PEI及其共聚物的胶囊化siRNA在肿瘤基因治疗中的研究进展

更新时间:2023-05-14 13:36:01 阅读量: 实用文档 文档下载

说明:文章内容仅供预览,部分内容可能不全。下载后的文档,内容与下面显示的完全一致。下载之前请确认下面内容是否您想要的,是否完整无缺。

PEI及其共聚物的胶囊化siRNA在肿瘤基因治疗中的研究进展

史秋生段友容杜联芳

【摘要】siRNA诱导的基肉沉默为肿瘤的基因治疗提供了新的有效手段.但外源性siRNA在体内的安全高效递送一直是亟待解决的炎键问题。聚乙烯哑胺(PEi)及其共聚物能够包裹siRNA形成胶囊化的纳米粒,在体外多种肿瘤细胞实验、体内多种肿瘤模型经瘤内、腹腔或静脉途径应用中,对肿瘤细胞和移植瘤模型的生长都有良好的抑制效果。纳米粒中siRNA的稳定性和生物活性与PE!的结构、分子量、N/P比值以及构成共聚物的成份等密切相关。

【关键词l外源性小干扰RNA;中图分类号:Q752;Q78

聚乙烯亚胺;

共聚物;

胶囊化;

肿瘤

文献标识码:A文章编号:1673--4181(2011)Ol一0043-07

AdvancesinencapsulationofsiRNAwithPEIanditssheng*,DUANYou-rong,DU

copolymersfor

cancer

genetherapy

SH!Qiu-

L洒扣r够+The

theFirstPeople,sHospitalofShanghaiJiaotong

Unwe=a弦Sb们200080,China

are

Division

ofMolecular

imaging。Department

of

Ultrasonography,

【Absract】ThegenesilenceinducedbysmallinterferingRNA(siRNA)provides

powerfultoolforgene

therapyofneoplasm.However,safeandefficientdeliveryofexogenoussiRNAisstillthekeyissueforclinical

application.Polyethyenimines(PEI)anditseopolyme玛c蛐encapsulatesiRNAintocomplexintheformationof

nanopartielewhereinthestabilityandactivityofsiRNA

closelyrelated

to

thestructure

andmolecularweiisht

can

ofPE!.N,Pratio.andthecompositionofcopolymem.ThesiRNA encapsulatednanoparticlesinhibittheproliferationoftumorcellintraperitoneal

orvenous

effectively

not

onlyin

vitro,butalso

invivnbyadministrationviaintratumoral,

injections.

Encapsulation;Neoplasm

【Keywords】SmallinterferingRNA;Polyethyenimines;Copolymem;

0引言

interference,

穿过血管内皮细胞层的自然障碍进入组织间隙后,又必须克服由多糖和纤维蛋白构成的致密的细胞外基质网对生物分子的阻碍。siRNA带负电荷,因此不易穿过细胞膜进入细胞浆。面对这些障碍,siRNA的递送,尤其是载体递送已经成为RNAi的挑战性课题之一12,6-71。

病毒作为载体.单次给药可达到长效的基因沉默效果。但它具有潜在的免疫原性,病毒的基因序列引起的插入诱变或触发的异常基因表达所带来

随着对内源性RNA干涉(RNA小于扰RNA(short

RNAi)分子机制的认识加深,人们对引入的外源性

interferingRNA,smallinterfering

RNA,siRNA)作为一种崭新的高效药物用于治疗一些难治性疾病进行了深入研究。对某些疾病如老年性黄斑变性的局部给药应用研究已进入Ⅱ~Ⅲ期临床试验阶段11-51;不过对于大多数疾病而青,临床则需要经全身给药。siRNA在到达靶部位之前.必须克服一系列生理障碍,如siRNA必须避免被肾脏滤过、被乔噬细胞摄取、与血清蛋白结合凝集、被内源性核糖核酸分解酶(ribonuelease,RNase)降解。在

DOI:10.3760/cma.j.issn.1673-418I.2011.01.010

基金项月:冈家自然科学基金资助项一(30772369,H1205);上海市级跃院适宜技术联合开发推广应用项rj(SHDC12010221)

作者单位:200080上海交通大学附属第一人民医院翘声科分子影像研究窜(史秋’仁、十l:联芳);200032上海交通大学肿增研究所药物递送研究窜(段友窖)

通f1.i作者:杜联芳.Email:du—If@i63.com

的不可治性基因诱变风险令人担忧【21。非病毒载体

的材料种类较多.脂质体转染效率高,免疫原性和细胞毒性相对较低,但是磷脂双分子层结构中的液性隔间(aqueouscompartment).使其所形成的纳米粒稳定性有待提高m8l。细胞穿透肽(cell

penetratingpermeant

peptides,CPPs)或膜渗透肽(membrane

peptides,MPPs)的阳离子氨基酸与质膜的阴离子相互作用。以非受体结合的方式能够被细胞摄取.为siRNA递送提供了新的途径;但是siRNA与CPPs以共轭方式携带.由于电荷密度低.形成的纳米粒

万方数据

垦堕生塑匿兰王矍墨查2Q!!生兰旦箜丝鲞笙!塑丛』!i!些!垦篮:坠!坐型!!!!!!垡:丝:坠:!

也不够稳定,基因沉默效率低[9-tll。壳聚糖、聚乳酸一乙醇酸共聚物(poly(1actic.CO.glycolicacid),PLGA)是生物可降解聚合物;但是作为载体,siRNA的包裹率和基因沉默效率低【12-151。聚乙烯亚胺(polyethyenimines,PEI)由于其特殊的单元结构模式,是递送基因的“金标准”材料,基因沉默效果十分明显,但是明显的细胞毒性限制了临床应用陋m。迄今为止,仍无安全高效的基因载体。

近年来的实验研究表明:不同分子量的PEI及其共聚物递送siRNA对肿瘤有较好的抑制效果,而且无明显细胞毒性118-21l,从而推动了siRNA作为药物治疗肿瘤的研究进程。本文就PEI及其共聚物的胶囊化siRNA在肿瘤基因治疗方面的研究进展作一综述。

PEI的质子海绵假说

PEI是合成的直链(1inear,L-PEI)或支链

(branched,B—PEI)聚胺多聚体,分子量大小不等,每隔3个位置,有一个可质子化的胺基和一个高密度的阳离子区,使得该聚合体在离子构成上呈“海绵”样结构1221。通过静电相互作用,PEl分子将带负电荷的核苷酸浓缩成(或胶囊化包裹成)聚合物络合物或包埋式聚合电解质络合物119-201,络合物通过静电的内向通量,引起内涵体的稳定性减弱,使得内涵sponge

PEI胶囊化siRNA纳米粒的生物生理特性PEI胶囊化siRNA纳米粒的表征原子力显微镜检查法(atomic

forcemicroscopy,

ku的支链PEI(B—PEI)、二硫键交联的ku的直链PEI(ssPEI)、分子量为5ku

25

ku形成的络合

ku的ku的L-PEI、分子量为25ku的

万方数据

B.PEI

3种PEI胶囊化的siRNA的表征,当N/P比

值分别为l、3、6、8时,B.PEI25

ku形成的纳米粒大

小分别为68、299、59、80nm;而前2者在任何N/P

比值时,粒子大小都分别在195、155nm以上。N,P

比值不同,纳米粒表面电荷也不相同:N/P为l时,3种粒子均带负电荷,随着N/P比值的增高,B—PEI

25

ku表面呈正电荷,其他2种的负电荷逐渐减少。

PEI

F25.LMW是B.PEI

25

ku经过凝胶渗透层

析法纯化的部分,分子量4一lOku。Werth等【26报道,N/P比值为33或66时,形成的siRNA/PEI呈完整的球形。当保存于150mmol/L的氯化钠溶液时,粒径大小为100~150nm,平均为117.2nm;当保存在5%葡萄糖溶液时,粒径大小为80—140nm,平均为

88.7

nm;低压冻干复苏后,粒径大小为50—200

nm,

平均90nm。Hobel等川报道,N/P比值为30时,

PEI

F25.LMW包裹的siRNA纳米粒大小为(48.9±

平均最小为25—75nm,最大60~130nm。由此可见,PEI胶囊化siRNA纳米粒的表征与PEI的结构和分子量关系密切。

PEI胶囊化siRNA纳米粒的稳定性

Urban—Klein等【19I用商品化的低分子量L-PEI

(JetPEI)包裹32P末端标记的siRNA,然后和l%胎calf

serum,FCS)一起孵育。不同时间点

min)几乎被血清中的min时仍见了B.PEI

800ku、B.PEI25ku、PEIF25.LMW、B.PEI

ku、B.PEl0.8ku、JetPEl对胶囊化siRNA的影响。

h,凝胶电rain内几800

ku、B-PEI25ku、PEIF25.LMW、

min以上,但B.PEI800ku

0.8

ku几乎不表达siRNA生物活性。作者

F25一LMW包裹的siRNA可h后,生

作用与细胞表面结合并被细胞吞饮后形成内涵体,缓冲细胞内的低pH。其中的PEI增强了水和质子体渗透性释放内容物释放到胞浆[sl。在胞浆内环境下,络合物中的核酸又从PEl分子中游离出来,这个过程就是所谓的质子海绵假说(proton细胞内并发挥生物功能。

22.1

9.7)nm者占81.17%、(99.2±12.1)nm者占18.83%;2.2

牛血清(fetal

进行琼脂糖凝胶电泳和免疫印迹定量定性检测.裸siRNA在最短的时间(15RNase完全降解,而siRNA/PEI在240代表siRNA分子全长的放射性条带,提示PEI能有效保护siRNA分子的结构完整性。Werth等【珥研究hypothesis)。通过这一过程,核酸从细胞外被递送到

232P末端标记的siRNA与FCS一起孵育2泳和放射自显影照片显示:裸siRNA在15乎全部降解.代表siRNA分子全长的放射性条带不再显示;而B-PEIAFM)能显示裸siRNA的双链条状结构,加入PEI后双链条状结构消失,形成的络合物siRNA/PEI呈球形和类球形纳米粒,表面光滑【悖一。Breunig等I列用琼脂糖凝胶电泳的方法证实:不同的PEI和siRNA所形成的siRNA/PEI在表征上存在差异。在研究了分子量为25分子量为2.6的直链PEI(L-PEI)后发现:B.PEI

JetPEI包裹的siRNA中,有70%siRNA都能够显示完整分子的时间长达120和B.PEl

分析认为PEI的分子量越大,胶囊化程度越充分,当到一定程度时,呈过度胶囊化状态,阻碍了siRNA

的释放;而分子量太小。拥有的正电荷数目有限.很

难和带负电荷的核酸相互作用,不足以形成对siRNA的有效保护。PEI以在一20℃低温下保存数月而无需特殊的佐剂。复苏后与人卵巢癌细胞SKOV.3共同孵育48物更均匀,氮磷比值(N/P)为12时,粒子的表面电荷呈阳性。Grayson等[251报道了分子量为0.8B.PEI、分子量为22

物活性几乎保持90%以上。Grayson等【笛I报道,不同N/P比值、siRNA浓度与siRNA/PEI络合物的稳定性有关,只有N/P比值在6。8以上、siRNA浓度在

200

nmol/I。时,B.PEI

25

ku形成的siRNA/PEI纳米粒才能够保持稳定。

2.3

PEI胶囊化siRNA纳米粒的细胞摄取

Urban.Klein等【19l将荧光标记的JetPEI包裹原

癌基因HER.2(neu/c.erbB.2)的siRNA,然后和SKOV.3细胞一起孵育。共聚焦激光显微镜方法观

察到,30min后整个细胞浆内有许多大的荧光点,持续90—120

min。2

h后荧光明显减弱。这些荧光点代表siRNA/PEl的胞饮囊泡。将稳定表达荧光素酶

的SKOV.3细胞与浓度分别为0.1、l、10pmol/L的

siRNA/PEI一起孵育.结果显示:浓度越高者细胞的荧光素酶表达水平越低,这种剂量依赖性的siRNMPEI基因表达下调早在24h就能观察到,48h后达到高峰、持续数天。Breunig等例用B—PEI25ku、ssPEl和L-PEI5ku3种结构的PEl分别包裹针对增强绿色荧光蛋白的siRNA,siRNA用绿色转染指

示剂siGLO作为荧光标记,siRNA/PEI与中国仓鼠卵巢细胞哑株CHO.Kl共同孵育5h后,共聚焦激

光显微镜方法观察到:位于胞浆内或内涵体内的、呈斑点状离散分布的siRNA/PEI荧光.以及位于胞浆内、呈均匀分布的、从siRNA/PEI中释放出来的、具有生物活性的siRNA荧光染色。3种siRNA/PEI与CHO.KI孵育4h后。流式细胞仪观察到:随着N,P比值和聚合物浓度的增加,细胞摄取siRNⅣPEI增加。N/P相同时,3种siRNA/PEI复合物中,随着PEl分支的增加,细胞摄取能力逐渐增加,由高到低依次为B.PEI

25ku、ssPEI、L-PEI5ku。

2.4

PEI胶囊化siRNA纳米粒的细胞毒性Grayson等闭研究了B—PEl

0.8ku、L-PEI22ku、

B.PEI25ku

3种siRNA/PEI对人宫颈癌细胞亚株

HR5一CLIl的毒性,3种siRNA/PEI的半抑制浓度IC如分别为50、37、19¨g/mL,说明B.PEI

25

ku的毒

性最大。Urban.Klein等【19li丘过48h的细胞增殖实验证明:所用剂量的JetPEI及胶囊化纳米粒对SKOV。3

细胞未产生生长抑制.无毒副作用。Bieber等127研究

表明:低分子量PEI体内外的毒性极低,具有高度的生物相容性和高转染率,是一种有效的载体。Moghimi等例报道.siRNA/PEI的细胞毒性与PEI的结构和分子量有关.分子量越低。细胞毒性越低。

PEI胶囊化siRNA纳米粒的生物学表达Urban.Klein等1191用JetPEl包裹针对HER.2基

万方数据

因的siRNA,在血清存在的情况下,与SKOV.3细胞一起孵育。24h后HER.2的mRNA水平降低50%。持续超过72h。Breunig等124研究表明:B.PEI25ku、

ssPEI和L—PEI

5ku

3种结构的PEl分别包裹针对

增强绿色荧光蛋白的siRNA,然后和CHO.K1细胞一起孵育,siRNA的基因沉默效率分别为25%、45%;而L-PEI

ku复合物的基因沉默效果极低。结

果还提示:PEl分子中引入的二硫键结构有助于siRNA从PEI胶囊中释放与生物学表达。裸鼠皮下建立的SKOV.3细胞肿瘤模利实验中发现:30

min

后,32P标记的siRNA/PEI在肿瘤组织的信号最强.持续3h以上(凝胶电泳显示)。每48—72h经腹腔注射siRNA/PEI,l周后肿瘤明显缩小,肿瘤内

HER.2的mRNA水平减低50%以上。Aigned剪搬道,

PEI包裹PTN基因的siRNA,可明显降低FIN表达,减缓人脑星形胶质母细胞瘤U87的增殖。经裸鼠皮下或腹腔注射,明显抑制了U87生长。

Werth等126I将稳定表达荧光素酶的SKOV.3细胞与PEIF25.LMW胶囊化的siRNA一起孵育48h,

细胞的荧光素酶表达下降80%,而对照组则没有改

变。相比之下,L-PEI

22

ku胶囊化的siRNA效果则

明显依赖于FCS浓度:2%FCS条件下。细胞的荧光素酶表达下降高达80%,5%、10%的FCS条件下,荧光素表达下降不明显。裸鼠皮下瘤模型中.经腹腔内给予PEIF25.LMW胶囊化的siRNA,肿瘤生长抑制明显。新鲜和冻存复苏的PEIF25.LMW胶囊化包裹针对人血管内皮生长因子(vascular

endothelial

growth

factor,VEGF)的siRNA,与人前列腺癌细胞

PC.3一起孵育,贴壁生长的细胞数量明显减少;酶联免疫吸附实验(enzyme.1inked

immunosorbent

assay,ELISA)检测显示。细胞分泌的VEGF下降50%以上,提示新鲜和冻存复苏的PEIF25一LMW胶囊化siRNA都有良好的肿瘤抑制效果。

PEG化siRNA对PEI胶囊化siRNA纳米粒的

影响

siRNA双链的结构完整性高度影响所诱导的基因沉默效果m1。根据修饰部位的结构改变程度,siRNA的生物功能不受影响Ⅲj或降低10%一50%132I。

Harborth等f∞认为,化学修饰siRNA正义链的3’端

对RNAi的影响最小。

聚乙二醇化(PEGylation)是聚乙二醇(polyethyleneglyc01.PEG)通过共价键修饰生物分子的过程例。PEG本身是一种无毒性无免疫原性的聚合物,PEG化可以改变生物分子的构象、表面电荷、疏水性等

垦匪尘塑堕堂兰矍盘查2Q!!至!旦笙丝鲞笙!塑!!!』!也!型垦竖:坠!竺型!!!!:!堂:兰:塑!:!

物理特性。Lee等I站l用分子量为5ku的甲氧PEG(methoxy.PEG删-SH,mPEG.SH)修饰人VEGF的

siRNA(序列为正义链5’.GGAGUACCCUGAUGAGAUCdTdT.3’。反义链5’.GAUCUCAUCAGGGUACUCCdTdT-3’)。形成PEG化siRNA,即siRNA.PEG;然后将RNaseONETM分别与裸siRNA和siRNA.PEG一起孵育。凝胶电泳显示:15min后裸siRNA完全降解,而siRNA—PEG则仍有40%以上保持结构完整。Kim等【蚓用50%FCS分别与裸siRNA、siRNA—PEG一起孵育。凝胶电泳显示:8h后裸siRNA几乎完全降解。而siRNA—PEG中的siRNA在16h时结构的完整性仍未受到明显影响。若用B.PEI

25ku

胶囊化该siRNA.PEG形成siRNA—PEG,PEl,则48h后siRNA.PEG/PEI中的siRNA仍未检测到降解。将PC.3分别与siRNA/PEl和siRNA.PEG/PEI一起孵育16h,在没有血清时,ELISA测得PC.3细胞分泌VEGF的蛋白量分别为21.2p∥mL和14.6

pg/mL。

加入10%FCS后,2者PC.3细胞分泌的VEGF蛋白含量则分别为从21.3pg,mL增加到91.3pg/mL、从

14.6

pg/mL增加到25.9pg/mL,差别有极显著性意义,提示PEG化siRNA能够明显提高PEI胶囊化siRNA的基因沉默效果。该结果也得到半定量的逆转录PCR(RT.PCR)的进一步证实。Kim等121t建立了PC.3的裸鼠移植瘤模型。将siRNA/PEI和siRNA.PEG/PEI肿瘤局部注射后3d,用ELISA和RT—PCR方法分别检测肿瘤细胞分泌的VEGF蛋白质和mRNA水平,结果显示:与对照组相比,后者的基因沉默效果下降74.8%,siRNA/PEI和siRNA.PEG/PEI2组的基因沉默效果差别有统计学意义(P<0.05)。经尾静脉注射后。用ELISA方法检测并分别和对照组相比,siRNA/PEI和siRNA-PEG/PEI2组的VEGF表达分别下降到原来的(86.4±3.6)%和(43.0±14.6)%。细胞水平和动物肿瘤模型实验都证明:PEG化siRNA可以增强PEI胶囊化siRNA的稳定性和生物活性。

PEI共聚物胶囊化siRNA的研究进展5.1

PEG-PEI共聚物胶囊化siRNA

PEG-PEI共聚物,即PEG化的PEI。Mao等I趋报

25ku

Y),X为PEG的分25

ku胶囊化的siRNA形成的纳米粒大小为

(144+12.2)am,表面电荷22.3mV;而0.55kuf孙

万方数据

2ku㈣、5ku…20

kuf,邱G与PEI接枝形成共聚物

后,胶囊化的siRNA形成的纳米粒大小分别为(434±55_5)、(102:e4.96)、(118±24.1)、(109±3.86)nm,表面电荷分别为负值、15、16、20mV。研究发现,

0.12

mlU/Ixg的RNase足以使裸siRNA完全降解,

但是PEG分别为O.55

ku(30、2kufl佛、5

ku…20kufIl的

PEG.PEI共聚物与siRNA形成胶囊化纳米粒后,和浓度为6.0mlU/l山g的RNase一起孵育30min,纳米粒中结构完整的siRNA剩余量分别为几乎O%、32%、68%、92%,而单纯B.PEI

25

ku者,剩余量为

9%。提示PEG.PEI共聚物可以明显增强胶囊化siRNA的稳定性。共聚物胶囊化的siRNA和稳定表达B牛乳糖的成纤维细胞HIH3T3一起孵育,结果显示:共聚物胶囊化的siRNA均较单纯的PEI胶囊化的siRNA基因沉默效果明显提高,提示PEG.PEI共聚物可以增强胶囊化siRNA的生物活性。Kabanov

等I似为,胶囊化的siRNA之所以得到有效保护和

稳定的粒径,可能的原因是siRNA被包埋在聚合阳离子的核心部位,亲水聚合物链朝向周围的水溶性环境,形成了亲水性的外壳。Mao等I∞I报道的PEG-PEI共聚物胶囊化siRNA的稳定性增加,支持这些核心一壳结构的假说:siRNA包裹在阳离子的核心中间,周围环绕着亲水的PEG壳。在水溶液中,PEG是一种高度水溶性的聚合物,分子片段有高度的灵活性,能够影响水分子层的结构,产生明显的构象变化,造成一定的排他性空间。亲水性聚合物PEG的亲水链构成的毛刷状构象(brushconformation)形成了分子动态云(molecular

dynamic

cloud)样的立体障

碍.同时每个PEI片段的灵活自由旋转,都能够阻止蛋白在纳米粒表面的吸附。

5.2

APP共聚物胶囊化siRNA

最近Nimesh等I埔J报道了丙酸酐酰化的PEI

(acylatingPElwithpmpionicanhydride)交联二磷酸

化PEG(polyethyleneglyc01.bis(phosphate”对siRNA的影响。通过计算得到伯胺和仲胺30%丙酸酐酰化的B—PEI

750

ku,然后和PEG二磷酸盐交联(PEG

ku.bis—P)。形成PEI的丙酸酐酰化交联共聚物

APP。接触式AFM方法显示,APP呈紧密的球形,平均粒径100om;三维图像显示,2h后无明显凝集,粒子均匀分布。水溶液中,动态光散射方法测得粒径大小为l

IO

nm。单纯APP的表面电荷为22.7

mV,

与siRNA结合后表面电荷为18.5mV,在10%血清中表面电荷为一24.8mV。针对绿色荧光蛋白基因的

siRNA分别与APP、商品化的Lipofectin形成APP-

siRNA、Lipofeefin—siRNA复合物后,与人胚胎肾

5.

道了不同分子量的PEG和植入密度对B.PEI

胶囊化能力的影响。PEG.PEI共聚物中,PEG占50%(40%~60%),表示为PEG)(f子量,Y为PEG的植入密度。AFM显示:单纯&

PEI

圉昼生塑匿堂王塑盘查2Q!!生呈旦堑丝堂笙!塑!!!』!i!巴型垦!g。曼!型!g垫!!。!Q!:≥!:№:!

HEK293细胞一起孵育,48h后倒置荧光显微镜定性分析基因沉默效果,用标准化的绿色荧光强度值定量测定HEK293细胞所表达的绿色荧光蛋白的相对水平,结果显示APP.siRNA、Lipofectin.siRNA的基因沉默分别为83%、81%。进一步的流式细胞测定,2者的基因沉默效率分别为85%和80%。M1Tr比色测定细胞毒性,裸siRNA、APP.siRNA、

Lipofectin siRNA、B-PEI750

ku-siRNA与HEK293共同孵育48h后,活细胞数分别为90%、84%、60%、51%。可见APP—siRNA的基因沉默效果和商品化的Lipofectin相似,不过细胞毒性明显降低。

PLGA.PEI共聚物胶囊化siRNA

PLGA是2种不同的单体乙醇酸(glycolicacid)

和乳酸(1acticacid)在催化剂作用下随机开环,通过共聚反应,一系列的单体结构单元以酯腱相互连接成线性、无定形的聚酯产物,它的大小、形态和∈电位可以通过合成方法的参数调整得到控制[381。PLGA呈胶态,典型的PLGA粒径大小10—1

000

nm,可以

吸附、化学偶联在其他聚合物的表面,也可以包裹

或吞饮治疗药物。PLGA在体内水性环境中,酯腱被水解,变成最初始的乳酸和乙醇酸单体,而乳酸和乙醇酸是机体在生理状态下新陈代谢的产物09I。因此PLGA是生物可降解的聚合物。与脂质体liposome和脂质囊泡相比,PLGA在体液中稳定性高,不易被酶解代谢,能够穿透毛细血管进入组织深层,能够被细胞有效摄取,同时还可以持续数天至数周缓慢释放携带的治疗药物f401。因此,将PLGA作为载体递送基因.具有十分明显的优势,但是基

因的包裹、转染和表达效果低。

Patil等Ⅲl报道,双链寡核苷酸(oligomers。oligs)含20个碱基对,基因序列为正义链5-CCATCCCGACCTCGCGCTCC.3。反义链3_-GGTAGGGCTGGAGCGCGAGG.5,作为siRNA模型。用分子量为40

ku

的PLGA(50:50)胶囊化包裹oligs.最大包裹率为将B.PEI

25

ku与PLGA

40

ku(50:50)通过双乳化溶

媒蒸发技术将PEl分子插入PLGA的基质内,制备成PLGA.PEI共聚物PI上A.40K.PEI,然后胶囊化包裹针对荧光素酶的siRNA。结果显示:siRNA的胶囊化包裹率为(86+4)%,所形成的PI。GA.40K.siRNA.PEI纳米粒径为230—270am,‘电位一18—15

mV。

和乳腺癌细胞系MDA.MB.453的哑系MDA.Kb2细胞一起孵育30min,共聚物的细胞摄取率是单纯PLGA的2倍多.24h内siRNA的爆破释放占30%。

15

d内siRNA缓慢持续释放达到70%。共聚物纳米

万方数据

粒与鼠乳腺癌细胞EMT.6G/L和MDA.Kb2细胞一起孵育24h和72h。并和对照组相比。癌细胞的荧光索酶表达明显降低,效果持续超过3d。4.5.二甲基噻唑.3.羧基甲氧基苯.4.磺苯基.2H.四唑盐(MTS)方法检测证实,所用剂量范围的共聚物无细胞毒性。Katas等115I用自动乳化扩散法制备成PLGA纳米粒,然后表面吸附B.PEI

25

ku。因为PLGA分

子末端的羧基团容易与B.PEI的胺基团通过静电相互作用而结合。所形成的PLGA.PEI共聚物粒径大小为(97±2)一(117±5)nm,其表面电荷为(29.4±0.7)一(34.7±1.0)mV;当N/P比值为20时,共聚物能够完全包裹针对pGL3荧光素酶的siRNA(基因序列正义链5_-CUU

ACGCUGAGUACUUCGATT..一,

反义链3_-TYGAAU

GCGACUCAUGAAGCU.5

PLGA.PEI聚合物包裹的siRNA和HEK.293细胞一起孵育24h,基因沉默效率高达87%~99%,而siRNA/PEI的基因沉默效率为29%(N/P=10),2者差别有统计学意义(P<0.01);而且聚合物的基因沉默效果明显优于商品化的制剂Lipofeetamine2000。2者的差别有统计学意义(P<0.05o但是,PLGA.PEI聚合物包裹的siRNA和CHO—KI一起孵育,只观察到15%.54%的基因沉默效果,说明PLGA.PEI共聚物包裹的siRNA所诱导的基因沉默具有细胞种属的差异。甲基噻唑基四唑(methyl

thiazolyl

tetrazolium,M1Tr)细胞毒性试验表明:2种

细胞系和PLGA—PEI共聚物一起9呼育24h,活细胞

死亡约15%~25%,呈相对的细胞低毒性。Murata等41I

用双乳化干燥法制备分子量为14.4ku的PLGA(75:25)与B.PEI

25

ku共聚物,包裹针对鼠VEGF

的siRNA,siRNA的基因序列正义链5’.CGA

UGA

AGCCCUGGAGUGC

dTdT.3’,反义链5’.GCA

CUCCAGGGCUUCAUCG

dTdT-3’。扫描电镜显示

PLGA的粒径大小为3545斗m,PLGA对siRNA的包裹率为48.6%。而PLGA.PEI共聚物的包裹率为80.3%。磷酸盐缓冲液释放实验表明:PLGA和PLGA.PEI在最初爆破释放20%一30%包裹的siRNA后.均町缓慢持续释放siRNA长达28d之久;但后者的爆破释放以及后来的持续释放速度呈降低趋势,提示PE!共聚物可以起到长效释放siRNA的作用。扫描电镜还显示了缓慢释放siRNA过程中PLGA逐渐从形变到分解的形态学变化过程。与小

鼠腹水肉瘤细胞S.180一起孵育12h,ELISA检测

显示,2种载体作用下细胞分泌的VEGF的抑制率分别为74.8%±5.5%和63.2%±8.4%。S.180细胞雌鼠皮下移植瘤模型实验表明。6d以内.对照组的肿

5.3

43%。为了提高siRNA的胶囊化包裹效果,Patil等1141

48

垦匪生丝医堂墨矍壅查!Q!!生!旦箜丝鲞笙!塑!坐!!也趔垦韭:&地垫!!:!型:丝盟!:!

瘤体积增加明显,2组siRNA的肿瘤体积增加明显抑制。直到22d,就肿瘤体积而言。对照组较2组siRNA者明显增加,PLGA-PEI组约为PLGA组的协,约为对照组的1110。6展望

PEl胶囊化包裹siRNA的能力依赖于分子量、分支程度、N/P值等,分子量高者胶囊化效能更强,但细胞毒性也增加,释放siNRA时阻力相应增加。

PEI

FM25.LMW胶囊化siRNA的细胞毒性低,可长

期冷冻保存,复苏后能保持siRNA的生物活性,使用方便。添加佐剂后形成的共聚物能够增强siRNA

的稳定性和生物活性,降低细胞毒性。相信随着研

究的不断深入,更加高效、低毒或无毒型的PEI共聚物会成为理想的siRNA载体。理想siRNA载体应

符合以下条件:①生物相容性和可降解性。②无细胞毒性。③靶向性。④胶囊化的siRNA性能稳定。⑤能够释放出有完全生物活性的siRNA。

文献

MoazedD.SmallRNAs

in

transcriptional

gene

silencingandgenome

defence{J1.Nature,2009.457(7228):413-420.【21

CastanottoD,RossiJJ.111epromises

andpitfallsofRNA interference-

based

therapeutics{J].Nature,2009。457(7228):426-433.

Yl('ParkTG.siRNAdelivery

systems

for

cancer

treatme,t[J].

kdvDrugDeliv

Rev.2009.61(10):850-862.

E,KawataE,Maekawa

T.Future

prospect

of

RNA

interferenceforcancer

therapies[J].CurtDrugTargets,2010,ll(3):

345.360.

DM,PalliserD.LiebermanJ.11lesilent

treatment:

siRNAsa8smallmolecule

dm—J1.GeneTher,2006,l3《6):541—552.

WhiteheadKA,LangerR,AndersonIX;.Knockingdownbarriers:

advancesinsiRNAdelivery[J].NatRevDrugDiscov,2009.8(2):129-

138.

Lei ruing,ShenYu.Overcomingobstacles

to

developeffectiveand

safesiRNAtherapeutics[J].Expert

OpinBiolTiler.2009,9(5):609-

619.

FougemllesAR.Deliveryvehiclesforslltu山interferingRNAin

vivolJl.HumGeneTher'2008,19(2):125—132.

H,ParkTG.Self.-crosslinkedandreduciblefusogenlcpeptides

forintracellulardehveryofsiRNAIJLBiopolymers,2008.89(Io):881-

888.

Kim

WJ.Kim

SW.EfficientsiRNAdelivery诵t.Inotpviralpolymericvehicles[J].PharmRes.2009.26(3):657-666.

lJDePaulanBentleyMV.Mahato砒Hydrophobizationandhioconjuga

tion

fore『lIIalIcledsiRNAdeliveryand

targetingiJ].RNA。2007.13(4):

43l_456.

Pill6JY,LiHong.BlotE.ela1.Intravenousdeliveryofanti—BhoA

smallinterferingRNAloadedin

nanoparticlesofchitosan

in

mice:

safety.andefficacy

in

xenografted

aggressive

breast

cancerffl.Hum

Genen”r.2006.17(10):1019.1026.

UL’LiuXiu-do-lg.ela1.RNAinterference

in

万方数据

vitro

and

invivo

usinganovelchitnsan/siRNAnanoparticle

system

[J1.MolTher,2006,14(4):476-.484.

【14】PatilY.PanyamJ.PolymericnanoparticlesforsiRNAdeliveryand

genesilencin¥{j].IntJPharn【I.2009.367(1-21:195 203.【15】KatasH,CevherE,AlparHO.Preparationofpolyethyleneimine

incorporatedpoly(D.L-lactide—co glycolide)nanoparticlesby

spontaneousemulsiondiffusionmethodforsmallintederingRNAdeliverylJJ.IntJPharm.2009,369(1 2):144一154.

【16】NimeshS,ChandrsR.Polyethyleniminenanopardcles鹊anefficient

in

vitrosiRNAdeliverysystem[J].EurJPharmBiophann.2009,73(1):

43_49.

【l7lGaryDJ,PurlN,W∞YY.Polymer-basedsiRNAdelivery:.perspectives

on

thefundamentalandphenomenologicaldistinctionsfrompoly-

mer-baaedDNAdelivery[J].JControl

Release,2007,121(1-2):诈

73.

【181MalekA,CzubaykoF,AignerA.PEGgraftingofpolyethylenimine

(PEI)exertsdifferenteffectson

DNAtrandectionandsiRNA.

inducedgenetargeting

efficacy[J].JDrug

Target,2008,16(2):l肄

139.

【19】Urban-KleinB,WerthS,AbuharbeidS.eta1.RNAi—mediated

gene-

targeting

throughsystemicapplicationofpolyethylenimine(PEI)-

complexedsiRNAin

vivo{J1.GeneTher,2005,12(5):461-466.

【20】HobeIS.PrimRMalekA,eta1.PolyethyleniminePEiP25-I』MW

allowsthelong term

storage

of

frozen

complexes

a8

fullyactive

reagents

insiRNA mediated

gene

targetingandDNAdelivery【J】.

EurJPharm

Biophann.2008.70(1):29-41.

【21】KimSH.JeongJH,Lee

SH,et

a1.Localand

systemic

deliveryof

VEGFsiRNAusing

polyelectmlytecomplexmicellesforeffective

treatmentof

cancer[J1.JControlRelease,2008.129(2):107一116.

【22】BeussifO,Lezoualc。hF,ZantaMA.eta1.Aversatilevectorfor

geneandoligonucleotidetransfer

into

cellsincultureandin

viVO"

polyethylenimine[J].ProcNatlAcadSciUSA,1995,92(16):7297

7301.

【23】MaoShi—rui,NeuM,GennershausO.eta1.Influenceofpolyethylene

glycolchainlength

on

thephysicochemicalandbiological

properties

ofpoly(ethyleneimine) gr幽 poly(ethyleneglyc01)blockcopolymed

SiRNA

polyplexes[J].BioconjugChem.2006.17(5):1209-1218.

【24】BreunigM,HozsaC.LungwitzU,eta1.Mechanistic

investigation

of

poly(ethyleneimine)-basedsiRNAdelivery:disulfidebondsboost

intracellularreleaseofthecargolJl.JControlRelease,2008.130(1):57-63.

GraysonACDoodyAM.PutnamD.Biophysicalandstructuralcharac-

terization

ofpolyethylenimine-mediatedsiRNAdelivery

in

vitro[Jl。

PhannRes.2006.23(8):1868-1876.

WerthS,Urban—KleinB.DaiLi ge,eta1.AlowmolecularweigIIt

fractionofpolyethylenimine(PEI)d/splaysincreasedh-ansfection

efficiency

of

DNAandsiRNAinfresh

or

lyophilizedcomplexeslJl.】

ControlRelease.2006.112(2):257 270.

BieberT.ElsaszerHEPreparationof

lowmolecular

weigllt

polyethylenimineforefficientcelltranafecfion[J].Biot。chniques,2001,30(1}:74-77.8皿71.

MoghimiSM.SymondsP.MurrayJC,ela1.At∞越日gepoly(ethylen—

intine)-mediatedcytotoxicity:implicationsforgenetrander/therapyIJI.MolTher,2005.1l(6):990-995.A.Gene

silencingthroughRNAinterference(RNAi)in

vivo:

strategies

based∞thedirectapplication0fsiRNAsf几JBioteclmok

2006.12411):12-25.

PrakashTP,AllersonC凡DandeP’elaLPositionaleffectofchemical

【11

【3】0h【4】Ashihara【5】Bykxhoorn【6Jf7】Li[251【8】de

19】Mok【2611101

1271fl【281【29】Aigner

1121113】Howard队Rahbek【301

垦堕生丝堕堂-王墨壁查2Q!!璺至旦箜丝堂箜!塑!坐』Bi!璺鲴垦!g:坠!型!盟垫!!,!!!:≥生坠:!

modificationsonshortinterferenceRNAactivity

in

49

mananaliancells

【36】KimSH.JeongJH,LeeSH.eta1.PEGconjugatedVEGFsiRNAfor

anti-angiogenic

129.

gene

fJJ.JMedChem,2005,48(13):4247.4253.【311ChiuYL,RanaTM.RNAi

in

therapy[J].JCantrolRelease,2006,l16(2):123一

humancells:basicstructuraland

functionalfeaturesofsmallinterfering549.561.

RNA[J].MolCell.2002,10(3):a1.Tolerancefor

【371Ks_banovVA.KabanovAV.Interpolyelectrolyteandblock

complexesfor

gene

ionomer

delivery:physico-chemicalaspects[j].AdvDrug

【32】Amarzguioui

M.HolenT’BabaieE,et

in

mutations

DelivRev,1998,30(1-3):49—60.

andchemicalmodifications

siRNA[J].NucleicAcidsRes,2003,【38】AsteteCE,SabliovCM.SynthesisandcharacterizationofPI£A

nanoparticles[J1.JBiomaterSciPolymEd.2006,17f3):247—289.【39】AthanasiouKA。NiederanerGG,AgrawalCM.Sterilization,toxicity,

biocompatibilityandclinicalapplicationsofpolylacticacid/

polyglycolicacid

l(2):589—595.

ofsmallinterferingRNAsandshorthairpin

【33】HarborthJ,ElbashirSM.VandenburghK,eta1.Sequence,chemical.

andstructural

variation

RNAsandtheeffectonmammaliangenesilencing[J].AntisenseNucleic

AcidDrugDev.2003,13(2):83 105.

copolymers[J].Biomaterials.1996,17(2):93—102.

ofPI正;A-basednanotechnoiogy

【40】LUJian ming,WangXin wen.Matin—MullerC.eta1.Currentadvancc%

of

PEGylation

on

【34】VeronaseFM,MereA.ne

impact

biologicalinresearchandclinical

applications

therapi叫j1.BioDrugs,2008,22(S):315 329.

【351LeeSH.KimSH,ParkTG.IntracellularsiRNAdelivery

polyelectrolytecomplexmicelles

IJl.ExpertRevMolDiagn.2009.9(4):325 341.

systemusing

pm删from

【4llMurataN,TakashimaY.ToyoshimaK,eta1.Anti-tumoreffectsof

anti—VEGFsiRNAencapsulatedwithPLGAmicrospheresJControl

in

VEGFsiRNA—PEG

mice{J1.

conjugateand

cationic

fusogenic

peptide[J].BiochemBiophysRes

Release,2008,126(3):246 254.

(收稿13期:20lO.09.12)

Commun。200r7.357(2):5Il-516.

(上接第33页)

较低的温度下在碱性介质中与氯乙酸进行反应将羧甲基引入在壳聚糖的O位I乳IOl,但在上述反应条

胀.50%NaOH

30

mL于一10℃碱化12h,氯乙酸/甲

壳素(摩尔比)=4.5,在50℃反应4h.脱乙酰化在90℃下反应1.5h,反应时加入少量硼氢化钠。

通过上述方法可以得到3种水溶性良好的羧甲基壳聚糖,为以后更深一步的研究提供了科研基础和实验依据。

件下仍会有少量N.位羧甲基壳聚糖产物,特别是为

了获得具有较高取代度的产物或反应时间较长时N位产物的出现会较明显。笔者根据文献fll】提出的方法:利用甲壳素C:位上的乙酰基保护N上的H不被氯乙酸中的羧甲基所取代,采用先取代再脱乙

酰的方法,制取了单纯的C。位0上取代的CMC。实

验发现:强碱条件下,提高氯乙酸的量有利于取代的进行。甲壳素在50%NaOH和100℃水浴条件下反应I一2h脱乙酰度能达75%。为了防止分子主链发生断裂.加入少量硼氢化钠以保护.避免了提高碱

【l】王小红.马建标.甲壳索,壳聚糖及其衍生物的应用【J】.功能高分

子学报,1999,12(2):197.202.

【21覃昱.裴困献.甲壳索及其衍生物在组织工程研究中的应用【J1.

中国海洋药物.2002.2lf3):54.56.【31蒋挺大.壳聚糖IM】.北京:化学工业出版社.200l:12.32.【4】陈夫山。谢来苏.用胶体滴定法测定聚合物的电荷【J】.中国造纸.

加Ioo.19(2):30 34.

【5】KanekoM,lnoueY.TokuraS.RefractiveIndexIncrementsof

Proteoglycan[J1.RepProgPolymPhysJpn.1984.27:759-762.【61曾德芳.马甲益,袁继租.N.0一羧甲摹壳聚糖制备工艺的优化研

究lJJ.武汉理]:大学学报.2005.27(6):J5.18.

川唐振兴.钱俊青.石陆娥.羧甲蓦壳聚糖制备工艺的研究Ⅲ.化工技

术与开发.2004.33(2):4.7.【8J

MuzzareiliRA.1iar/P.PetramloM.Solubilityand

structure

浓度和温度而造成壳聚糖分子的降解;但加入硼氢

化钠不能过多,否则不利于脱乙酰反应的进行。4结论

N,O.CMC制备的最佳工艺过程:壳聚糖5g,异丙醇溶胀,10

mol/L

NaOH溶液62.5mL在一lO℃碱

化12h.氯乙酸/壳聚糖(mol/m01)=6:l,反应温度为60℃,反应时间为5

h。

ofN

carboxymethylchitosan[J].IntJBiolMacromol,1994.16(4):177-180.【9】陈鲁生.李赢霖.0-羧甲摹壳聚糖制备条件的研究【JJ.山东师范

大学学报:自然科学版.1999.14fI):42.43.

【101邵健.杨字民.水溶性O.羧甲基壳聚糖的制备【J1.南通医学院学

报.2000.20(2):155-156.

【ll】李治,刘晓非.O.羧甲基壳聚糖抗菌性的研究【J1.日用化学工业.

2000.30(3):10-11.

(收编日期:2010-09-02)

N.CMC制备的最佳工艺过程:乙醛酸,壳聚糖

(摩尔比)=1.2,常温(20.40℃)反应2h.调节体系pH值为8一lO,分批加入10%硼氢化钠常温(20-40℃)反应2h。

O.CMC制备的最佳T艺过程:甲壳素异丙醇溶

万方数据

PEI及其共聚物的胶囊化siRNA在肿瘤基因治疗中的研究进展

作者:作者单位:

史秋生, 段友容, 杜联芳, SHI Qiu-sheng, DUAN You-rong, DU Lian-fang

史秋生,杜联芳,SHI Qiu-sheng,DU Lian-fang(上海交通大学附属第一人民医院超声科分子影像研究室,200080), 段友容,DUAN You-rong(上海交通大学肿瘤研究所药物递送研究室,200032)

国际生物医学工程杂志

INTERNATIONAL JOURNAL OF BIOMEDICAL ENGINEERING2011,34(1)

刊名:英文刊名:年,卷(期):

参考文献(41条)

1.Murata N;Takashima Y;Toyoshima K Anti-tumor effects of anti-VEGF siRNA encapsulated with PLGAmicrospheres in mice[外文期刊] 2008(03)

2.Lü Jian-ming;Wang Xin-wen;Marin-Muller C Current advances in research and clinical applications ofPLGA-based nanotechnology 2009(04)

3.Athanasiou KA;Niederauer GG;Agrawal CM Sterilization,toxicity,biocompatibility and clinicalapplications of polylactic acid/polyglycolic acid copolymers[外文期刊] 1996(02)

4.Astete CE;Sabliov CM Synthesis and characterization of PLGA nanoparticles[外文期刊] 2006(03)5.Kabanov VA;Kabanov AV Interpolyelectrolyte and block ionomer complexes for gene delivery:physico-chemical aspects[外文期刊] 1998(1-3)

6.Kim SH;Jeong JH;Lee SH PEG conjugated VEGF siRNA for anti-angiogenic gene therapy[外文期刊]2006(02)

7.Lee SH;Kim SH;Park TG Intracellular siRNA delivery system using polyelectrolyte complex micellesprepared from VEGF siRNA-PEG conjugate and cationic fusogenic peptide[外文期刊] 2007(02)8.Veronese FM;Mero A The impact of PEGylation on biological therapies 2008(05)

9.Harborth J;Elbashir SM;Vandenburgh K Sequence,chemical,and structural variation of smallinterfering RNAs and short hairpin RN As and the effect on mammalian gene silencing[外文期刊]2003(02)

10.Amarzguioui M;Holen T;Babaie E Tolerance for mutations and chemical modifications in a siRNA[外文期刊] 2003(02)

11.Chiu YL;Rana TM RNAi in human cells:basic structural and functional features of small interferingRNA 2002(03)

12.Prakash TP;Allerson CR;Dande P Positional effect of chemical modifications on short interferenceRNA activity in mammalian cells[外文期刊] 2005(13)

13.Bieber T;Elsasser HP Preparation of a low molecular weight polyethylenimine for efficient celltransfection 2001(01)

14.Werth S;Urban-Klein B;Dai Li-ge A low molecular weight fraction of polyethylenimine (PEI)

displays increased transfection efficiency of DNA and siRNA in fresh or lyophilized complexes[外文期刊] 2006(02)

15.Grayson AC;Doody AM;Putnam D Biophysical and structural characterization of polyethylenimine-mediated siRNA delivery in vitro[外文期刊] 2006(08)

16.Breunig M;Hozsa C;Lungwitz U Mechanistic investigation of poly (ethylene imine)-based siRNAdelivery:disulfide bonds boost intracellular release of the cargo[外文期刊] 2008(01)17.Mao Shi-rui;Neu M;Germershaus O Influence of polyethylene glycol chain length on the

physicochemical and biological properties of poly(ethylene imine)-graft-poly(ethylene glycol) blockcopolymer/SiRNA polyplexes[外文期刊] 2006(05)

18.Aigner A Gene silencing through RNA interference (RNAi) in vivo:strategies based on the directapplication of siRNAs[外文期刊] 2006(01)

19.Moghimi SM;Symonds P;Murray JC A two-stage poly(ethylenimine)-mediated cvtotoxicity:implicationsfor gene transfer/therapy[外文期刊] 2005(06)

20.Boussif O;Lezoualch F;Zanta MA A versatile vector for gene and oligonucleotide transfer intocells in culture and in vivo:polyethylenimine[外文期刊] 1995(16)

21.Kim SH;Jeong JH;Lee SH Local and systemic delivery of VEGF siRNA using polyelectrolyte complexmicelles for effective treatment of cancer[外文期刊] 2008(02)

22.Hobel S;Prinz R;Malek A Polyethylenimine PEI F25-LMW allows the long-term storage of frozencomplexes as fully active reagents in siRNA-mediated gene targeting and DNA delivery 2008(01)23.Urban-Klein B;Werth S;Abuharbsid S RNAi-mediated genetargeting through systemic application ofpolyethylenimine (PEI)-complexed si RNA in vivo[外文期刊] 2005(05)

24.Malek A;Czubayko F;Aigner A PEG grafting of polyethylenimine (PEI) exerts different effects onDNA transfection and siRNAinduced gene targeting efficacy[外文期刊] 2008(02)

25.Gary DJ;Puri N;Won YY Polymer-based siRNA delivery:perspectives on the fundamental andphenomenological distinctions from polymer-based DNA delivery[外文期刊] 2007(1-2)

26.Nimesh S;Chandra R Polyethylenimine nanoparticles as an efficient in vitro siRNA delivery system2009(01)

27.Katas H;Cevher E;Alpar HO Preparation of polyethyleneimine incorporated poly (D,L-lactide-co-glycolide) nanoparticles by spontaneous emulsion diffusion method for small interfering RNA delivery[外文期刊] 2009(1-2)

28.Patil Y;Panyam J Polymeric nanoparticles for siRNA delivery and gene silencing 2009(1-2)29.Howard KA;Rahbek UL;Liu Xiu-dong RNA interference in vitro and in vivo using a novelchitosan/siRNA nanoparticle system[外文期刊] 2006(04)

30.Pillé JY;Li Hong;Blot E Intravenous delivery of anti-RhoA small interfering RNA loaded innanoparticles of chitosan in mice:safety and efficacy in xenografted aggressive breast cancer2006(10)

31.De Paula D;Bentley MV;Mahato RI Hydrophobization and bioconjugation for enhanced siRNA deliveryand targeting[外文期刊] 2007(04)

32.Kim WJ;Kim SW Efficient siRNA delivery with non-viral polymeric vehicles[外文期刊] 2009(03)33.Mok H;Park TG Self-crosslinked and reducible fusogenic peptides for intracellular delivery ofsiRNA[外文期刊] 2008(10)

34.de Fougerolles AR Delivery vehicles for small interfering RNA in vivo[外文期刊] 2008(02)

35.Li Lei-ming;Shen Yu Overcoming obstacles to develop effective and safe siRNA therapeutics[外文期刊] 2009(05)

36.Whitehead KA;Langer R;Anderson DG Knocking down barriers:advances in siRNA delivery 2009(02)37.Dykxhoom DM;Palliser D;Lieberman J The silent treatment:siRNAs as small molecule drugs[外文期刊]2006(06)

38.Ashihara E;Kawata E;Maekawa T Future prospect of RNA interference for cancer therapies[外文期刊]2010(03)

39.Oh YC Park TG siRNA delivery systems for cancer treatment[外文期刊] 2009(10)

40.Castanotto D;Rossi JJ The promises and pitfalls of RNA-interferencebased therapeutics[外文期刊]2009(7228)

41.Moazed D Small RNAs in transcriptional gene silencing and genome defence[外文期刊] 2009(7228)

本文链接:/Periodical_gwyx-swyxgc201101011.aspx

本文来源:https://www.bwwdw.com/article/c26e.html

Top