整个基因克隆实验规程完整
更新时间:2023-05-06 05:19:01 阅读量: 实用文档 文档下载
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整个基因克隆实验规程
完整
Document serial number【KK89K-LLS98YT-SS8CB-SSUT-SST108】
一、组织总RNA 的提取
相关试剂:T rizol;氯仿;苯酚;异丙醇;75%乙醇;RNase-free水
相关仪器:制冰机;液氮&研钵/生物样品研磨仪;高速离心机;移液器(1ml、200μl、
100μl/50μl);涡旋振荡仪;恒温金属浴。
相关耗材:解剖工具,冰盒,离心管,离心管架,吸头(1ml,200μl/300μl),一次性手套,实验手套。
实验步骤
1.取暂养草鱼,冰上放置一段时间,然后解剖,剪取肠道50~100mg,放入研钵中,加入液氮迅
速研磨,然后加入1ml 预冷TRIzol试剂,充分研磨至无颗粒物存在。
2.转移到离心管中,室温放置5min,使细胞充分裂解;
3.按1ml Trizol加入200μl氯仿,盖上盖子,迅速充分摇匀15s,然后室温放置3min;
4.4℃,,12000g 离心15min;
此时混合物分为三层,下层红色的苯酚氯仿层,中间层和上层无色水相;RNA存在于无色水相中;
5.小心吸取上清液,千万不要吸取中间界面,否则有DNA污染;转移至一个新的离心管,加入等
体积的异丙醇,轻轻混匀;
6.室温放置10min;4℃,,12000g 离心10min;
7.弃上清,加入1ml 75%乙醇洗涤;涡旋,悬浮沉淀;4℃,,12000g 离心5min;
8.弃上清;可以再次用75%乙醇洗涤沉淀;
9.弃上清;用移液器轻轻吸取管壁或管底的残余乙醇,注意不要吸取沉淀;室温放置5min晾干
沉淀;(RNA样品不要过于干燥,否则极难溶解)
10.沉淀中加入30μl RNase-free水,轻弹管壁,使RNA溶解。
RNA质量检测
相关试剂:溴酚蓝, TEB/TAE电泳缓冲液,溴乙锭(EB)
相关仪器:(超微量分光光度计,移液器(2.5μl 或2μl 规格,10μl规格),电子天平,电泳仪,电泳槽,凝胶成像仪,微波炉,制冰机)
相关耗材:(无菌无绒纸,吸头,离心管架,PCR管,PCR管架,锥形瓶,烧杯,一次性手套,实验手套,冰盒)
(1)RNA纯度的检测:测定其OD
260和OD
280
的值,根据其OD
260
/ OD
280
的比值,当其比值在1.9~2.1
之间,说明提取的总RNA纯度比较高,没有蛋白质和基因组的污染。
(2)RNA完整性的检测:取2μlRNA,与2μl溴酚蓝混匀,用1%的琼脂糖进行凝胶电泳,20min 后,在凝胶成像系统中观察效果。当28S与18S条带清晰,且亮度比大约是2:1时,5S条带若隐若现,而且没有其它条带时,说明完整性不错,可以用于下游逆转录实验。
二、逆转录(RNA逆转录成cDNA)
相关仪器:(PCR 仪/恒温金属浴,移液器(2.5μl 或2μl 规格,10μl 规格),100μl 冰盒,制冰机,PCR 管)
根据逆转录试剂盒(TOYOBO 公司)说明书进行,反应体系及条件如下:
试剂 使用量(μl )
Rnase Free H 2O 11.75-Y
Oligo (dT ) 1
Total RNA (<1000ng )
Y
Total Volume 12.75
65℃,5min 后,立即置于冰上。
试剂 使用量(μl )
上一步变性后RNA 溶液 12.75
5×RT Buffer 4
dNTP Mixture (各10mM )
2
Rnase Inhibitor (10U/μl )
0.25
Rever Tra Ace 1
Total Volume 20
然后放置于PCR 仪上,反应程序为: 42℃,60min ;99℃,5min ;16℃,5min 。所得cDNA 放置于-20℃保存。
三、 PCR 反应
相关仪器:(PCR 仪/恒温金属浴,移液器(2.5μl 或2μl 规格,10μl 规格),100μl 电子天平,电泳仪,电泳槽,凝胶成像仪,微波炉,冰盒,制冰机)
反应条件:95℃,预变性3min ;94℃变性30s ,55℃退火30s ,72℃延伸45s ,共35个循环;72℃延伸10min 。 反应结束后,取5μl PCR 产物,1%琼脂糖凝胶电泳检测。 试剂 使用量(μl )
ddH 2O 6.0
反转录产物 1.0
10×PCR Buffer 1.0
dNTP (10mmol/l ) 0.2
Taq 酶(1U/μl ) 0.4
Ghrelin-F (10μmol/l ) 0.4
Ghrelin-R (10μmol/l ) 0.4
MgCl 2(25mmol/l ) 0.6
Total Volume 10
四、PCR产物的分离,回收和纯化
相关试剂:胶回收试剂盒
相关仪器:(紫外照胶仪,移液器(200μl,1ml规格),离心机,恒温金属浴,涡旋混匀仪,制冰机,超微量分光光度计)
相关耗材:(切胶刀片,吸头,离心管架)
PCR反应得到目的条带后,加大反应体积,然后根据胶回收试剂盒说明书进行目的片段的回收纯化。将所得DNA贮存于-20℃。
五、目的片段与载体的连接
相关仪器:(恒温金属浴,移液器(10μl,2.5μl规格)涡旋混匀仪,制冰机)
按照连接试剂盒(TAKARA公司)说明书进行操作。
pMD-18T载体 1μl
DNA 2μl
ddH2O 2μl
然后加入5μl Ligation Mix,4℃/16℃放置过夜连接。
六、转化
相关仪器:(超净工作台,离心机,恒温培养箱,恒温摇床,恒温金属浴/水浴锅,移液器(1000μl,100μl,10μl,2.5μl规格)涡旋混匀仪,制冰机)
CaCl2法制备大肠杆菌DH5a感受态细胞
全过程冰上进行,4℃离心,无菌操作。
(1)以接种环从-80℃保存的高效转化菌种蘸取少量菌液划无抗生素平板,培养12h;
(2)挑取单菌落接种于1ml无抗生素LB培养基中,37℃剧烈震荡培养6h;
达0.4~(3)按1:100接种菌液于25ml LB液体培养基中,37℃震荡培养1.5~2h,至OD
600
0.6;(这一步非常关键,培养过度的菌液含有较多的“老”细胞,制备成感受态细胞后其接受外援DNA的能力较低,从而导致转化率降低)
(4)冰上预冷10min;然后4℃,6000rpm离心10min;
中,冰浴20min;
(6)弃上清,将细菌沉淀重新悬浮于25ml预冷的0.1M CaCl
2
(7)4℃,6000rpm离心10min,弃尽上清;
溶液重悬细菌沉淀,同时加入0.3ml预冷的(8)以1.25ml(菌液体积的5%)预冷的0.1M CaCl
2
100%甘油(甘油终浓度达15~20%),混匀后按每支100μl在冰上分装。-80℃保存备用。
连接产物转化到感受态细胞
(1)将10μl连接产物加入100μl感受态菌液中,冰上放置30min;
(2)然后放到42℃水浴锅中热激90s,再在冰上放置3min;
(3)加入890μl LB液体培养基,37℃震荡培养60min;
(4)每个培养平板中加入40μlX-gal和4μlIPTG,然后吸取100μl菌液,均匀涂布于含Amp 的LB固体培养基平板上;
(5)37℃培养箱中正放1h,待菌液被琼脂完全吸干后,倒置平板,过夜培养16h。(培养时间不宜过长,否则有卫星菌落产生)
七、菌液PCR检测
相关仪器:(PCR仪/恒温金属浴,涡旋混匀仪,移液器(10规格,1000μl规格),100μl电子天平,电泳仪,电泳槽,凝胶成像仪,微波炉,冰盒,制冰机)
在平板上挑取10~20个白色菌落,加入含有1ml Amp+LB液体培养基的1.5ml离心管中,37℃震荡培养6h。3000rpm离心3min后吸掉上层400μl上清液,短暂涡旋将沉淀打散,然后把
菌液当成模板,按上面PCR方法进行扩增,经1%琼脂糖凝胶电泳检测是否含有目的条带。挑选扩增出正确目的条带的菌液送公司测序。
附注:
主要溶液和培养基的配制
1)电泳缓冲液10×TBE:108g Tris碱,55g 硼酸,20ml 0.5M的EDTA,加入蒸馏水混匀后定容至1000ml,调节pH为8.0;
2)LB液体培养基:蛋白胨10g,酵母提取物5g,NaCl 10g;加800ml去离子水,用10M NaOH调节pH至7.0,定容至1000ml,高压(1.034×100000Pa)灭菌20min,4℃保存;
3)LB固体培养基:在LB液体培养基中加入琼脂粉至终浓度为1.5%,高温、高压灭菌20min后降温至50~60℃,在无菌状态下铺制平板,室温放置过夜后,置于4℃保存;
4)氨苄青霉素贮存液:用无菌双蒸水配成100mg/ml,分装,-20℃保存。使用时终浓度为
100ug/ml。
5)用于制备感受态细胞的CaCl
2(0.1mol/l):称取0.56g CaCl
2
(无水,分析纯),溶解于
50ml双蒸水中,定容至100ml,高压灭菌;
6)X-gal(20mg/ml)的配制:将20mg X-gal溶于1ml二甲基甲酰胺中,-20℃避光保存;
7)IPTG(200mg/ml)的配制:将0.2gIPTG溶于1ml去离子双蒸水中,0.22μm滤膜除菌,-20℃保存备用;
3’RACE
(dT)
17-接头引物:5’GACTC GAGTC GACAT CGA(T)
17
3’
接头引物:5’GACTC GAGTC GACAT CG 3’
2.cDNA的纯化
利用胶回收试剂盒进行(去除多余的dNTP和引物)。最后使用20μl TE洗脱沉淀。
5’RACE
2.cDNA的纯化
利用胶回收试剂盒进行(去除多余的dNTP和引物)。最后使用20μl TE洗脱沉淀。
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