AFLP简介方法、及所用引物
更新时间:2023-08-06 12:43:01 阅读量: 实用文档 文档下载
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AFLP(扩增片段长度多态性)分子标记实验
扩增片段长度多态性Amplified fragment length polymorphism(AFLP)是在随机扩增多态性(RAPD)和限制性片段长度多态性(RFLP)技术上发展起来的DNA 多态性检测技术,具有RFLP技术高重复性和RAPD技术简便快捷的特点,不需象RFLP分析一样必须制备探针,且与RAPD标记一样对基因组多态性的检测不需要知道其基因组的序列特征,同时弥补了RAPD技术重复性差的缺陷。同其他以PCR为基础的标记技术相比,AFLP技术能同时检测到大量的位点和多态性标记。此技术已经成功地用于遗传多样性
研究,种质资源鉴定方面的研究,构建遗传图谱等。
其基本原理是:以PCR(聚合酶链式反应)为基础,结合了 RFLP、RAPD的分子标记技术。把DNA进行限制性内切酶酶切,然后选择特定的片段进行PCR扩增(在所有的限制性片段两端加上带有特定序列的“接头”,用与接头互补的但3-端有几个随机选择的核苷酸的引物进行特异PCR扩增,只有那些与3-端严格配对的片段才能得到扩增),再在有高分辨力的测序胶上分开这些扩增产物,用放射性法、荧光法或银染染色法均可检测之。
一、 实验材料
采用青稞叶片提取总DNA。
二、 实验设备
1.美国贝克曼库尔特CEQ8000毛细管电泳系统,
2.美国贝克曼库尔特台式冷冻离心机,
3.美国MJ公司PCR仪,
4.安玛西亚电泳仪等。
三、 实验试剂
1. 试剂:请使用高质量产品,推荐日本东洋坊TOYOBO公司的相关产品。
DNA提取试剂盒;
EcoRI酶,MseI酶,T4连接酶试剂盒;
Taq酶,dNTP, PCR reaction buffer;
AFLP 引物;
琼脂糖电泳试剂:琼脂糖,无毒GeneFinder核酸染料替代传统EB染料;
超纯水(18.2MΩ·cm)
2.其他实验需要物品
微量移液枪(一套)及相应尺寸Tip头,PCR管,冰浴等。
四、 实验流程
1、 总DNA提取
使用DNA提取试剂盒提取植物基因组DNA,通过紫外分光光度计检测或用标准品跑胶检测。一般来说,100ng的基因组DNA作为反应模板是足够的。
2、 EcoR1酶消化(20ul体系/样品)
3、 Mse1酶消化(20ul体系/样品)
5、 预扩增(20ul体系/样品)
sample 4ul
Primer(Mse1/EcoR1) 1ul
AFLP Core Mix 15ul
* AFLP Core Mix 配方:
ddH2O 13.8ul
MgCl2 1.6ul
dNTPs(2.5mM) 1.6ul
Taq酶(1U/ul) 1ul
10×Buffer 2ul
预扩增程序:
6、选择性扩增(20ul体系/样品)
sample>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>> >> 4ul(预扩增产物稀释20倍) Primer(Mse1-XXX/EcoR1-XXX)> >1ul>>>>
AFLP Core Mix>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>> >> 15ul
选择性扩增程序:
7、产物电泳检测
上样液:Loading Buffer>>>>>>> 20ul
Size standard-600>>>>>>>>>>>>>>>>> > 0.2ul
Sample>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>> >>> 3ul(稀释10倍)
四、实验结果与分析
本实验使用贝克曼库尔特(BeckmanCoulter)公司CEQ8000遗传分析系统,运用先进的荧光标记技术和毛细管电泳分离技术进行实验,扩增产物在高分辨率毛细管中电泳分离,采用激光激发荧光采集数据,灵敏度极高,电泳结果通过软件自动统计分析并转换成“0、1”矩阵,便于对结果进一步深入分析研究,整个电泳、数据采集和数据分析过程由软件来控制完成,最大程度避免了人工操作造成的误差,提高了数据的可靠性。
产物电泳数据采集在CEQ8000遗传分析系统上进行(图1),得到的数据(图2)用第三方软件再进一步统计分析。
图 2 AFLP“0、1”矩阵图
AFLP操作流程图:
>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>>> 图1> AFLP分子指纹图谱
附录1:常用的8对AFLP选择性扩增引物:
E-AGG:>>> 5-GACTGCGTACCAATTCAGG-3
E-ACG:>>> 5-GACTGCGTACCAATTCACG-3
E-AAC:>>> 5-GACTGCGTACCAATTCAAC-3
E-ACA:>>> 5-GACTGCGTACCAATTCACA-3
E-AGC:>>> 5-GACTGCGTACCAATTCAGC-3
E-ACT:>>> 5-GACTGCGTACCAATTCACT-3
E-AAG:>>> 5-GACTGCGTACCAATTCAAG-3
E-ACC:>>> 5-GACTGCGTACCAATTCACC-3
M-CAA:>> 5-GAT GAG TCC TGA GTA ACAA-3
M-CAC:>> 5-GAT GAG TCC TGA GTA ACAC-3
M-CAG:>> 5-GAT GAG TCC TGA GTA ACAG-3
M-CTA:>> 5-GAT GAG TCC TGA GTA ACTA-3
M-CAT:>> 5-GAT GAG TCC TGA GTA ACAT-3
M-CTC:>> 5-GAT GAG TCC TGA GTA ACTC-3
M-CTG:>> 5-GAT GAG TCC TGA GTA ACTG-3
M-CTT:>> 5-GAT GAG TCC TGA GTA ACTT-3
附录2:AFLP传统垂直板电泳(银染法检测)介绍:
>>> 原理与方法同前,区别:1.选择性扩增引物不带荧光标记;2.电泳方法不同,采用测序胶垂直板电泳;
3.电泳结果采用银染法,比较直观,但条带的统计与分析全人工化,工作量大,银染法灵敏度比荧光标记法要低。
示例:下图为玉米(maize)DNA的AFLP图谱。
Panel A: AFLP fingerprints of control maize DNA using EcoR1 primer E-AGG with eight Mse1 primers: M-CAA (1), M-CAC (2), M-CAG (3), M-CAT (4), M-CTA (5), M-CTC (6), M-CTG (7), and M-CTT (8). Panel B: AFLP fingerprints of control maize DNA using Mse1 primer M-CAG with eight EcoR1 primers: E-AAC (a), E-AAG (b), E-ACA (c), E-ACT (d), E-ACC (e), E-ACG (f), E-AGC (g), and E-AGG (h).
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