IEF-SDS PAGE双向电泳技术
更新时间:2024-07-08 02:40:01 阅读量: 综合文库 文档下载
双向电泳
一、材料
样品:人神经母细胞瘤细胞SK-N-SH
二、试剂
SDS-PAGE所需试剂 1、30%Acry-Bis (w/v)
29.2%Acry29.2g
0.8%Bis0.8g
加水至100ml溶解,棕色试剂瓶4℃贮存,PH<7,数月后重配
2、10%的SDS贮液 (w/v)
RT保存,因SDS在4℃会析出
3、Tris-HCl buffer
①1.5M的PH8.8的Tris-HCl buffer——分离胶buffer
100ml含Tris18.171g,加DDW至80ml,用浓HCl调PH8.8,再定容至100ml,4℃保存
②1.0M的PH6.8的Tris buffer——浓缩胶buffer:
50ml 含Tris6.057g,加DDW至40ml,用浓HCl调PH6.8,再定容至50ml,4℃保存
4、TEMED
以游离碱形式发挥作用,催化AP形成自由基,故PH较低时,聚合反应受抑制,易吸湿,被氧化,从无色变为黄色,故因密闭4℃保存
5、10% AP
1g的AP溶于10ml水中,4℃保存,隔周新鲜配置
6、PH8.3 电泳缓冲液1L,RT保存
Tris碱
Gly(25.05) SDS
加水至1L,可不调PH
7、甘油液4℃ 31ml 丙三醇 5.5ml DDW 25.5ml
3g 14.4g 1g
终浓度 250mM 250mM 0.1% (192mM)
8、考马斯亮蓝染液CBB (RT,50%甲醇+冰醋酸+R250)
总体积
100ml 45ml 45ml 10ml 0.25g
终浓度 45% 10% 0.1%
甲醇Methanal
水 冰醋酸
R250
改进:(0.12% G250, 10% (NH4)2SO4, 10% H3PO4, 20% 甲醇)
100ml H2O+100ml H3PO4(先混匀,产热的)+100g粉末状(NH4)2SO4(边搅拌边加)先溶解,然后加入1.2g G250再溶解(不能真正溶解),定容至800ml,边搅拌边加200ml甲醇,终体积1000ml(可至少保存半年)。
9、脱色液
7.5ml的冰醋酸
5ml的甲醇 加水至100ml
或者用含有少量NaCl的清水进行脱色
IEF 试剂
10、一向裂解液Lysis buffer ,-80℃贮存
总体积 urea
硫脲(thiourea) CHAPS DTT
Amphylyte PH3~9.5 Tris-base
EGTA (100mM)
临用前加
PMSF(100mM)
MW 60.06 76.12 614.89 154.25 121.14
10ml 4.2042g 1.5224g 0.4g 0.108 200μl 0.048456g 400μl 200μl
终浓度 7M 2M 4% 70mM 40mM 4mM 2mM
11、一向管胶覆盖液 Overlay buffer ,-80℃贮存 Lysis buffer 稀释一倍即可
12、上下槽电泳液(现配)
上槽阴极液(20mM的NaOH):10ml 1M的贮液加水至500ml
下槽阳极液(10mM的H3PO4):5ml 1M的贮液加水至500ml 注:若分离碱性蛋白,上下槽电极液互换
13、平衡缓冲液:一向管胶之后的balance buffer
2% SDS 10%甘油
5%β-巯基乙醇/DTT 62.5mM的Tris-HCl (PH6.8) 微量溴酚蓝
SDS 甘油
β-巯基乙醇/DTT
Tris-base 溴酚蓝 浓HCl调PH6.8
14、固定液
50%的甲醇+10%的乙酸
15、一向管胶配方
尿素 DDW 10% NP-40 30?ry-Bis 甘油液
PH4~6
Amphylyte
PH6~8
PH3~9.5 10%APS TEMED 100ml 2g 10ml 5ml/1.54g 0.757125 微量
200ml 4g 20ml 10ml/3.08g 1.51425 微量
终浓度 2% 10% 5% 62.5mM
14~15cm*4 1.152g 160μl 160μl 400μl 744μl 18μl 18μl 36μl 3.2μl 0.8μl 14~15cm*8 2.304g 320μl 320μl 800μl 1488μl 36μl 36μl 72μl 6.4μl 1.6μl
16、分离胶 40ml 18*16*0.1cm (1块)
胶浓度 DDW 30% Acry-Bis 1.5MPH8.8 Tris 10% SDS 10% AP TEMED 12.5% 12.4ml 16.8ml 10ml 400μl 400μl 16μl 12.8% 12.13ml 17.07ml 10ml 400μl 400μl 16μl 13% 11.87ml 17.33ml 10ml 400μl 400μl 16μl
17、5% 浓缩胶 3.2ml 18*1.5*0.1cm (一块)
H2O
1.84ml 0.536ml 0.8ml 0.032ml 24μl 4μl
30% Acry-Bis 1M PH6.8 Tris 10% SDS 10% AP TEMED
三、实验步骤
蛋白质样品制备
1、 收集冻存的细胞至1.5ml以称重的eppendof管中 2、 离心 1000rpm 5min
3、 弃上清,吸干液体后称重,得到细胞样品质量
4、 按每μg/3μl的量加入lys液和1/10的ase 5、 混匀后冰浴超声40min~50min
6、 4℃放置30min~1h使细胞充分裂解,蛋白溶解 7、 临上样前0~2℃266g/min 离心30min 8、 测蛋白浓度,分装
第一向:等电聚焦电泳(IEF)
1、 管胶的配置:按照试剂所示将各成分溶解于5或10ml的玻璃小烧杯中,搅拌至urea
完全溶解,最后加入TEMED&APS轻轻搅拌混合均匀(注意搅拌温度不能超过脲的分解温度37℃)。
2、 灌胶:将上次做完2D的1st管泡酸。使用前捞出,自来水/蒸馏水冲洗,80℃烘干
备用(确保管内干燥无水分)。APS新购一瓶12ml,先分装1ml至离心管中,原瓶用封口膜封好(体积占总胶体积的2%)。在玻管14cm处标记,底部用封口膜封住,管子凉后用注射器罐胶,然后用正丁醇封顶,待胶凝。
3、 预电泳:配置上下槽电泳缓冲液,上槽20mM的NaOH,下槽10mM的H3PO4,磷
酸先倒入下槽,NaOH待用(若分离碱性蛋白,上下槽电极液互换)。吸出管中正
丁醇,用DDW洗3次,拆除底部封口膜,用少量磷酸湿润管底以防气泡产生。将管安装至电泳槽上,上槽加入10μl覆盖液+NaOH至顶部溢出,NaOH倒入上槽,安装好电泳槽,开始预电泳,200V 15min ,300V 30min ,400V 45min 。 注:管子、平皿做好标记,表明处理组和对照组。
4、 IEF电泳:预电泳结束后,将上槽电极缓冲液倒出,吸出管中上部液体,DDW洗3
次,上样:40μl样品+10μl覆盖液+NaOH至溢出,倒回NaOH,安装好电泳槽,打开电源开始电泳,600V 14~18h ,800V 1~2h ,1000V 30min~1h 。
5、 下胶及平衡:等电聚焦结束后,小心取下胶管洗净玻管表面电极液,将胶条从管中
脱出,DDW洗数次后,balance buffer 中平衡2次,10~15min/次(平衡前,也可用
12%的TCA固定胶条30min以上,清洗后平衡)。
第二向:SDS-PAGE
1、 凝胶的制备:同SDS-PAGE,不用插Telfon梳子。
2、 上样及电泳:同时拆掉二向胶的夹子和底部胶布,用针头小心将平衡后的一向管胶
移至平板上,再转移至二向胶的顶部,用0.5琼脂糖(用PH8.3的电泳缓冲液配置)
封好,安装好电泳槽,倒入下槽电泳缓冲液,移至4℃冰箱中,带琼脂糖完全凝固(以防顶部的agorose未凝,buffer将管胶冲出)之后加入上槽电泳buffer,初始电压60V,待溴酚蓝跑出琼脂糖完全进入分离胶之后,将电压升至120V。下同PAGE。
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