操作在转移液中进行，要不断的擀去气泡。膜两边的滤纸不能相互接触，接触后会发生短路。（转移液含甲醇，操作时要戴手套，实验室要开门以使空气流通。）

5. 将夹子放入转移槽中（电转移时会产热，浆槽放入冰中），要使夹的黑面对槽的黑面，夹的白面对槽的红面。一般用100mA转移90min。

6. 转完后将膜用1×丽春红染液染5 min（于脱色摇床上摇）。然后用水冲洗掉没染上的染液就可看到膜上的蛋白。将膜晾干备用。（准备封闭液）

六、免疫反应

准备：封闭液，一抗，二抗，TBST

1 . 将膜移至含有封闭液的平皿中，室温下脱色摇床上摇动封闭2h。 2. TBST洗4次。每次5分钟。

3. 将膜按照目的蛋白所处位置剪切并做好标记，加入相对应的一抗，室温孵育2h或者4℃过夜 4. 室温下孵育1～2 h后，用TBST在室温下脱色摇床上洗四次，每次5min

5. 同上方法准备二抗稀释液并与膜接触，室温下孵育1～2 h后，用TBST在室温下脱色摇床上洗4次，每

次5 min

七、显影

准备：样品胶片，移液枪（200ul），中枪头，吸水纸，显影液（A+B），薄镊子

75kd 28kd

一抗 二抗 兔二抗 鼠二抗 兔二抗 目的蛋白78kd Bip 1:1000 目的蛋白34kd GAPDH内参1:5000 目的蛋白17kd Sep15 1:1000 1. 将A和B两种试剂在保鲜膜上等体积混合；

2.1 min后，取适量显影液于显影仪台面上，将膜用镊子夹起来正反面充分和显影液接触，注意切角在左上，即正面朝上。

应注意的是：显影需移动胶片时，尽量拿胶片一角，手指甲不要划伤胶片，否则会对结果产生影响。 3.盖上盖子，将胶片进行扫描或拍照。

本文来源：https://www.bwwdw.com/article/cxpg.html