激光共聚焦显微镜

胰腺细胞悬浮液样品 适当离心后加入荧光染色剂，用专业的细胞培养皿，中间凹陷，可在激光共聚焦载物台上拍片，扫描，观察钙离子变化情况

目的：监测细胞胞浆中游离钙的动态变化

原理：正常细胞内游离钙浓度[Ca2+]i为0.1 umol/L，胞外钙离子浓度为

1.2-1.3 mmol/L，相差达10000倍。胞外钙内流和胞内钙库动员形成的钙震荡(钙峰或钙波)在各种生理过程中起重要作用；病理状态下细胞内钙超负荷将造成一系列代谢紊乱，直至细胞坏死或凋亡；钙离子通道阻断剂已广泛应用于临床。显而易见，测定[Ca2+]在生理学、病理学和药理学等研究工作中均具有重要意义。

Fluo-3/AM等钙离子荧光染料以脂溶性的乙酰甲氧基酯（AM酯）的形式导入细胞，在胞内水解酶的的作用下水解成游离酸，与钙离子的结合物在激发光作用下能产生特异的荧光。荧光信号的强弱随钙离子浓度的变化而变化。

方法：

1.预先用二甲基亚砜(DMSO)将Fluo-3/AM配制为1 mmol/L原液，-20℃避光保存。F127用DMSO配制成20%溶液(W/V)。用无血清无酚红培养液将Fluo-3/AM稀释成终浓度为10 umol/L，并加入0.1%的Pluronic

F-127备用。

2.移去培养皿中的原培养液，用PBS液冲洗心肌细胞2遍，加入10 umol/L染料液1 ml，置于37℃的CO2孵箱里避光温育30 min。

3.将染色后的心肌细胞用PBS液冲洗3遍，加入1 ml DMEM液后置于20倍光学显微镜观察区域及层面，用LSCM观察Fluo-3染色的细胞的某一层面的荧光图像。

4.启动LSCM，选择488 nm 氩离子激光，启动计算机，运行lasersharp 2000软件，选择time-course程序，设置扫描间隔时间（30 sec）、扫描次数（300次），开始扫描。

5.将数据输入excel进行整理、统计、分析。

1)如果直接做活细胞观察,可以把细胞直接seed在放在6 well中的盖玻片上,然后培养,等观察时用镊子把盖玻片取出,倒扣在载玻片上就行了.

2)需要做免疫荧光染色的,可以做完染色,然后把细胞悬浮起来,滴一滴到载玻片上,盖上玻片观察. 如果是用探针孵育活细胞，可以先做成细胞爬片，在相关处理后，探针避光孵育，完毕后，用镊子把细胞爬片取出,倒扣在载玻片上就行了. 买国产玻片就可以，不过要泡酸过夜后再灭菌，之前可以按自己需要切片，根据大小，然后在30mm培养皿，中间打孔，用泡酸洗好的大玻片粘好，用时细胞种在切片上，切片放在皿小孔中，罐流都可以的。我们实验室十几年这种方法，不过如果活细胞工作站要求皿可以订制，很便宜，细胞可种在大玻片上，这样透光好。1、盖玻片买国产的就可以，不过有时背景较脏。你最好拿弱酸，如稀盐

酸浸泡。

2、然后灭菌，比如紫外照射，两面都照射，然后放于合适的孔板中，接种合适密度的细胞于孔板中，一般较稀一些，那样容易有单个的细胞，得到较好的图片。

3、加抗体时最好能在封口膜上操作，那样很节约抗体，样品可以放到一个湿盒中，饭盒加水就可以了。一定要记住接种细胞的玻片面，别弄反了。

4、在载玻片加上一滴，防淬灭剂，用甘油配制的DABCO，将含细胞的盖玻片那一面朝向载玻片放置，周围再用指甲油或其它胶固定。用锡箔纸报住，避光4c保存，最多一个月。

5、最好染核，核好染，同时也便于观测。

6、先在普通荧光显微镜下观测你的结果，实验理想的话再去看激光共聚焦。毕竟激光共聚焦很贵。我做过confocal，我个人觉得用confocal来看细胞的亚结构非常好。我用的OLYMPUS的FV1000,我看过说明书介绍，confocal可以做离子浓度的测定，但是我没有做过。组织的切片一样可以做confocal,我的一个朋友就是做的组织，方法和做细胞的荧光一样，结果不错。

我当时做的是细胞的免疫荧光，方法和基本的免疫荧光一样，细胞种在载玻片上，60%融合就好，不要长满，因为细胞太多，挤在一起的话，会影响成像。一抗，荧光二抗，依次孵育。我把我毕业论文中的一张图贴上来给大家看看。我做的是双染，一个抗体用的FITC（绿色），是一种微管蛋白；另一个用的是TRITC，是一种结构蛋白。黄色是两种融合的图像，结果发现这两种蛋白结构上共地位。是否要confocal和免疫组化都做要取决于实验的具体检测指标和实验的目的，比如检测核因子等转录因子，静息状态时核因子kb存在于细胞浆，刺激时进入细胞核，这样用激光共聚焦的共定位技术就可以很清楚的指示出来，而免疫组化只能粗略的看出。

组织切片的自发荧光应该是限制了荧光标记技术在这一方面的应用，所以不做任何处理， 在荧光显微镜下都可以看到荧光，处理这样的情况一是选用不同的标记荧光尽量避开自发荧光，也有些去除自发荧光的措施，要具体情况具体使用了。

当然不排除有些文章纯粹为了confocal而confocal，其实能用简单的实验说明问题了就不要选用复杂的了，免疫组化的定位显示在发国外论文的时候还是很受重视的。免疫荧光组织化学技术

一、免疫荧光组织化学技术的发展史概述……………………………………………………

二、免疫荧光组织化学的原理…………………………………………………………………

（一）直接方法……………………………………………………………………………

1． 检查抗原方法……………………………………………………………………

2． 检查抗体方法……………………………………………………………………

（二）间接方法……………………………………………………………………………

1．检查抗体(夹心法)方法……………………………………………………………

2．检查抗体方法 ……………………………………………………………………

3．检查抗原法 ………………………………………………………………………

（三）补体法………………………………………………………………………………

1．直接检查组织内免疫复合物方法………………………………………………

2．间接检查组织内抗原方法………………………………………………………

（四）双重免疫荧光组织化学标记方法…………………………………………………

（五）对照试验……………………………………………………………………………

1． 直接方法 …………………………………………………………………………

2． 间接方法 …………………………………………………………………………

3． 补体方法 …………………………………………………………………………

三、荧光抗体的制备………………………………………………………………………………

（一）荧光素 ………………………………………………………………………………

1． 异硫氰酸荧光素 …………………………………………………………………

2． 四甲基异硫氰酸罗达明 …………………………………………………………

3． 得克萨斯红(Texas red)……………………………………………………………

4．其它荧光素…………………………………………………………………………

（二）荧光素标记抗体的方法 ……………………………………………………………

1．FITC标记抗体的方法……………………………………………………………

2．四甲基异硫氰酸罗达明标记抗体方法……………………………………………

3．藻红蛋白标记抗体方法……………………………………………………………

4．蓝色荧光素标记抗体方法…………………………………………………………

（三）荧光抗体的质量控制 ………………………………………………………………

1．染色特异性和敏感性的测定方法…………………………………………………

2．F/P比值的测定方法………………………………………………………………

3．荧光抗体的保存……………………………………………………………………

四、免疫荧光组织化学染色方法………………………………………………………………

（一）荧光抗体染色方法…………………………………………………………………

1．直接方法……………………………………………………………………………

2．间接方法(双层法) ………………………………………………………………

3．间接方法 (夹心法) ………………………………………………………………

4．补体方法……………………………………………………………………………

5．膜抗原荧光抗体染色方法………………………………………………………

6．双重染色方法………………………………………………………………………

7．荧光抗体再染色方法………………………………………………………………

（二）荧光抗原染色方法…………………………………………………………………

五、荧光显微镜检查方法………………………………………………………………………

（一）荧光和荧光显微镜…………………………………………………………………

（二）荧光显微镜标本制作要求…………………………………………………………

1．载玻片……………………………………………………………………………

2．盖玻片……………………………………………………………………………

3．标本…………………………………………………………………………………

4．封裱剂………………………………………………………………………………

5．镜油…………………………………………………………………………………

（三）使用荧光显微镜注意事项…………………………………………………………

（四）荧光图像的记录方法………………………………………………………………

六、非特异性染色的消除方法…………………………………………………………………

（一）非特异性染色的主要因素…………………………………………………………

（二）消除非特异性染色的方法…………………………………………………………

1．葡聚糖凝胶G-50柱层析法………………………………………………………

2．DEAE纤维素柱层析法……………………………………………………………

3．荧光抗体稀释法…………………………………………………………………

4．纯化抗原方法………………………………………………………………………

5．纯化抗体方法——免疫吸收方法………………………………………………

6．伊文氏蓝(Evans blue)衬染色方法………………………………………………

七、现状与展望…………………………………………………………………………………一、免疫荧光组织化学技术的发

展史概述

免疫荧光组织化学是现代生物学和医学中广泛应用的技术之一，是由Coons和他的同事(1941)建立，免疫荧光技术与形态学技术相结合发展成免疫荧光细胞(或组织)化学。它与葡萄球菌A蛋白(SPA)、生物素与卵白素、植物血凝素(ConA等)相结合拓宽了领域；与激光技术、电子计算机，扫描电视和双光子显微镜等技术结合发展为定量免疫荧光组织化学技术；荧光激活细胞分类器Fluorescin activated cell sorter (FACS)的应用，激光共聚焦显微镜的问世，使免疫荧光细胞技术发展到更高的阶段，开创了免疫荧光技术的新领域。细胞显微分光光度计与图像分析仪的结合使免疫荧光组织化学的定量检测更加准确。80年代到90年代相继又有新的荧光素出现如R-藻红朊，B-藻红朊，C-藻青蛋白，cy2, cy3, cy5, cy7均在流式细胞仪和激光共聚焦显微镜中广泛应用。

由于免疫荧光组织化学的特异性，快速性和在细胞水平定位的准确性，已在免疫学、微生物学、病理学、肿瘤学以及临床检验等许多方面得到广泛应用，日益发挥重要的作用。二、免疫荧光组织化学的原理

免疫荧光组织化学是根据抗原抗体反应的原理，先将已知的抗原或抗体标记上荧光素，再用这种荧光抗体(或抗原)作为探针检查细胞或组织内的相应抗原(或抗体)。在细胞或组织中形成的抗原抗体复合物上含有标记的荧光素，荧光素受激发光的照射，由低能态进入高能态，而高能态的电子是不稳定的，以辐射光量子的形式释放能量后，再回到原来的低能态，这时发出明亮的荧光(黄绿色或桔红色)，利用荧光显微镜可以看见荧光所在的细胞或组织，从而确定抗原或抗体的性质和定位，以及利用定量技术测定含量（图3-2-1）。

图3-2-1紫外光激发荧光物质放射荧光示意图

用荧光抗体示踪或检查相应抗原的方法称荧光抗体法。用已知的荧光抗原标记物示踪或检查相应抗体的方法称荧光抗原法。免疫荧光组织化学分直接法、间接法和补体法。

（一）直接方法

1． 检查抗原方法

这是最简便、快速的方法，用已知特异性抗体与荧光素结合，制成特异性荧光抗体，直接用于细胞或组织抗原的检查。此法特异性强，常用于肾穿刺，皮肤活检和病原体检查，其缺点是一种荧光抗体只能检查一种抗原，敏感性较差。（图3-2-2）

图3-2-2 直接法

2． 检查抗体方法

将抗原标记上荧光素，用此荧光抗原与细胞或组织内相应抗体反应，而将抗体在原位检测出来。

（二）间接方法

1．检查抗体(夹心法)方法

此法是先用特异性抗原与细胞或组织内抗体反应，再用此抗原的特异性荧光抗体与结合在细胞内抗体上的抗原相结合，抗原夹在细胞抗体与荧光抗体之间，故称夹心法。

2．检查抗体方法

用已知抗原细胞或组织切片，加上待检血清，如果血清含有切片中某种抗原的抗体，抗体结合在抗原上，再用间接荧光抗体(抗种属特异性IgG荧光抗体)与结合在抗原上的抗体反应，在荧光显微镜下可见抗原抗体反应部位呈现明亮的特异性荧光。此法是检验血清中自身抗体和多种病原体抗体的重要手段。

3．检查抗原法

此法是直接法的重要改进，先用特异性抗体与细胞标本反应，随后用缓冲盐水洗去未与抗原结合的抗体，再用间接荧光抗体与结合在抗原上的抗体结合，形成抗原-抗体-荧光抗体的复合物。同直接法相比荧光亮

度可增强3或4倍。此法除灵敏性高外，它只需要制备一种种属间接荧光抗体，可以适用于同一种属产生的多种第一抗体的标记显示，这是现在最广泛应用的技术。

（三）补体法

1．直接检查组织内免疫复合物方法

用抗补体C3荧光抗体直接作用组织切片，与其中结合在抗原抗体复合物上的补体反应，而形成抗原-抗体-补体—抗补体荧光抗体复合物，在荧光显微镜下呈现阳性荧光的部位就是免疫复合物上补体存在处，此法常用于肾穿刺组织活检诊断等。

2．间接检查组织内抗原方法

常将新鲜补体与第一抗体混合同时加在抗原标本切片上，经37℃孵育后，如发生抗原抗体反应，补体就结合在此复合物上，再用抗补体荧光抗体与结合的补体反应，形成抗原-抗体-补体—荧光抗体的复合物，此法优点是只需一种荧光抗体可适用于各种不同种属来源的第一抗体的检查。

（四）双重免疫荧光组织化学标记方法

在同一组织标本上需要同时检查两种抗原时要进行双重荧光染色，一般均采用直接法，将两种荧光抗体(如抗A和抗

的定位。

（五）对照试验

为了保证免疫荧光组织化学染色的准确性，排除某些非特异性染色，必须在初次试验时进行以下对照试验：

1．直接方法

（1）标本自发荧光对照：标本只加PBS或缓冲甘油封片，荧光显微镜观察组织内如果有荧光，称为自发荧光。

（2）抑制试验：可分为二步方法和一步方法。

1）一步抑制方法：先将荧光抗体与过量未标记特异性抗体作等量混合，再加在标本上染色，结果应为阴性。

2）二步抑制方法：标本先加未标记的特异性抗体，水洗后再加标记荧光抗体，结果应呈阴性或明显减弱的荧光。

（3）阳性对照：用已知阳性标本做直接法免疫荧光组织化学染色，结果应呈阳性荧光。

结果：如对照1和2无荧光或弱荧光，3待检查标本呈强荧光即为特异性阳性荧光。

2．间接方法

（1）自发荧光对照：同直接法。

（2）荧光抗体对照：标本只加间接荧光抗体染色，结果阴性。

（3）抑制试验：同直接法。

（4）阳性对照：同直接法。

结果：如对照（1）、（2）、（3）均呈阴性，阳性对照和待检标本呈阳性荧光则为特异性荧光。

3．补体方法

（1）自发荧光对照

（2）荧光抗体对照

（3）抑制试验

（4）补体对照：取新鲜豚鼠血清1:10稀释先作用标本，洗后再用抗补体荧光抗体染色，结果阴性。

（5）抑制试验：标本加灭活的第一抗体，再加1:10稀释的新鲜豚鼠血清孵育后，再加未标记的抗补体血清与抗补体荧光抗体等量混合稀释液，结果应为阴性。

（6）阳性对照。

（1）~（5）结果阴性，6和待检标本阳性时，则为特异性荧光。三、荧光抗体的制备

制备荧光抗体是免疫荧光组织化学的重要技术之一，制备特异性强和高效价的荧光抗体必须选用高质量的以适当比例混合，加在标本上孵育后，按直接法洗去未结合的荧光抗体，抗A抗体用异硫氰酸荧光素标记，发黄绿色荧光；抗B抗体用TMRITC或RB200标记，发红色荧光，可以明确显示两种抗原

荧光素和高效价的抗体。

（一）荧光素

荧光是指一个分子或原子吸收了给予的能量后即刻引起发光，停止能量供给，发光也瞬时停止。可以产生明亮荧光的染料物质，称荧光色素。目前主要常用于标记抗体的荧光色素如下：

1． 异硫氰酸荧光素（fluorescein isothiocyanate, FITC）

FITC是一种呈黄色粉末状，性质稳定，在室温下能保存2年以上，在低温中可保存多年。易溶于水和酒精。最大吸收光谱为490~495nm，最大发射光谱为520~530nm，呈现黄绿色荧光，分子量为389.4（。图3-2-3）

图3-2-3 FITC的分子结构式

在碱性条件下，FITC的异硫氰酸基在水溶液中与免疫球蛋白的自由氨基经碳酰胺化而形成硫碳氨基键结合,成为标记荧光免疫球蛋白，即荧光抗体。一个IgG分子上最多能标记15~20个FITC分子。

2．四甲基异硫氰酸罗达明(tetramethylrhodamine isothiocyanate, TMRITC)

TMRITC是一种紫红色粉末，较稳定。其最大吸收光谱为550nm，最大发射光谱620nm呈橙红色荧光，与FITC的黄绿色荧光对比清晰，与蛋白质结合方式同FITC。它可用于双标记示踪研究(图3-2-4)。

3．得克萨斯红(texas red)

得克萨斯红是一种褐色粉末状，易溶于有机溶剂，性质稳定，在4℃下能保存2年以上，最大吸收光谱为590-595nm，最大发射光谱为620-630mm，共有四种结构，常用的分子量为625.15(图3-2-5)。

图3-2-4 TMRITC 的分子结构式 图3-2-5 Texas red的分子结构式

4． 其它荧光素

如4-乙酰胺-4-异硫氰酸-2-硫酸芪(SITS) 7-氨基甲基香豆 素AMC呈兰色荧光；藻红素R(phycoerythrin-R)；花青(Cyanine,Cy2,Cy3,Cy5,Cy7)等。

（二）荧光素标记抗体的方法

1．FITC标记抗体的方法

（1）Marsshall氏法

1）材料：抗体溶液、0.5mol/L pH9.0碳酸盐缓冲液、无菌生理盐水、异硫氰酸荧光素、1%硫柳汞水溶液、三角烧瓶(25-50ml) 、冰及冰槽(或1000ml烧杯)、电磁搅拌器、灭菌吸管、透析袋、玻棒、棉线及烧杯(500ml)、pH7.2的0.01mol/L PBS葡聚糖凝胶G-25层析柱等。

2）方法及步骤：

①抗体的准备：取适量已知抗体浓度之溶液，加入三角烧瓶中，再加入生理盐水及碳酸盐缓冲液，使最后抗体浓度为20mg/ml，碳酸盐缓冲液容量为总量的1/10，混匀，将三角烧瓶置冰槽中，电磁搅拌(速度适当以不起泡沫为宜)5~10min。

②荧光素的准备：根据标记的抗体总量，按每毫克蛋白加0.01mg荧光素，用分析天平准确称取所需的异硫氰酸荧光素粉末。

③结合：边搅拌边将称取的荧光素渐渐加入抗体溶液中，避免将荧光素粘于三角烧瓶壁或搅拌玻棒上(大约在5~10min内加完)，加完后，在4℃左右继续搅拌12~18h，通常将装置安放4℃冰箱或冰库中进行。 ④透析：结合完毕后，将标记的抗体溶液离心(2000r/min)10min，除去其中少量的沉淀物，装入透析袋中再置于烧杯中用0.01M pH7.2缓冲盐水透析(0~4℃)过夜。

⑤过柱：取透析过夜的标记物，通过葡聚糖凝胶G-25或G-50柱，分离游离荧光素，收集标记的荧光抗体进行鉴定。（图3-2-6，图3-2-7）

图3-2-6 Sephadex G-25

对FITC标记抗

体液(羊抗兔)柱

层析洗脱模型

图3-2-7 FITC 与家兔IgG球

蛋白在25℃和2℃时结合

的动力学 ( Kawamura

1964)

（2）Chadwick氏法

1）试剂和材料：抗体球蛋白溶液、异硫氰酸荧光素、3%重碳酸钠水溶液、0.01mol/L pH8.0磷酸盐缓冲盐水、1%硫柳汞、离心机及离心管、三角烧瓶(25ml)、冰槽、无菌吸管及毛细滴管、烧杯(500ml)透析袋、棉线、玻棒等。

2）方法及步骤：

①抗体准备：用0~4℃的pH 8.0磷酸盐缓冲盐水将抗体蛋白溶液稀释至浓度为30~40mg/ml， 置入三角烧瓶内，放于冰槽中。

②荧光素准备：按每毫克蛋白加入荧光素0.01mg计算，称取所需之荧光素量，用3%重碳酸钠水溶液溶解。 ③将准备的抗体与荧光素溶液等量混合，充分搅匀，在0~4℃冰箱中结合18~24h。

④透析和柱层析：方法同Marshall氏法。

（3）改良法

试剂：

1）0.01mol/L pH7.2PBS配法：NaCl 18g、Na2HPO4 1.15g、KH2PO4 0.2g，溶于2000ml蒸馏水中，校定pH至7.2。

2）0.5mol/L pH9.0碳酸盐缓冲液配法：取0.5mol/L Na2CO3(5.3%)10ml加入0.5mol/L NaHCO3(4.2%)90ml，混匀后，校定pH至9.0。

3）3%重碳酸钠水溶液配法：称1.5g无水碳酸钠充分溶解于50ml灭菌蒸馏水中即成。

方法及步骤：取高效价的抗人球蛋白兔免疫血清，分离球蛋白，用盐水(0.15mol/L NaCI)及缓冲液(0.5mol/L NaHCO3-Na2CO3 pH 9.0)稀释使每ml内含抗体10mg，缓冲液为总量的10%，降温至4℃，加入异硫氰酸荧光素，(蛋白：荧光素=80mg:1mg)，在0~4℃下电磁搅拌12~14h。然后用半饱和的硫酸铵将标记球蛋沉淀分离，除去未结合的荧光素，再用缓冲盐水透析，除去硫酸铵(用Nessler氏试剂测验至隔夜透析的盐水无氨离子及荧光色素为止)。将制备好的荧光抗体加叠氮钠0.01%，分装在1ml安瓿中，或冻干，保存于冰箱中(4℃)可以用半年以上，-20保存可达2年以上。

2．四甲基异硫氰酸罗达明标记抗体方法

（1）取IgG10ml(6mg/ml)在0.1mol/L pH 9.5碳酸盐缓冲液中透析过夜。

（2）将四甲基异硫氰酸罗达明(每毫克IgG 加入5~20 g)溶于二甲亚砜(1mg/ml)，取此溶液300 l,一滴一滴加入抗体溶液中，同时电磁搅拌。

（3）在室温中搅拌2h，避光。

（4）把结合物移入直径3cm，高30cm大小的Bio-Gel P-6层析柱，用0.01mol/L pH 8.0的PBS平衡过柱，流速为1.5ml/min。

（5）收集先流出的红色结合物，即为标记抗体，分装，4℃保存备用。

3．藻红蛋白标记抗体方法

（1）巯基化藻红蛋白(phycoerthrin,PE)的制备 600μl的15.5mg/ml盐酸巯醇亚胺(iminothiolane hydrochloride)加到1.2ml的3.6mg/ml的PE中，和1.2ml PB(pH 6.8)混合，装入透析袋置入50mmol/L pH

6.8 PB中透析，4℃过夜，再换用pH7.5 PB透析6h。每个PE分子中可结合8个巯基。

（2）巯基PE-IgG制备 异双功能试剂SPDP[N-Succinimdyl 3-(2-pyridyldithio) propionate] 30 g (1.1mg/ml)的乙醇溶液，加入700μl的4.2mg/ml IgG PB溶液(50mmol/L pH 7.5)，在室温中反应2.5h。再加入巯基化

PE400μl(1.7mg/ml)加到500μl反应混合液中，室温反应12h，加入100μl的50mmol/L碘乙酸钠封闭残余巯基，在4℃用PB透析过夜。加入 0.01%NaN3分装，4℃保存半年。

（3）PE-标记蛋白A方法

1）取4.08mg PE 溶于0.1mol/L pH 7.4 PB(含0.1mol/L NaCl)1ml中，溶解后， 取出0.5ml，再加入10μl SPDP无水甲醇液(2.6mg/ml)，SPDP/蛋白摩尔比为10, 22℃反应5min，过Sephadex G-50(1×17cm)，用100mmol/L pH 7.4PBS(含0.1mol/L NaCl)平衡和洗脱。

2）0.5ml蛋白(2mg/ml)100mmol/L PBS(含有100mmol/L NaCl pH 7.4)，加入2.6μl上述SPDP甲醇液， SPDP：蛋白A=9：5 ，22℃，40min, 加入25μl二硫苏糖醇(DTT) pH 7.4缓冲液，22℃，25min，同上过sephadex G-25，收集蛋白A峰。

3）取0.77mg/ml的PE 和0.27mg/ml蛋白A 等量混合，22℃反应6h，混合物4℃保存备用，以上两种PE标记制品，可最后溶于0.01mol/L pH 7.4 PB(含有0.1mol/L EDTA、1mol/L 碘乙酰胺、1% BAS和0.1% NaN3)，0~4℃保存。

4．蓝色荧光素标记抗体方法

Kbaffan 等(1986)首先创立了蓝色荧光素标记和染色技术，可进行双标记或多标记。

（1）取7-氨基-甲基香豆素(7-amino-4-methyl coumarin,AMC)260μg溶于二甲亚砜25μl中。

（2）将上液加入10ml IgG- 巴比妥缓冲液(0.5mol/L, pH 8.5,内含50~100mg IgG)中，室温反应2h，过Sephadex G-50除去游离荧光素, 最大荧光波长430nm, 最大吸收波长354nm。

（三）荧光抗体的质量控制

1．染色特异性和敏感性的测定方法

（1）特异性染色和效价测定 直接染色效价以倍比稀释荧光抗体溶液如1：2，1：4，1：8……，与相应抗原标本作一系列染色，荧光强度在“+++”的最大稀释度，为其染色滴度(效价)或单位。实际染色应用时，可取低一个或两个稀释度(即2~4个单位)，如染色效价为1：64，实际应用时可取1：32或1：16。间接染色效价可按抗核抗体荧光染色法步骤，先用不同稀释度的荧光抗体染色，结果以抗核抗体荧光强度“++”为标准，染色用效价和直接法相同。

（2）非特异性染色测定 根据荧光抗体的用途不同，可用相类似的抗原切片或涂片，倍比稀释荧光抗体，按常规染色，结果在标本上出现的非特异染色应显著低于特异染色，否则应采取消除非特异性染色的方法处理荧光抗体。

（3）吸收试验 在荧光抗体中加入过量相应抗原，于室温中搅拌2h后，移入4℃中过夜，3000r/min,离心30min，收集上清液，再用于相应抗原阳性标本染色，结果应不出现明显阳性荧光。

2．F/P比值的测定方法

F(荧光素)和P(抗体蛋白)的克分子比值反映荧光抗体的特异性染色质量，一般要求F/P的克分子比值为1~2。过高时，非特异性染色增强；过低时，荧光很弱，降低敏感性。

（1）蛋白质定量 测定荧光抗体的蛋白质mg/ml量。

（2）结合荧光素定量 先制作荧光素定量标准曲线，即准确称取FITC1mg，溶于10ml 0.5mol/L pH 9.0碳酸盐缓冲液中，再用0.01mol/L pH 7.2 PBS稀释到100ml，此时荧光素含量为10μg/ml，以此为原液，再倍比稀释9个不同浓度的溶液，用分光光度计在490nm波长测定光密度值（OD），以光密度为纵坐标，荧光素含量为横座标，作标准函数图。荧光素与蛋白质结合后，其吸收光谱峰值向长波方向位移约5nm，FITC和蛋白质结合后由490nm变为493-495nm，RB200和蛋白质结合后变为595nm。

F/P比值的计算：可按以下公式计算。

FITC g/ml 160000×103 FITC g/ml

F/P克分子比值= ——————— × —————— = 0.41×

蛋白质 mg/ml 390×106 蛋白质mg/ml

式中160000为抗体蛋白质的分子量，390为FITC的分子量。蛋白质从克换算为毫克需再乘以103，而荧

光素从克换算为微克需要再乘以106。

测定RB200荧光抗体的克分子比值公式如下：

(RB200 g/ml×10-3) ÷580

RB200荧光抗体的克分子比值= ¬¬—————————————

蛋白质mg/ml÷160000(IgG)

A515nmOD 160000

TMRITC荧光抗体克分子量比值= ———— 或=重量比(g/g) × ————

A280nmOD 580

3．荧光抗体的保存

以0~4℃或-20℃低温保存，防止抗体活性降低和蛋白变性。最好加入浓度为1：5000的硫柳汞或者1：10000，叠氮纳防腐，小量分装如0.1~1ml，真空干燥后更易长期保存。四、免疫荧光组织化学染色方法

（一）标本制作

（二）荧光抗体染色方法

1． 直接方法

（1）染色 切片经固定后，滴加经稀释至染色效价如1：8或1：16的荧光抗体，在室温或37℃染色30min，切片置入能保持潮湿的染色盒内，防止干燥。

（2）洗片 倾去荧光抗体，将切片浸入pH 7.2PBS中洗两次，电磁振动，每次5min，再用蒸馏水洗1min，除去盐结晶。

（3）50%缓冲(0.5mol/L碳酸盐缓冲液pH 9.0~9.5)甘油封固、镜检。

直接法比较简单，适合做细菌、螺旋体、原虫、真菌及浓度较高的蛋白质抗原如肾、皮肤的检查和研究。此法每种荧光抗体只能检查一种相应的抗原，特异性高而敏感性较低。

2．间接方法(双层法)

（1）切片固定后用毛细滴管吸取经适当稀释的免疫血清滴加在其上，置于染色盒中保持一定的湿度，37℃作用30min。然后用0.01mol/L pH 7.2PBS洗两次，10min，用吸水纸吸去多余的液体。

（2）再滴加间接荧光抗体(如兔抗人γ-球蛋白荧光抗体等)，同上步骤，染色30min，37℃，缓冲盐水洗两次10min，振动，缓冲甘油封固，镜检。

3．间接方法 (夹心法)

（1）切片或涂片固定后，置于染色湿盒内。

（2）滴加未标记的特异性抗原作用切片于37℃，30min。

（3）缓冲盐水洗2次，每次5min，吹干。

（4）滴加特异性荧光抗体在切片上37℃，30min。

（5）如（3）水洗。

（6）缓冲甘油封固，镜检。

4．补体方法

（1）材料和试剂

1）免疫血清60℃灭活20min，用Kolmers盐水作2倍稀释成1：2，1：4，1：8……。补体用1：10稀释的新鲜豚鼠血清，抗补体荧光抗体等，按下述的补体法染色。免疫血清补体结合的效价如为1：32则免疫血清应用1：8稀释。

2）补体用新鲜豚鼠血清一般作1：10稀释或按补体结合反应试管法所测定的结果，按2单位的比例，用Kolmers盐水稀释备用。Kolmers盐水配法：即在pH7.4的0.1mol/LPBS中溶解MgSO4的含量为0.01%浓度。

3）抗补体荧光抗体：在免疫血清效价为1：4，补体为2单位的条件下，用补体染色法测定免疫豚鼠球蛋

白荧光抗体的染色效价，然后按染色效价1：4的浓度用Kolmers盐水稀释备用。

（2）方法步骤

1）涂片或冰冻切片用冷丙酮10min固定和PBS洗一次，3min，吹至组织表面无水份。

2）吸取经适当稀释的免疫血清及补体的等量混合液(此时免疫血清及补体又都各稀释一倍)滴于切片上，37℃作用30min，置于保持一定湿度的染色盒内。

3）用缓冲盐水洗2次，搅拌或振动，每次5min，吸干标本周围水份。

4）滴加经过适当稀释的抗补体荧光抗体30min，37℃，水洗同(3)。

5）蒸馏水洗1min，缓冲甘油封固。

5．膜抗原荧光抗体染色方法

本法应用直接法或间接法的原理和步骤，可对活细胞在试管内进行染色，常用于T和B细胞、细胞培养物、瘤细胞抗原和受体等的研究，阳性荧光主要在细胞膜上。FACS即采用此原理和方法。

6．双重染色方法

在同一标本上有两种抗原需要同时显示(如A抗原和B抗原)，A抗原的抗体用FITC标记，B抗原的抗体用罗达明标记，可采用以下染色方法：

（1）一步法双染色方法 先将两种标记抗体按适当比例混合(A+

接法进行。

结果：A抗原阳性荧光呈现绿色，B抗原阳性呈现桔红色荧光。

（三）荧光抗原染色方法

某些抗原可以用荧光素标记，制成荧光抗原，标记荧光素的方法与制备荧光抗体方法相同。用荧光抗原可以直接检查细胞或组织内的相应抗体，特异性较好，敏感性较差。染色方法同荧光抗体染色的直接方法。由于多数抗原难以提纯或量少昂贵，一般很少采用此法。五、荧光显微镜检查方法

（一）荧光显微镜

荧光显微镜是免疫荧光组织化学的基本工具，分透谢和落射二种类型，落射光无需镜内操作方便，效果更好。它是由超高压光源、滤板系统(包括激发和压制滤板)和光学系统等主要部件组成。是利用一定波长的光激发标本发射荧光，通过物镜和目镜系统放大以观察标本的荧光图像。

（二）荧光显微镜标本制作要求

1．载玻片

载玻片厚度应在0.8-1.2mm之间，太厚的玻片，一方面光吸收多，另一方面不能使激发光在标本上聚焦。载玻片必须光洁，厚度均匀，无明显自发荧光。有时需用石英玻璃载玻片。

2．盖玻片

盖玻片厚度在0．17mm左右，光洁。为了加强激发光，也可用干涉盖玻片，这是一种特制的表面镀有若干层对不同波长的光起不同干涉作用的物质(如氟化镁)的盖玻片，它可以使荧光顺利通过，而反射激发光，这种反射的激发光又可激发标本。

3．标本

组织切片或其他标本不能太厚，如太厚激发光大部消耗在标本下部，而物镜直接观察到的上部不能充分激发。另外，细胞重叠或杂质掩盖，背景非特异染色引起的荧光影响判断。

4．封裱剂

封裱剂常用甘油，必须无自发荧光，无色透明，荧光的亮度在pH8.5～9.5时较亮，不易很快褪去。所以，常用甘油和0.5mol／L,pH9.0～9.5的碳酸盐缓冲液的等量混合液作封裱剂。如果用抗褪色剂封裱荧光染色标本更有利于显微摄影。配方是将P—次苯基二胺二氢氯100mg加入PBS 10m1中，调pH至9.0～9.5，再加入甘油90ml，混匀，在室温放置过夜，待其中小气泡完全消失即可使用。

5．镜油 ，按直接方法进行染色。 （2）二步法双染色方法 先用RB200标记的B抗体染色，不必洗去，再用FITC标记的A抗体染色，按间

一般暗视野荧光显微镜和用油镜观察标本时，必须使用镜油，最好使用特制的无荧光镜油可用甘油代替，液体石蜡也可用，只是折光率较低，对图像质量略有影响。对于落射光荧光显微镜BX60，Nikon E-1000无须镜油。

（三）使用荧光显微镜注意事项

1．严格按照荧光显微镜出厂说明书要求进行操作，不要随意改变程序。

2．应在暗室中进行检查。进入暗室后，接上电源，点燃超高压汞灯5~15min，待光源发出强光稳定后，眼睛完全适应暗室，再开始观察标本。

3．防止紫外线对眼睛的损害。在调整光源时应戴上防护眼镜。

4．检查时间每次以1~2h为宜，超过90min，超高压汞灯发光强度逐渐下降，荧光减弱；标本受紫外线照射3~5min后，荧光也明显减弱或褪色；所以最多不得超过2~3h。

5．荧光显微镜光源寿命有限，标本应集中检查，以节省时间，保护光源。天热时，应加电扇散热降温，新换灯泡应从开始就记录使用时间。灯熄灭后欲再启用时，须待灯光充分冷却后才能点燃。一天中应避免数次点燃光源。

6．标本染色后立即观察，因时间久了荧光会逐渐减弱。若将标本放在聚乙烯塑料袋中4℃保存，可延缓荧光减弱时间，防止封裱剂蒸发。

7．荧光亮度的判断标准：一般为四级，即“—”——无或可见微弱自发荧光。“+”——仅能见明确可见的荧光。“++”——可见有明亮的荧光。“+++”——可见耀眼的荧光。

（四）荧光图像的记录方法

荧光显微镜所看到的荧光图像，一是具有形态学特征，二是具有荧光的颜色和亮度，在判断结果时，必须将二者结合起来综合判断。结果记录根据主观指标，即凭工作者目力观察，作为一般定性观察，基本上是可靠的。随着技术科学的发展，采用细胞分光光度计，流式细胞仪，激光共聚焦显微镜和图像分析仪等仪器。但这些仪器记录的结果，也必须结合主观的判断。

荧光显微镜摄影技术对于记录荧光图像十分必要，由于荧光很易减弱褪色，要及时摄影记录结果。方法与普通显微镜摄影技术基本相同。只是需要采用高速感光胶片如ASA200以上或24o以上。因紫外光对荧光猝灭作用大，如FITC的标记物，在紫外光下照射30s，荧光亮度就有降低。有的荧光强度不够，曝光速度太慢，只能用人工掌握曝光时间，将荧光图像拍摄下来。研究型荧光显微镜都有半自动或全自动显微数码相机摄影系统装置，如Nikon公司2001年在我国推出了Nikon E-1000 全自动荧光显微镜配备有Cool CCD与计算机联接将图像采集在软盘上再与彩色打印机连接直接打印照片。

六、非特异性染色的消除方法

（一）非特异性染色的主要因素

组织的非特异性染色的机理很复杂，其产生的原因主要可分以下几点：

1．一部分荧光素未与抗体结合，形成了聚合物和衍化物，而不能被透析除去引起非特异性染色。

2．抗体以外的血清蛋白与荧光素结合形成荧光素脲蛋白，可与组织成分非特异结合。

3．除去检查的抗原以外，组织中还可能存在类属抗原(如Forssman氏抗原)，可与组织中特异性抗原以外的相应抗原结合。

4．从组织中难以提纯抗原性物质，所以制备的免疫血清中往往混杂一些抗其他组织成分的抗体，以致容易

混淆。

5．抗体分子上标记的荧光素分子太多，这种过量标记的抗体分子带过多的阴离子，可吸附于正常组织上而呈现非特异性染色。

6．荧光素不纯，标本固定不当等。

（二）消除非特异性染色的方法

消除荧光抗体非特异性染色的方法应根据产生的原因采取适当的方法，常用的方法有以下几种：

1．透析法

荧光素如FITC分子可以通过半透膜，而蛋白质大分子不能透过，可将未与蛋白结合的荧光素透析除去。

（1）将标记完毕的荧光抗体液装入一透析袋或玻璃纸袋内，液面稍留空隙，紧扎。

（2）浸人0.01mol／L pH7.2的PBS中(悬于大于标记物体积约50—100倍的PBS内)，在4℃中透析，每日更换3～4次PBS，透析液中无荧光即可(在荧光光源照射下)。

2．葡聚糖凝胶G-50柱层析法

除去游离荧光素可用葡聚糖凝胶G-25或G-50柱层析方法，加入荧光抗体15～18ml(按床体积的5％～10％加样)，使其缓慢渗人柱内，待即将全部入柱时，加入PBS少许，关闭下口，停留30—40min，使游离荧光素充分进入分子筛孔中，然后再接通洗脱瓶开始滴入洗脱液。加入洗脱液一定量后，荧光抗体即向下移行，逐渐与存留于上端的游离荧光素之间拉开明显的距离界线，随着大量洗脱液的不断加入，二者分离距离越来越大，荧光抗体最先流出，分前、中、后三部分，收集中间部分，测F／P比值，合格者浓缩，分装。如仅用小量荧光抗体，可用1cm×20cm的层析柱，取2g Sephadex G-50装柱，即可过滤2～3.5ml荧光抗体。

3. 荧光抗体稀释法

先测定荧光抗体的特异性染色与非特异性染色效价，若二者效价相差较大，则可将荧光抗体稀释至一临界浓度，使特异性染色呈阳性，而使非特异性染色保持阴性，稀释方法和染色效价测定方法相同。

4. 纯化抗原方法

用各种方法提纯单一成分的抗原是产生单价特异性抗体的最主要条件。现代免疫化学技术(免疫吸收法)和柱层析法等提供了很大的可能性。

5．伊文蓝（Evan blue）衬染色方法

用0.01%伊文蓝的0.01mol/L pH7.2 PBS溶液稀释荧光抗体，可将背景细胞和组织染色呈红色荧光，与特异性黄绿色荧光形成鲜明的对比，减少了非特异性荧光，宜作常规应用。伊文蓝一般配成1%溶液，保存于4℃，用前再稀释至0.01%用以稀释荧光抗体。

此外，还可以用胰酶消化组织切片或用10%牛血清蛋白封闭法等消除非特异性染色，提高特异性染色。 票数 + 收藏 +七、现状与展望

免疫荧光组织化学技术经过半个多世纪的不断改进和创新，已成为现代研究生物和医学的重要手段之一。由于免疫荧光技术与形态、机能相结合不断完善和发展，尤其是合成了多种新荧光素与抗体容易结合，结合物稳定。可以和FITC结合进行免疫荧光组织化学双标记或三标记。至今，它已和亲合化学技术如SPA，Biotin及avidin, ConA相结合，应用领域也日益扩大，又与现代的电子计算机和扫描电视技术，共聚焦显微镜，荧光激活细胞分类器（FACS）以及数码相机摄影技术的应用，使得快速性、简便性有了更大的提高，使得定量更加准确。90年代又开展了荧光原位末端标记和荧光原位杂交技术，使得范围更广大。

虽然免疫组织化学有了很大的发展，如免疫金银法，免疫胶体铁法，SP，Evision和CSA法，但由于它有自己独特的优点，特异性强，定位准确、简便、快速、鲜明，在许多领域中仍占有不可取代的地位。如肾活检、皮肤活检中IgG, IgM, IgA, C3等检测，自身抗体的检查，传染病的快速诊断，单克隆抗体的筛选及鉴定等。随着科学技术的不断发展，免疫荧光组织化学技术广泛应用于生命科学的各个领域，放射出更加灿烂五彩缤纷的荧光。

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